JoVE Encyclopedia of Experiments
Neurosciences
0 vues • 3:10 min • July 8th, 2025
Prenez une tranche de cerveau de souris immobilisée colorée avec un colorant sensible au voltage ou VSD, des molécules fluorescentes qui s’intègrent dans la membrane neuronale et réagissent aux changements de potentiel membranaire.
Placez la tranche dans une chambre d’enregistrement.
Installez l’électrode de terre pour une référence de tension de base.
Ensuite, positionnez les électrodes de stimulation et d’enregistrement sur la tranche.
Appliquez une impulsion électrique.
L’impulsion stimule les neurones, déclenchant l’ouverture des canaux sodiques voltage-dépendants et l’afflux d’ions sodium, entraînant une modification du potentiel membranaire.
Cela induit un potentiel d’action, mesuré par l’électrode enregistreuse, et modifie les propriétés fluorescentes du VSD.
Exposez la tranche de cerveau à une longueur d’onde spécifique pour exciter le VSD et déclencher l’émission de fluorescence.
Après la stimulation, les canaux sodiques se ferment tandis que les canaux potassiques voltage-dépendants s’ouvrent, favorisant l’efflux d’ions potassiques.
Cela modifie à nouveau le potentiel de la membrane et, par conséquent, modifie la fluorescence du VSD.
Enregistrez la fluorescence en temps réel pour représenter visuellement l’activité neuronale.
Pour commencer cette procédure, allumez l’amplificateur, l’ordinateur et la caméra, puis ouvrez le logiciel. Versez l’aCSF dans un tube de 50 millilitres et faites-le bouillir avec du carbogène. Utilisez une pompe péristaltique pour faire circuler l’aCSF et ajustez le débit à environ un millilitre par minute.
Ensuite, ajustez la hauteur de la pipette d’aspiration de manière à ce que le niveau de liquide à l’intérieur de la chambre d’expérience soit toujours constant. Placez l’électrode de terre dans la chambre. Ensuite, remplissez l’électrode en verre avec une petite quantité d’aCSF et placez-la dans le porte-électrode. Fixez le support à la tige du manipulateur.
À l’aide d’un amplificateur, assurez-vous que la résistance de l’électrode est d’environ 1 mégaohm. Au cours de la session d’enregistrement, transférez une tranche de la chambre humide vers une chambre expérimentale. Appuyez fermement le bord de l’anneau dans le joint torique en silicone. Veillez à ne pas casser la membrane ou le fond de la chambre d’expérience.
Sous le microscope, placez la pointe de l’électrode de stimulation et l’électrode d’enregistrement du potentiel de champ sur la tranche. Vérifiez la réponse évoquée en délivrant un stimulus. Vérifiez que le champ de vision couvre le circuit neuronal droit dans le système d’enregistrement optique.
Ensuite, ajustez l’intensité de la lumière d’excitation à environ 70 % à 80 % de la capacité maximale de la caméra. À l’aide de la source de lumière fluorescente, ajustez la mise au point avec le système d’acquisition. Ensuite, lancez l’enregistrement, et analysez les données dans un logiciel d’acquisition d’images après l’acquisition.
Cet article décrit une méthode d'enregistrement de l'activité neuronale à l'aide de colorants sensibles au voltage (VSD) sur des tranches de cerveau de souris immobilisées. La procédure consiste à stimuler les neurones et à mesurer les variations du potentiel membranaire par émission de fluorescence.
L'enregistrement optique de l'activité neuronale à l'aide de colorants sensibles aux potentiels permet la visualisation en temps réel de la dynamique du potentiel membranaire dans le tissu cérébral, soutenant ainsi la réduction des risques mécanistiques lors de la validation précoce des cibles en neurosciences. Cette approche fournit des lectures quantitatives basées sur la fluorescence, renforçant la fiabilité prédictive de la modulation des voies neuronales et de la pharmacologie à l'échelle des circuits. Elle constitue un pont translationnel entre l'électrophysiologie et l'imagerie pour réduire les risques liés à l'engagement des cibles en découverte de médicaments du système nerveux central.
Cette méthode s'intègre dans la continuité de la découverte, depuis le test d'hypothèses en phase précoce jusqu'à l'identification de composés actifs par des lectures fonctionnelles neuronales, et soutient les travaux précliniques grâce à une mesure cohérente de l'activité.
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Dernière mise à jour : 29 août 2026