$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Prenez le plasmide souhaité dans un milieu sans sérum. Ce plasmide code pour des protéines spécifiques aux vésicules avec des marqueurs fluorescents.
Dans un autre tube, prélever le réactif de transfection dilué dans un milieu sans sérum.
Mélangez les deux solutions et incuberez.
Le réactif de transfection se combine avec le plasmide, formant un complexe.
Prenez un puits contenant des neurones adhérents dans le milieu avec du sérum. Ajoutez les complexes et incuberez. Le complexe facilite l’entrée du plasmide dans la cellule.
Jetez le support pour éliminer les complexes non internalisés.
Ajoutez du milieu frais, puis incubez.
Le plasmide pénètre dans le noyau pour être transcrit et est ensuite traduit en protéines fluorescentes spécifiques aux vésicules qui marquent les vésicules dans les neurones.
À l’aide d’un microscope à fluorescence à température contrôlée, acquérir des images à des intervalles de temps spécifiés.
Pour analyser les images, définissez les paramètres de suivi.
Identifiez la vésicule d’intérêt et notez ses coordonnées dans chacune des images.
Compilez les données pour visualiser le mouvement de la vésicule.
Dans cette procédure, mélangez 4 microgrammes de plasmide avec 200 microlitres de milieu sans sérum. Dans un tube séparé, diluez huit microlitres de réactif de transfection dans 200 microlitres de milieu sans sérum. Ensuite, incubez la solution pendant 5 minutes à température ambiante. Après cinq minutes, mélangez la solution plasmidique et la solution de réactif de transfection, et incubez le mélange pendant 20 minutes à température ambiante. Ensuite, ajoutez le mélange dans les plats à fond en verre revêtu.
Incuber les neurones à 37 degrés Celsius pendant 30 minutes. Ensuite, remplacez le milieu par 2 millilitres de milieu de culture corticale cérébrale et incubez les neurones à 37 degrés Celsius pendant un à deux jours.
Pour l’imagerie, utilisez un microscope à fluorescence équipé d’une caméra CCD avec les objectifs 40x. Maintenez la température à 37 degrés Celsius à l’aide d’un système d’incubation. Acquérez des images de neurones à raison de 1 image toutes les 5 secondes sur une période de 100 secondes contrôlée par le logiciel d’acquisition d’images.
Pour analyser les images, ouvrez toutes les images séquentielles dans le logiciel ImageJ avec suivi manuel. Pour combiner les images séquentielles, choisissez Image, puis Piles puis Images à empiler, puis cliquez sur OK. Après cela, choisissez Plugins, puis Suivi manuel. Une fenêtre de suivi s’affichera. Cliquez sur la case à cocher Afficher les paramètres et définissez les paramètres de suivi dans la section des paramètres.
Ensuite, cliquez sur Ajouter une piste pour démarrer une nouvelle piste. Après avoir déterminé les vésicules d’intérêt, cliquez sur le centre des signaux dans les images séquentielles pour enregistrer les coordonnées XY. Répétez cette procédure pour collecter les coordonnées XY des vésicules à partir de toutes les images séquentielles. Chaque image passe automatiquement à l’image suivante après la sélection du point de référence.