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Commencez avec des cellules souches embryonnaires humaines dans un milieu de culture.
Incuber pour la prolifération cellulaire et la formation de sphères.
Transférez ces sphères dans un nouveau puits avec un milieu contenant des facteurs de différenciation.
Incuber en secouant doucement. Les facteurs de différenciation poussent les cellules souches vers la lignée neurale.
Remplacez régulièrement la moitié du support.
Remplacez le milieu par un milieu d’induction neurale, puis incubez pour obtenir des progéniteurs neuronaux.
Passez à un milieu riche en facteurs de croissance et incubez pour favoriser la prolifération cellulaire et la formation de rosettes neurales.
Ensuite, culture dans un milieu contenant des inhibiteurs pour bloquer la différenciation cellulaire indésirable.
Remplacez ce milieu par un milieu contenant des facteurs de croissance et des inhibiteurs. Incuber pour induire la différenciation en cellules gliales et neurones primaires.
Plus tard, placez les rosettes neurales sur une membrane hydrophobe dans un puits porteur d’inserts contenant un milieu de maturation riche en inhibiteurs.
Incuber sans secouer pour permettre la maturation des cellules neurales et gliales à une interface air-liquide, formant des organoïdes neuraux.
Distribuer 1 000 000 cellules par micropuits. Centrifugez les cellules à 300 fois g pendant 5 minutes et vérifiez la répartition homogène des cellules dans la plaque à micropuits au microscope. Placez la plaque dans l’incubateur à 37 degrés Celsius pendant la nuit.
Le lendemain, examinez la plaque du micropuits pour vérifier la taille des sphères formées dans chaque micropuits. Transférez les sphères dans une plaque à six puits à l’aide du milieu, complétée par un cocktail d’inhibition double SMAD pour favoriser une induction neuronale rapide. À partir de ce pas, les sphères sont cultivées en rotation à 60 tr/min pour éviter qu’elles ne se collent entre elles ou sur la plaque. Du jour 1 au 4, changez de milieu tous les deux à trois jours avant de réaliser l’induction neuronale.
Du jour 4 au 11, favoriser la prolifération des rosettes neurales dérivées de CSEh en ajoutant de l’EGF et du bFGF à 10 nanogrammes par millilitre au milieu B27, complétés par un cocktail SMAD double. Du jour 11 au 13, cultivez les sphères dans un milieu B27, complété par un inhibiteur de BMP de 0,5 micromolaire. Du 13e au 21e jour, cultivez les sphères dans un milieu B27 complété par du GDNF et du BDNF à 10 nanogrammes par millilitre et 1 inhibiteur micromolaire de la gamma-sécrétase.
Le jour 21, placez un insert de plaque de culture dans un puits d’une nouvelle plaque à six puits. Ensuite, ajoutez 1 millilitre de milieu B27, complété par des facteurs de croissance et des inhibiteurs dans chaque puits sous l’insert de la membrane. Par la suite, plaquez les sphères sur une membrane PTFE hydrophile déposée sur un insert de plaque de culture et changez le milieu tous les deux à trois jours pour les trois semaines suivantes de différenciation. Arrêtez la rotation à partir de cette étape.
La présence de rosettes indique l’initiation de la différenciation neurale. Du 21e au 25e jour, cultivez des organoïdes neuronaux humains dans le même milieu de maturation neuronale. Ensuite, du 25e au 28e jour, ne complétez le milieu B27 qu’avec un inhibiteur de la gamma-sécrétase micromolaire. Du 28e au 39e jour, arrêtez d’ajouter l’inhibiteur de la gamma-sécrétase et continuez la culture d’organoïdes neuraux humains dans un milieu B27 uniquement. Après trois semaines, les organoïdes neuraux sont prêts à être utilisés pour l’implantation du GIC.