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Neurosciences
0 vues • 2:41 min • July 8th, 2025
Commencez par une culture de cellules souches embryonnaires de souris.
Lavez les cellules avec un tampon pour éliminer les fluides et les débris cellulaires.
Ajouter un cocktail d’enzymes pour détacher les cellules de la surface du ballon.
Ajoutez un milieu pour arrêter l’activité enzymatique et rassemblez les cellules dans un tube. Centrifuger et jeter le surnageant contenant des enzymes.
Remettre les cellules en suspension dans des milieux de culture neuronale sans sérum.
Ensemencez les cellules dans des puits à plaques multipuits recouverts de gélatine.
couver. Les cellules souches embryonnaires adhèrent à la surface recouverte de gélatine. Les constituants du milieu, y compris les nutriments, les facteurs de croissance et les hormones, facilitent la prolifération cellulaire et forment une monocouche.
À cette densité cellulaire, les cellules souches embryonnaires produisent et libèrent des niveaux optimaux de facteurs de croissance et de cytokines.
Ces molécules déclenchent des voies de signalisation intracellulaires, facilitant la différenciation des cellules souches embryonnaires en progéniteurs neuraux.
Mélangez la gélatine avec 500 millilitres de PBS chaud et couvrez le fond du récipient de culture cellulaire avec juste assez de solution pour enrober la surface. Pendant que la gélatine enrobe, rincez la culture sous-confluente de cellules souches embryonnaires de souris deux fois dans du PBS. Ensuite, ajoutez 1 millilitre de réactif de dissociation à la culture.
Après deux à cinq minutes, tapotez le récipient pour déloger la monocouche en une suspension unicellulaire et collectez la culture dans un total de 10 millilitres de milieu et de réactif de dissociation cellulaire.
Transférez les cellules dans un tube conique de 15 millilitres et faites-les tourner dans une centrifugeuse. Ensuite, après une aspiration soigneuse du surnageant, remettre la pastille en suspension dans 10 millilitres de N2B27 préchauffé en pipetant contre le côté du tube pour éviter de créer des bulles.
Maintenant, comptez les cellules enregistrant la concentration et remettez-les en suspension au nombre approprié de cellules par unité de volume par puits en N2B27 préchauffé selon le tableau. Ensuite, aspirez la gélatine du récipient de culture et plaquez les cellules sans faire tourner le récipient.
Placez les cultures dans un incubateur humide à 37 degrés Celsius et 5 % de dioxyde de carbone, en remplaçant le milieu tous les un à deux jours par du N2B27 frais.
Cet article décrit le processus de différenciation de cellules souches embryonnaires de souris en progéniteurs neuronaux. Le protocole comprend le détachement des cellules, leur resuspension et leur mise en culture sur des surfaces revêtues de gélatine afin de favoriser l'adhérence et la croissance.
La mise en place d'une génération fiable de progéniteurs neuronaux à partir de cellules souches pluripotentes permet une détection mécanistique des risques lors de la validation de cibles neurodégénératives. Cette approche en monocouche sans sérum renforce la fiabilité prédictive en réduisant la variabilité biologique au cours des premières étapes des processus de découverte. La méthode offre un système reproductible et évolutive pour l'analyse des voies de signalisation et le criblage de composés candidats dans la découverte de médicaments du système nerveux central.
Cette méthode s'inscrit dans le continuum de découverte allant de la validation de la cible à l'identification de composés promoteurs, permettant une évaluation précoce des effets des composés sur les voies de différenciation neuronale.
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Dernière mise à jour : 29 août 2026