JoVE Encyclopedia of Experiments
Neurosciences
0 vues • 5:15 min • July 8th, 2025
Commencez par placer une tranche de cerveau sur un microélectrodearray ou une chambre d’enregistrement MEA remplie de liquide céphalo-rachidien artificiel ou d’un LCR contenant le médicament à l’essai.
Ajustez la position de la tranche et fixez-la avec un ancrage.
Commencer l’écoulement continu du LCRa, contenant un médicament d’essai provoquant des convulsions.
Capturez une image de la tranche.
Sélectionnez les microélectrodes appropriées en contact avec la tranche de cerveau.
Activez l’unité de stimulus et connectez les fils à l’unité MEA.
Enregistrez les signaux de base.
Effectuez un test pour déterminer l’intensité optimale du stimulus.
Maintenant, commencez à délivrer des impulsions électriques.
Ces impulsions stimulent la région cérébrale sélectionnée, induisant une crise artificielle.
Enregistrez l’activité électrique résultante pour capturer les réponses provoquées par les crises.
Une fois que le niveau d’aCSF 4-AP et la température d’enregistrement sont stabilisés comme vous le souhaitez, tournez les robinets de perfusion et d’aspiration en position d’arrêt pour les arrêter temporairement. Transférez rapidement une tranche de cerveau dans la chambre d’enregistrement MEA à l’aide d’une pipette Pasteur en verre inversé.
Ajustez sa position sur la zone d’enregistrement MEA si nécessaire, à l’aide d’une pipette Pasteur enroulée polie au feu ou d’une petite brosse douce et compacte. Placez l’ancre de maintien sur la tranche de cerveau. Redémarrez la perfusion et l’aspiration en remettant leurs robinets d’arrêt en position marche.
Prenez une photo de la tranche de cerveau à l’aide d’une caméra montée sur une platine de microscope inversé. Ensuite, exécutez le script mapMEA sur le logiciel de l’ordinateur pour démarrer l’interface graphique afin de cartographier les électrodes. Cliquez sur le bouton Parcourir pour charger l’image de la tranche de cerveau. Assurez-vous que l’électrode de référence apparaît dans la colonne supérieure de la moitié gauche du MEA. Cliquez ensuite sur le bouton Activer le pointeur.
Sélectionnez les électrodes supérieure et inférieure dans la colonne la plus à gauche du réseau pour marquer les coordonnées x et y pour le redressement de l’image et le mappage des électrodes. Dans le menu déroulant Type de tranche, sélectionnez Horizontal. Cochez la case des structures par défaut.
À l’aide des boutons-poussoirs numérotés sous l’image de la tranche de cerveau, sélectionnez les électrodes correspondant au retour sur investissement, puis cliquez sur les boutons-poussoirs correspondants dans le panneau de structure pour les attribuer. Répétez cette étape pour chaque retour sur investissement. Ensuite, appuyez sur le bouton Enregistrer. Le logiciel générera un dossier de résultats contenant un tableau, indiquant les électrodes et les retours sur investissement sélectionnés.
Pour l’étude électrophysiologique, allumez l’unité de stimulus au moins 10 minutes avant le protocole de stimulation pour permettre l’auto-étalonnage et la stabilisation. Ensuite, démarrez le logiciel de contrôle du stimulus et vérifiez que le stimulateur et l’amplificateur MEA sont correctement connectés, comme indiqué par une LED verte sur le panneau principal du logiciel de contrôle du stimulus.
Configurez la stimulation en configuration bipolaire. Connectez l’unité de stimulus au sol. Ensuite, connectez les paires d’électrodes en contact avec la couche cellulaire pyramidale du subiculum proximal CA1 parmi celles cartographiées avec le script mapMEA. Pour acquérir des données, appuyez sur le bouton Lecture dans le panneau principal du logiciel d’enregistrement. Enregistrer au moins quatre décharges ictales.
Ensuite, exécutez un test d’entrée/sortie rapide pour identifier la meilleure intensité de stimulus. Pour ce faire, utilisez le panneau principal pour concevoir une impulsion de courant biphasique positive-négative carrée d’une durée de 100 microsecondes par phase.
Dans l’onglet Amplitude d’impulsion, entrez une amplitude d’impulsion initiale de 100 microampères par phase. Réglez l’impulsion de stimulation à 0,2 hertz ou moins en ajoutant un intervalle d’interimpulsion de 5 secondes ou plus. Augmentez l’amplitude du stimulus de 50 à 100 microampères à chaque essai jusqu’à ce que la stimulation puisse évoquer de manière fiable des événements de type interictal dans les cortex parahippocampiques.
Pour la modulation électrique de l’ectogenèse limbique, programmez l’unité de stimulus pour qu’elle délivre le protocole de stimulation d’intérêt, et utilisez l’amplitude du stimulus identifiée lors du test d’entrée/sortie.
Une fois la stimulation arrêtée, vérifiez la récupération du réseau à l’état de préstimulus en enregistrant au moins quatre décharges ictales.
Cet article décrit un protocole permettant d'induire des crises artificielles dans des tranches de cerveau à l'aide de réseaux de microélectrodes (MEAs). La méthode implique un positionnement précis des tranches cérébrales, une stimulation électrique et l'enregistrement de l'activité neuronale afin d'étudier la dynamique des crises.
Ce protocole permet une déminution mécanistique des risques associés aux cibles liées aux crises en fournissant un modèle électrophysiologique reproductible pour évaluer les effets des composés sur l'hyperexcitabilité du réseau. Il soutient la validation des cibles et le développement de tests dans les circuits de découverte en neuropharmacologie en quantifiant les profils de décharge ictale comme paramètre fonctionnel. La méthode améliore la fiabilité prédictive du criblage précoce de candidats anticonvulsivants grâce à une surveillance standardisée de l'activité neuronale à haute résolution.
La méthode s'inscrit dans le continuum de découverte allant du test d'hypothèses sur une cible à l'identification de candidats jusqu'à l'évaluation de l'efficacité préclinique, permettant une amélioration itérative des candidats anticonvulsivants fondée sur l'électrophysiologie des réseaux.
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Dernière mise à jour : 29 août 2026