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Prenez des dilutions en série d’anticorps spécifiques du cytomégalovirus humain, ou HCMV.
Lors de l’ajout de HCMV, les anticorps se lient à la glycoprotéine B sur l’enveloppe virale, neutralisant ainsi le virus.
Transférez le mélange sur des fibroblastes humains et incuberez.
Un complexe glycoprotéique trimère sur les virus non neutralisés se lie à des récepteurs cellulaires spécifiques, déclenchant la fusion membranaire virus-hôte médiée par la glycoprotéine B et libérant la nucléocapside contenant de l’ADN génomique à l’intérieur.
Le génome libéré pénètre dans le noyau, codant pour des protéines immédiatement localisées dans le nuclé, ou IE.
La neutralisation des anticorps empêche l’entrée virale dans les cellules.
Supprimez les virus non internalisés. Traiter à l’éthanol à une température négative pour fixer et perméabiliser les cellules.
Introduire un anticorps primaire qui se lie aux protéines IE.
Ajoutez un anticorps secondaire conjugué au fluorophore qui se lie à l’anticorps primaire et un colorant fluorescent qui se lie à l’ADN.
Au microscope, détectez les cellules à double coloration infectées par un virus. Calculez le pourcentage de cellules infectées pour déterminer la neutralisation du virus aux différentes concentrations d’anticorps.
La veille de l’expérience, préparez les cellules cibles pour l’infection en cultivant des cellules de fibroblastes, cultivées dans des milieux complets, constitués de DMEM complété par 10 % de FBS, dans une plaque stérile à 96 puits.
Après 24 heures, préparez le mélange virus-anticorps en ajoutant 90 microlitres de solution d’anticorps diluée dans les puits d’une plaque fraîche à 96 puits. Préparez des dilutions en série de la solution d’anticorps à l’aide d’un milieu complet.
De plus, ajoutez 60 microlitres de la solution virale, prédiluée dans un milieu complet, dans chaque puits contenant des anticorps pour générer diverses concentrations de mélanges virus-anticorps et incuber.
Maintenant, pour infecter les cellules cibles, prenez la plaque ensemencée de fibroblastes. Ajoutez 100 microlitres de différentes concentrations du mélange virus-anticorps aux cellules et incubez la plaque cible pendant 24 heures.
Après 24 heures, pour détecter l’infection virale par immunofluorescence, fixez les cellules avec de l’éthanol absolu et incubez-les dans un congélateur à -20 degrés Celsius. Après la fixation, passez aux étapes suivantes sur la paillasse du laboratoire.
Pipeter 100 μl de l’anticorps primaire dans tous les puits de la plaque. Placez l’assiette à température ambiante pendant une heure.
Retirez la solution d’anticorps primaire des puits. Ajouter un mélange d’anticorps secondaires conjugués au fluorophore et de solution DAPI dans tous les puits. Incuber l’assiette pendant une heure dans l’obscurité et laver l’assiette.
Pour quantifier l’infection, visualisez la plaque au microscope et acquérez des images à l’aide des canaux bleu et rouge. Calculez le pourcentage d’infection par puits, comme indiqué dans le protocole textuel.