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Commencez avec une parabole contenant une matrice de silicium qui comporte plusieurs petits canaux connectés aux orifices d’entrée et de sortie.
Injectez la protéine d’essai avec une activité répulsive par l’entrée pour remplir les canaux.
Incuber pour permettre l’adhérence des protéines dans la zone du canal, en formant des zones protéiques d’essai, puis laver.
Retirez la matrice, recouvrez la zone enrobée d’une protéine de contrôle possédant une activité attrayante et incuberez.
Cela facilite l’adhésion de la protéine de contrôle aux zones vides entre les zones de protéines d’essai, créant des zones de protéines de contrôle avec un motif à rayures alternées, puis un lavage.
Ajoutez de la laminine pour enrober la zone rayée, puis lavez.
Ensemencez la zone enrobée d’une suspension unicellulaire de neurones de l’hippocampe et incubez.
Dans la zone protéique testée, les neurones interagissent avec les protéines, déclenchant des signaux qui provoquent la repoussée des neurones, inhibant ainsi leur attachement.
En revanche, les interactions neurone-protéine dans la zone de protéine de contrôle favorisent l’attachement neuronal, soutenant leur croissance et leur extension axonale.
Préparez les protéines recombinantes marquées par fluorescence dans le PBS. Faites 25 microlitres pour chaque plat à rayures. Laissez incuber le mélange à température ambiante pendant 30 minutes. Ensuite, pour chaque plat, chargez une seringue de calibre 22 avec 25 microlitres de protéines diluées et injectez-la par le petit trou sur le côté de la matrice.
Évitez l’injection de bulles d’air dans les matrices car elles perturberont la liaison de vos protéines sur la maladie.
Maintenant, incubez les plats pendant 30 minutes à 37 degrés Celsius dans un incubateur de culture cellulaire. Après l’incubation, déposez 300 microlitres de PBS dans la fente supérieure de chaque matrice. Ensuite, aspirez le PBS à partir d’un petit trou situé sur le côté de chaque matrice pour éliminer toutes les protéines recombinantes non attachées. N’aspirez pas complètement le PBS car les protéines se dessècheront.
Effectuez ce rinçage PBS un total de trois fois. Ensuite, retirez soigneusement la matrice de chaque plat. Ensuite, ajoutez immédiatement environ 100 microlitres de protéines de contrôle sur toute la zone rayée, en créant un enrobage alternatif sur chaque plat.
Ensuite, incubez les plats pendant 30 minutes à 37 degrés Celsius. Pendant ce temps, sur la glace, décongelez la laminine dans le PBS à 20 microgrammes par millilitre. Après 30 minutes, lavez la vaisselle trois fois avec du PBS. Ensuite, enduisez chaque plat d’environ 100 microlitres de laminine froide et remettez les plats dans l’incubateur pendant une autre heure.
Une heure plus tard, utilisez PBS pour laver la vaisselle trois fois de plus. Après le troisième lavage, ajoutez environ 150 microlitres de milieu de culture dans chaque plat. Ensuite, incubez les plats dans un incubateur à 5 % de dioxyde de carbone à 37 degrés Celsius jusqu’à ce qu’ils soient nécessaires à nouveau. Comptez les cellules à l’aide d’un hémocytomètre et faites jouer 10 000 neurones dans 150 microlitres de milieu de culture sur chaque plaque de bande préparée. Déposez soigneusement la suspension pour couvrir toute la région de la bande.