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Neurosciences
0 vues • 3:42 min • July 8th, 2025
Prenez des fragments d’hippocampe de souris adultes perfusés dans un tube de dissociation contenant de la papaïne et de la DNase.
Placez le tube sur un dissociateur mécanique.
Le dissociateur désintègre mécaniquement les tissus, relâchant les cellules, y compris les neurones et les cellules gliales.
La papaïne décompose la matrice extracellulaire du tissu, libérant des cellules. La DNase dégrade l’ADN contaminant.
Ajouter un tampon contenant de la BSA, inactivant les enzymes.
Passez la suspension dans une crépine pour enlever les gros débris.
Centrifuger le filtrat. Jetez le surnageant riche en enzymes.
Remettez les cellules en suspension dans le tampon et transférez-les dans un tube frais.
Ajoutez un média à gradient de densité, mélangez et superposez le mélange avec un tampon.
Lors de la centrifugation, les cellules et les débris forment des couches distinctes en fonction de leur densité.
Retirez la couche tampon supérieure et la couche intermédiaire de débris.
Ajoutez du tampon à la couche inférieure contenant les cellules et mélangez. Centrifuger et jeter le surnageant contenant le milieu à gradient de densité.
Remettre en suspension les cellules de l’hippocampe dans un tampon pour une analyse plus approfondie.
À l’aide d’une pince, transférez les morceaux de tissu de l’hippocampe dans un tube C et ajoutez 30 microlitres de mélange d’enzymes 2 dans le tube. Après avoir tourné le capuchon et serré jusqu’à ce qu’il s’enclenche, placez le tube dans un dissociateur et exécutez le programme approprié. Pendant que le programme est en cours, pré-mouillez une crépine à cellules de 70 microns placée sur un tube conique de 50 millilitres avec 2 millilitres de tampon BSA.
Une fois le programme de dissociation terminé, ajoutez 4 millilitres de tampon BSA au tissu dissocié et filtrez le mélange à travers la passoire cellulaire sur le tube conique de 50 millilitres. Ensuite, ajoutez 10 millilitres de DPBS dans le tube C. Fermez ensuite le tube, faites tourner doucement la solution et filtrez-la à travers la crépine de cellule sur le tube conique de 50 millilitres. Centrifuger la suspension de cellules filtrées. Jetez le surnageant sans déranger la pastille et stockez la pastille.
Pour l’élimination des débris, remettez la pastille en suspension avec 1 550 microlitres de DPBS froid et transférez la suspension dans un tube conique de 15 millilitres étiqueté. Ensuite, ajoutez 450 microlitres de solution d’élimination des débris froids et pipetez de haut en bas. Recouvrir doucement la suspension cellulaire avec 1 millilitre de DPBS froid, en maintenant l’embout contre la paroi du tube conique. Répétez la procédure jusqu’à ce que le revêtement total soit de 2 millilitres.
Ensuite, centrifugez la suspension à 3 000 fois g pendant 10 minutes avec une accélération maximale et un freinage complet. Aspirez la couche supérieure. Ensuite, balayez l’extrémité de la pipette d’avant en arrière pour aspirer la couche intermédiaire blanche. Retirez autant de couche intermédiaire que possible sans déranger la couche inférieure. Ensuite, ajoutez 2 millilitres de DPBS froid et pipetez de haut en bas pour mélanger. Ensuite, centrifugez la suspension à 1 000 fois g pendant 10 minutes avec une accélération maximale et un freinage complet. Après la centrifugation, jetez le surnageant et remettez le granulé en suspension dans un tampon BSA de 1 millilitre.
Cet article décrit un protocole d'isolement de cellules hippocampiques à partir de tissu de souris adulte en utilisant une dissociation enzymatique et une centrifugation sur gradient de densité. La méthode vise à obtenir des neurones et des cellules gliales viables pour des analyses ultérieures.
Obtenir des suspensions viables de cellules individuelles à partir de tissus complexes comme l'hippocampe est essentiel pour les applications en aval dans la validation de cibles et le criblage phénotypique. Ce protocole permet l'isolement reproductible de neurones et de cellules gliales, soutenant ainsi la réduction des risques mécanistiques dans la découverte de médicaments en neurosciences. La méthode fournit un système pertinent pour évaluer les effets des composés sur la fonction cellulaire et la modulation des voies métaboliques.
Cette méthode s'inscrit dans le continuum de découverte allant du test d'hypothèses ciblées au développement de tests, en fournissant une étape fiable de préparation cellulaire pour la validation fonctionnelle.
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Dernière mise à jour : 22 août 2026