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Commencez avec une plaque multi-puits contenant des macrophages murins collés - ou cellules immunitaires phagocytaires.
Introduire une suspension de cellules fongiques de Cryptococcus, interagissant avec les récepteurs des macrophages et s’internalisant par phagocytose.
Le phagosome fusionne avec le lysosome, formant un phagolysosome. L’environnement acide du phagolysosome favorise la survie et la multiplication des champignons.
Introduire une forte concentration de primaquine — un photosensibilisant — dans les puits d’essai, alors que le témoin n’a pas de photosensibilisateur. Incuber pour faciliter l’absorption de la primaquine par les macrophages.
Exposez la plaque à la lumière ultraviolette pour un traitement photodynamique ou PDT.
Dans le puits d’essai, la primaquine forme des cations radicaux qui interagissent avec l’oxygène moléculaire, produisant des espèces réactives de l’oxygène, ou ROS.
Les ROS induisent la mort fongique, tandis que les enzymes antioxydantes des macrophages neutralisent les ROS, prévenant ainsi les dommages cellulaires.
Perméabiliser les macrophages, libérant des cellules fongiques.
Répartissez le contenu cellulaire dilué sur des plaques de gélose sélectives, produisant des colonies fongiques distinctes.
Un nombre inférieur de colonies sur la plaque d’essai par rapport au témoin indique l’efficacité phagocytaire accrue des macrophages due au traitement photodynamique à la primaquine.
Commencez par une suspension d’une lignée cellulaire de macrophage murin dans un milieu RPMI 1640 complet comme mentionné dans le protocole de texte. Distribuez 100 microlitres de cette suspension cellulaire dans les puits d’une plaque de culture stérile à fond plat de 96 puits. Incuber la plaque pendant la nuit dans un incubateur.
Le lendemain, retirez la plaque de l’incubateur. Remplacez le milieu usagé par 100 microlitres de milieu frais RPMI-1640. Ensuite, versez 100 microlitres de suspension de cellules cryptococciques dans la plaque de culture contenant les macrophages ensemencés.
Pour étudier l’effet photodynamique, préparez les concentrations de travail souhaitées du photosensibilisateur. Ajoutez 100 microlitres de solution de travail dans la plaque pré-ensemencée de macrophages et de cellules cryptococciques.
Incuber la plaque dans l’obscurité pour que les cellules réagissent avec le médicament. Après l’incubation, exposez les plaques à la lumière UV pendant deux minutes.
Après avoir initié le traitement photodynamique, incuber les plaques de culture pendant 18 heures. Après l’incubation, retirez le surnageant et lavez les cellules avec 200 microlitres de solution tampon de phosphate
.
Ajoutez 300 microlitres de Triton X-100 à 0,1 % dans les puits et incubez à température ambiante pendant 10 minutes.
Aspirez le contenu de chaque puits et distribuez-le dans des tubes en plastique stériles individuels de 1,5 millilitre. Diluez les cellules 10 fois avec de l’eau distillée et pipetez 50 microlitres de la dilution sur des plaques individuelles de gélose levure-malt-extrait de malt.
Utilisez une méthode de plaque étalée pour créer une pelouse confluente de cellules à la surface de la plaque de gélose. Incuber les plaques pendant 48 heures. Comptez les unités formant colonies sur les plaques de gélose.