Test des connexions monosynaptiques à l’aide de tétradotoxine et de canaux sodiques résistants aux tétrodotoxines

0 vues4:31 min • July 8th, 2025

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Commencez par une installation d’électrophysiologie contenant une mouche transgénique immobilisée avec un cerveau exposé.

Placez une micropipette d’enregistrement près d’un neurone postsynaptique connecté à un neurone présynaptique co-exprimant des canaux sodiques résistants à la tétrodotoxine et des canaux sensibles à la lumière rouge, et à un interneurone avec des canaux sodiques sensibles à la tétrodotoxine.

Appliquez une légère aspiration sur la micropipette pour former un joint étanche avec la membrane neuronale.

Ensuite, appliquez une forte aspiration pour perturber la membrane.

Maintenir un potentiel cellulaire constant. Introduire la tétrodotoxine, qui bloque les canaux sodiques dans l’interneurone, empêchant la transmission du signal de l’interneurone au neurone postsynaptique.

Cependant, les canaux sodiques résistants aux tétrodotoxines ne sont pas affectés, ce qui permet aux ions sodium de pénétrer dans le neurone présynaptique.

Illuminez la mouche avec les impulsions de lumière rouge.

Cela stimule les canaux sensibles à la lumière, permettant aux cations d’affluer et d’activer le neurone présynaptique.

Ce neurone présynaptique transmet directement un signal au neurone postsynaptique sans impliquer l’interneurone, et l’activité électrique qui en résulte confirme la connexion monosynaptique.

Sur le gréement, commencez immédiatement à perfuser la préparation avec du sérum physiologique d’enregistrement bouillonné de carbogène. Utilisez un réservoir de solution saline alimenté par gravité placé au-dessus de la platine du microscope. Pour collecter les déchets salins, utilisez une conduite d’aspiration dans une fiole de deux litres.

Ensuite, chargez la pipette patch avec quatre microlitres de solution d’enregistrement interne et fixez la pipette à un micromanipulateur. Ensuite, mettez à zéro le décalage de l’amplificateur et réglez l’amplificateur pour qu’il délivre des impulsions de test. Ensuite, ajustez l’éclairage oblique IR afin d’obtenir une vue claire du cerveau.

Maintenant, tout en appliquant une pression positive sur la pipette, approchez-vous de la cellule avec la pipette. Lorsqu’il est en contact avec la cellule, relâchez la pression positive pour sceller la pipette à la membrane. Ensuite, réglez le potentiel de maintien de la membrane à -60 millivolts, et la pipette devrait former un joint gigaohm avec la membrane cellulaire. Le courant de maintien doit descendre à un faible niveau sub-picoampère.

Pour obtenir des joints gigaohm constants, assurez-vous de garder votre pipette propre en maintenant une pression positive et évitez de heurter les tissus lorsque vous vous approchez de vos cellules.

Pour continuer, réglez l’amplificateur pour qu’il délivre des impulsions de test de -50 à -60 millivolts. Les impulsions de test révéleront un important transitoire capacitif représentant le courant nécessaire pour charger la pipette patch. Pour supprimer les transitoires capacitifs, ajustez les boutons de compensation de capacité sur l’amplificateur.

Maintenant, appliquez de brèves impulsions de pression négative pour rompre la membrane cellulaire et obtenir la configuration de la cellule entière. Une forte augmentation des transitoires capacitifs indique le succès. Une légère augmentation du courant de maintien doit également être observée. Ensuite, réglez l’amplificateur sur le mode de pince de courant et ajustez le potentiel de la cellule entre -50 et -60 millivolts.

Le potentiel de maintien peut être ajusté pour mettre l’accent sur les connexions excitatrices ou inhibitrices en conséquence. Une fois qu’une connexion est vérifiée, mettez en place la perfusion saline pour la recirculation de la solution saline. Réglez les pompes de manière à ce que le niveau de solution saline dans le bain reste stable.

Ensuite, ajoutez suffisamment de tétrodotoxine au système pour obtenir une concentration finale d’une micromolaire. Cela devrait arrêter l’activité de pointe du neurone patché. Sinon, ajoutez plus de tétrodotoxine au système. Maintenant, appliquez de brèves impulsions de lumière rouge pour activer ce qui est probablement une connexion monosynaptique.

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Dernière mise à jour : 15 août 2026