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La culture a immortalisé les cellules progénitrices otiques multipotentes, ou iMOP, dans les milieux.
Les facteurs de croissance dans les milieux facilitent la prolifération de l’iMOP et la formation de colonies, créant ainsi des otosphères.
Collectez les otosphères et laissez-les se déposer par gravité.
Retirer le média et ajouter un milieu de différenciation dépourvu de facteurs de croissance. Plaquez les otosphères.
L’absence de facteurs de croissance initie la différenciation d’iMOP en cellules épithéliales sensorielles.
Collectez les otosphères différenciés et laissez-les se déposer.
Retirez le support et ajoutez un fixateur pour préserver la morphologie cellulaire.
Ensuite, ajoutez un détergent pour perméabiliser les membranes cellulaires et nucléaires.
Ajoutez un tampon de blocage pour empêcher la liaison d’anticorps non spécifiques.
Introduire des anticorps primaires ciblant un marqueur de différenciation spécifique.
Ajoutez des anticorps secondaires conjugués aux fluorophores ciblant les anticorps primaires, de la phalloïdine marquée par fluorescence pour colorer l’actine et un colorant de liaison à l’ADN pour colorer les noyaux.
Montez les otosphères.
À l’aide de la microscopie à fluorescence, visualisez la coloration pour confirmer la différenciation iMOP.
Trois jours après le placage, utilisez la sédimentation par gravité pour recueillir les otosphères comme indiqué précédemment. Procédez à l’aspiration du surnageant et remettez doucement les cellules en suspension dans 2 millilitres de milieu de différenciation épithéliale sensorielle. Ensuite, utilisez une pipette de gros calibre de 10 millilitres pour transférer les otosphères dans une nouvelle parabole de 60 millimètres. Différenciez les otosphères pendant 10 jours, en ajoutant 2 millilitres de milieu de différenciation frais à la culture tous les deux jours.
Ensuite, récoltez à nouveau les otosphères par gravité, sédimentation et aspirez le milieu usé. Ensuite, fixez les otosphères dans du paraformaldéhyde à 4 % dans 1X PBS pendant 15 minutes à température ambiante. Ensuite, retirez la solution de formaldéhyde et lavez les cellules dans du 1X PBS contenant 0,1 % de Triton X-100. Procédez en bloquant les otosphères dans 1X PBS, complété par 10 % de sérum de chèvre et 0,1 % de Triton X-100.
Au bout d’une heure, remplacez le tampon de blocage par celui contenant la dilution appropriée de l’anticorps Cdkn1b ou Cdh1. Ensuite, incubez les cellules dans l’anticorps primaire pendant la nuit à 4 degrés Celsius, et le lendemain, poursuivez l’immunocoloration à l’aide d’anticorps secondaires marqués par fluorescence, de la phalloïdine et de Hoechst, comme décrit ailleurs.
Pour préparer l’imagerie, placez le support de montage sur une lame de verre, puis introduisez les otosphères colorées dans le support. Ensuite, posez une lamelle sur l’échantillon. Après avoir laissé sécher le support de montage pendant la nuit à 4 degrés Celsius, placez la lame sur la platine d’un microscope inversé équipé d’une caméra CCD 16 bits. À l’aide de l’objectif d’air 20X 0,75, acquérez des images d’épifluorescence en collectant des données à partir des canaux bleu, vert, rouge et infrarouge.