Imagerie des cellules bêta transgéniques chez une souris immunodéficiente confrontée à des splénocytes diabétiques

0 vues4:16 min • July 8th, 2025

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Commencez par une souris immunodéficiente au NOD restreinte, dépourvue de cellules immunitaires et sujette au diabète.

Cette souris est pré-injectée avec des cellules bêta pancréatiques transgéniques qui produisent de l’insuline et expriment les enzymes luciférase.

Prenez une seringue contenant des splénocytes prétraités dérivés d’une souris diabétique. Les splénocytes comprennent des lymphocytes T autoréactifs capables de reconnaître les peptides d’insuline.

Administrez ces splénocytes dans la veine de la queue de la souris.

Les splénocytes circulent et atteignent le pancréas, où les lymphocytes T autoréactifs reconnaissent les peptides d’insuline sur les cellules bêta et s’activent.

Ces cellules activées libèrent des molécules cytotoxiques, initiant la destruction des cellules bêta par autoréactivité.

Ensuite, injectez un substrat de luciférase dans le péritoine de la souris. Le substrat se diffuse dans cette région et pénètre dans les cellules bêta.

À l’intérieur des cellules, le substrat interagit avec les enzymes luciférase, produisant de la luminescence.

À l’aide d’un système d’imagerie bioluminescente, capturez des images à intervalles réguliers

Une diminution progressive de la luminescence indique la destruction des cellules bêta transgéniques en raison de l’autoréactivité.

Réchauffez le corps des souris receveuses adultes, NOD-scid, en utilisant une lampe chauffante pendant 5 à 10 minutes pour vasodiler les veines. Remettre en suspension la solution des splénocytes avant chaque injection. Pour chaque souris, aspirez 100 microlitres de suspension des splénocytes préchauffés dans la seringue. Assurez-vous qu’il n’y a pas de bulles d’air.

Ensuite, placez la souris dans le dispositif de retenue avant de capturer sa queue avec la main non dominante. Localisez l’une des deux nervures latérales de la queue. Faites pivoter doucement la queue si nécessaire. Essuyez la queue avec une lingette désinfectante contenant 70 % d’alcool isopropylique.

À l’aide de la main dominante, insérez l’aiguille à un angle aigu dans la région centrale de la queue. Avec le biseau de l’aiguille vers le haut, faites glisser l’aiguille de quelques millimètres dans la peau. Ensuite, appliquez une légère pression sur la seringue pour injecter la suspension des splénocytes. Ne laissez pas l’aiguille se déplacer davantage vers l’intérieur ou vers l’extérieur lors de l’injection. Les injections réussies ne donnent pas lieu à une contre-pression pendant l’injection et sont indiquées par un flux de sang transparent ou blanc immédiatement après l’injection.

Après l’injection, relâchez doucement l’aiguille hors de la veine et appliquez une légère pression sur la queue avec une lingette désinfectante jusqu’à ce que le saignement cesse. Libérez la souris du dispositif de contention et transférez-la doucement dans une cage fraîchement préparée. Au moins 5 minutes avant l’imagerie, injectez à la souris par voie intrapéritonéale la dose appropriée de solution de D-luciférine, à l’aide d’une seringue de 1 millilitre et d’une aiguille de calibre 26.

Après vous être connecté au logiciel d’imagerie, dans le panneau de configuration, sélectionnez Initialiser. Pour enregistrer automatiquement les données d’imagerie, cliquez sur Acquisition puis sur Enregistrer automatiquement dans et créez les dossiers appropriés sur l’ordinateur. Une fois l’initialisation de l’instrument terminée, réglez le temps d’exposition sur une minute.

Placez la souris sur l’instrument d’imagerie en position couchée, les membres écartés, et guidez sa tête dans le cône nasal. Aplatissez doucement la souris en appuyant sur le centre de son dos avec les deux mains, puis en écartant les mains vers l’extérieur et les unes pour les autres. Ensuite, dans le logiciel d’imagerie, sélectionnez Acquérir et enregistrez tous les détails pertinents de l’expérience.

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Dernière mise à jour : 15 août 2026