JoVE Encyclopedia of Experiments
Immunologie
0 vues • 4:21 min • July 8th, 2025
Prenez les cellules tueuses naturelles, ou NK. Ajoutez des vecteurs lentiviraux comprenant des enzymes virales et des molécules d’ARN modifiées qui codent pour une protéine fluorescente.
Ajoutez des polymères cationiques et sédimentez les cellules et les virus.
Les polymères neutralisent les charges négatives à la fois sur le virus et sur la cellule, facilitant ainsi la fusion membranaire.
L’ARN est transcrit inversement dans l’ADN et intégré dans le génome de l’hôte, permettant l’expression des protéines fluorescentes.
Ajoutez un milieu complété par la cytokine interleukine-2, ou IL-2.
L’IL-2 déclenche une signalisation intracellulaire qui favorise la survie et la prolifération des cellules NK tout en préservant l’expression des transgènes.
Transférez le mélange dans un puits recouvert d’anticorps qui se lient à des immunorécepteurs spécifiques sur les cellules NK, les déclenchant pour libérer des cytokines antivirales.
Quantifier les cytokines libérées pour évaluer l’impact du polymère sur la production de cytokines.
Ajoutez des colorants fluorescents pour marquer l’ADN des cellules nécrotiques.
À l’aide de la cytométrie en flux, identifiez les cellules vivantes et quantifiez le signal de la protéine fluorescente pour mesurer l’efficacité de la transduction induite par les polymères.
Mettre en suspension des cellules NK primaires de souris ou d’humains dans les puits d’une plaque de 24 puits à 0,5 x10,5 5 par millilitre de milieu avec un surnageant de lentivirus GFP à une MOY de 5, 10 et 20 et en présence de polybrène, de sulfate de protamine ou de dextran.
Centrifugez les plaques à 1 000 fois g pendant 60 minutes. Ensuite, sans décanter le surnageant, cultivez les cellules dans un incubateur à 37 degrés Celsius imprégné de 5,2 % de dioxyde de carbone pendant la nuit. Une fois que les cellules ont été lavées avec 10 millilitres de PBS, utilisez 2 millilitres de milieu RPMI 1640 avec de l’IL-2 pour remettre les cellules en suspension.
La veille de la récolte des cellules, enduisez des plaques de polystyrène à 96 puits hautement absorbant les protéines avec 2,5 microgrammes par millilitre d’anticorps monoclonaux anti-NKG2D, et incubez les plaques à température ambiante ou au réfrigérateur pendant la nuit. Le lendemain, utilisez 100 microlitres de PBS pour laver chaque puits trois fois.
Récoltez les cellules NK traduites en tapotant d’abord doucement les plaques. Ajoutez ensuite 100 microlitres de cellules dans chaque puits des plaques de 96 puits. 16 à 18 heures après l’activation, utilisez une pipette multicanaux pour recueillir les surnageants. Ensuite, à l’aide des cytokines recombinantes d’un kit ELISA, générez une courbe standard et quantifiez les cytokines telles que l’interféron gamma dans le surnageant.
Pour tester la viabilité des cellules NK, quatre jours après la transduction, lavez deux fois les cellules avec 10 millilitres de PBS froid. Ensuite, récoltez les cellules et utilisez une annexine-V/7-amino-actinomycine D pour les colorer. Utilisez la cytométrie en flux pour déterminer le pourcentage de cellules nécrotiques parmi les cellules NK transformées et analysez les données selon le protocole de texte.
Cet article traite de la transduction de cellules natural killer (NK) à l'aide de vecteurs de lentivirus et de polymères cationiques. Ce processus améliore la survie et la prolifération des cellules NK tout en permettant l'expression d'une protéine fluorescente.
L'amélioration de l'efficacité de la transduction lentivirale dans les cellules natural killer (NK) primaires permet de surmonter un goulot d'étranglement majeur dans le développement de l'immunothérapie, où de faibles taux de transfection limitent la validation fonctionnelle des récepteurs et transgènes modifiés. En utilisant des polymères cationiques pour franchir les barrières électrostatiques, cette méthode renforce la fiabilité prédictive de l'évaluation des cibles et soutient des procédés évolutifs pour les candidats thérapeutiques basés sur les cellules NK. L'approche permet une évaluation quantitative de l'expression du transgène et de la fonctionnalité des cytokines, éclairant ainsi les décisions précoces de poursuite ou d'abandon dans l'avancement des pipelines d'immunothérapie.
Cette méthode s'inscrit dans la continuité découverte-préclinique en permettant une livraison stable de gènes dans les cellules NK primaires, une étape cruciale pour valider les récepteurs antigéniques chimériques (CAR) ou les transgènes immunomodulateurs avant les tests in vivo.
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Dernière mise à jour : 22 août 2026