Induction in vitro de jonctions neuromusculaires à partir de cellules souches pluripotentes induites par l’homme modifiées

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Commencez par des iPSC humaines modifiées contenant un gène inductible à la doxycycline codant pour la différenciation des myoblastes ou à la protéine MYOD dans un milieu de cellules souches contenant des inhibiteurs de la rho-kinase.

Transférez les cellules sur des plaques revêtues d’ECM et incubez pour favoriser la fixation des cellules.

Pendant ce temps, l’inhibiteur inactive les enzymes Rho-kinases intracellulaires, améliorant ainsi la viabilité cellulaire.

Remplacez le milieu par un milieu de cellules souches contenant de la doxycycline.

La doxycycline pénètre dans les cellules et se lie aux protéines activatrices. Ces complexes se lient au promoteur, induisant l’expression génique dans certaines cellules et produisant des protéines MYOD, qui déclenchent la différenciation des cellules souches en cellules musculaires.

Traitez les cellules avec un milieu de différenciation myogénique contenant des facteurs de différenciation myogénique pour favoriser la formation de myotubes, une cellule musculaire multinucléée.

Plus tard, introduisez un milieu d’induction neuronale avec des facteurs de croissance neuronale.

Ces facteurs différencient les iPSC restantes en motoneurones et en cellules de Schwann qui forment une gaine de myéline autour des neurones.

Enfin, remplacez le milieu par un milieu de jonction neuromusculaire pour favoriser les connexions entre le motoneurone et le myotube, formant des jonctions neuromusculaires.

Lavez les cellules avec 3 millilitres de PBS avant d’ajouter 1 millilitre de solution de décollement cellulaire dans une boîte de Pétri. Après 10 minutes à 37 degrés Celsius, ajoutez 3 millilitres de milieu de cellules souches embryonnaires de primate dans chaque puits et pipetez doucement trois fois pour dissocier les cellules des lamelles.

Ensuite, mettez en commun la cellule souche détachée contenant des surnageants dans un tube conique de 50 millilitres pour la centrifugation, et remettez en suspension la pastille de cellules souches dans 3 millilitres de milieu de cellules souches embryonnaires de primate frais complété par 10 micromolaires Y27632 inhibiteur de ROCK pour le comptage.

Ensuite, diluez les cellules à 2 x 105 cellules par millilitre de milieu, complétées par une concentration d’inhibiteur de ROCK, et retournez 2 millilitres de cellules dans chaque lamelle dans chaque puits de la plaque à 6 puits recouverte d’une matrice extracellulaire.

Après 24 heures, remplacez le surnageant dans chaque puits par 2 millilitres de milieu de cellules souches embryonnaires de primate frais complété par 1 microgramme par millilitre de doxycycline, et remettez la plaque dans l’incubateur de culture cellulaire pendant 24 heures.

À la fin de l’incubation, remplacez les surnageants par 2 millilitres de milieu de différenciation complété par de la doxycycline par puits, et remettez la plaque dans l’incubateur de culture cellulaire pendant 10 jours.

À la fin de l’incubation, remplacez les surnageants par 2 millilitres de milieu de différenciation myogénique complété par de la doxycycline par puits, et remettez la plaque dans l’incubateur de culture cellulaire pendant 10 jours supplémentaires. À la fin de l’incubation, remplacez les surnageants par 2 millilitres de milieu de jonction neuromusculaire par puits, et retournez la plaque dans l’incubateur de culture cellulaire pendant 30 jours.

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Mesurer la fonctionnalité jonction neuromusculaire

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Dernière mise à jour : 1 août 2026