JoVE Encyclopedia of Experiments
Immunologie
0 vues • 4:23 min • July 8th, 2025
Commencez par une tranche de tumeur pulmonaire contenant des cellules T résidentes.
Les lymphocytes T migrent à travers le microenvironnement tumoral et interagissent avec les cellules tumorales et les éléments stromaux, remplissant ainsi des fonctions immunitaires.
La composition du microenvironnement tumoral influence fortement le déplacement et la vitesse des lymphocytes T.
Ajoutez des anticorps distincts couplés par fluorescence pour marquer les lymphocytes T, les cellules tumorales et les éléments stromaux dans le microenvironnement.
Ajoutez du DAPI, qui infiltre les cellules dont la membrane plasmique est endommagée pour colorer le noyau, permettant ainsi de visualiser les régions nécrotiques de la tumeur.
Observez l’échantillon coloré au microscope confocal.
À l’aide d’une lumière de fluorescence appropriée, sélectionnez une région tumorale d’intérêt contenant des lymphocytes T résidents. Évaluez la viabilité cellulaire en évaluant les cellules DAPI-positives.
Pour une analyse en temps réel, définissez les intervalles de temps et la durée totale d’enregistrement.
Pour capturer des images de la pile z, commencez à une profondeur inférieure aux cellules T étiquetées et capturez des images à différents intervalles de temps.
Utilisez un logiciel de suivi pour comparer la longueur de déplacement des lymphocytes T et la vitesse moyenne dans différentes régions tumorales.
Diluez les anticorps marqués par fluorescence requis et le colorant nucléaire de fluorescence, DAPI, aux concentrations finales requises dans un milieu RPMI sans rouge de phénol. Ensuite, retirez la plaque de culture de l’incubateur et, à l’aide d’une pointe fine, aspirez le liquide à l’intérieur des rondelles en acier inoxydable.
Maintenant, sans toucher la tranche, ajoutez 40 microlitres d’anticorps dilués sur chaque tranche de tumeur. Pour éviter les taches, incubez la plaque à 37 degrés Celsius pendant 15 minutes. Une fois l’étape de coloration terminée, à l’aide d’une pince fine, retirez les rondelles. Ensuite, sortez délicatement les tranches et trempez-les dans un milieu RPMI1640 sans rouge de phénol pendant 10 secondes. Replacez les tranches sur les inserts de culture cellulaire et ajoutez une goutte de milieu de RPMI1640 sans rouge de phénol sur chaque tranche. Incuber la plaque à 37 degrés Celsius pendant 10 minutes, puis procéder à l’imagerie.
Plusieurs heures avant de commencer cette expérience, réglez la température de la chambre chauffante du microscope à 37 degrés Celsius, puis préparez le microscope configuré pour perfuser constamment les tranches tumorales avec un milieu RPMI oxygéné sans rouge de phénol, et pour aspirer la solution dans un ballon de collecte des déchets à l’aide d’une pompe péristaltique.
À l’aide d’une pince fine, soulevez la tranche tachée de la plaque à six puits et transférez-la dans un plat en plastique de 35 millimètres rempli d’un milieu RPMI sans rouge de phénol, puis placez une ancre de tranche sur la tranche pour la soutenir. Ensuite, placez cette boîte de Pétri sur la platine d’imagerie du microscope.
Après avoir connecté les embouts d’entrée et de sortie du système de perfusion, allumez la pompe péristaltique pour permettre au fluide oxygéné de passer à travers les tubes de perfusion. Abaissez l’objectif d’immersion dans l’eau sur la tranche et concentrez-vous sur le haut de la tranche avec une lumière en fond clair ou avec la longueur d’onde appropriée.
Ensuite, à l’aide de filtres appropriés, visualisez et sélectionnez une région d’intérêt qui contient toutes les cellules d’intérêt marquées par fluorescence, à savoir les cellules T CD8, les îlots tumoraux et les cellules stromales CD90-positives. Mettre en place une séance d’imagerie en utilisant l’intensité laser et les temps d’exposition adaptés à la luminosité des signaux fluorescents observés. Ensuite, configurez l’épaisseur de la pile Z pour imager la tranche de tumeur.
Ensuite, sélectionnez l’intervalle de temps de l’image Z-stack et la durée totale d’enregistrement pour capturer des images à des intervalles de temps spécifiques. Après avoir capturé et exporté les images fluorescentes, analysez la migration des lymphocytes T CD8 comme décrit dans le protocole texte.
Cette étude examine la dynamique de la migration des lymphocytes T dans des tranches de tumeur pulmonaire, en se concentrant sur leurs interactions avec les cellules tumorales et le microenvironnement environnant. La méthodologie implique un marquage fluorescent et une microscopie confocale afin de visualiser le comportement des lymphocytes T en temps réel.
L'imagerie confocale en temps réel de la migration des lymphocytes T CD8 résidents dans des tranches de tumeur pulmonaire humaine fournit des informations exploitables sur la dynamique des cellules immunitaires au sein du microenvironnement tumoral. Cette capacité permet une détection mécanistique des risques et une validation ciblée pour les programmes d'immuno-oncologie, renforçant la confiance prédictive à l'interface entre découverte et recherche translationnelle. Des métriques quantitatives de migration orientent les décisions stratégiques en clarifiant l'engagement immunitaire et les obstacles microenvironnementaux.
Ce flux de travail d'imagerie et d'analyse s'intègre dès la phase de découverte jusqu'à la recherche translationnelle, permettant des tests itératifs des hypothèses et une réduction des risques mécanistiques dans les pipelines d'immuno-oncologie.
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Dernière mise à jour : 29 août 2026