Mesure de l’activation des récepteurs odorisants à l’aide d’un dosage cyclique en temps réel de l’adénosine monophosphate

0 vues3:30 min • July 8th, 2025

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Prenez une plaque multipuits contenant des cellules de mammifères transfectées.

Ces cellules expriment le récepteur odorant (OR) du neurone olfactif, un récepteur couplé aux protéines G, ainsi qu’un biocapteur d’AMPc contenant un domaine de liaison à l’AMPc fusionné à une luciférase mutante.

Retirez le milieu et lavez-le avec un tampon pour éliminer le produit résiduel.

Ajoutez un tampon contenant un substrat de biocapteur cAMP. Incuber pour faciliter l’absorption du substrat dans les cellules.

À l’aide d’un lecteur de plaques de chimiluminescence, mesurez la luminescence basale des cellules.

Ajoutez des concentrations croissantes de l’odorisant d’essai dans les puits, en laissant un puits non traité comme témoin.

L’odorisant se lie à la salle d’opération et déclenche une cascade de signalisation qui produit une AMPc.

Cet AMPc se lie au domaine de liaison du biocapteur, activant la luciférase, qui interagit avec le substrat pour émettre de la lumière.

Mesurez la luminescence en temps réel. Une augmentation de la luminescence avec des concentrations plus élevées d’odorant indique l’activation de l’odorisant par l’OR.

Avant la stimulation, observez les cellules transfectées à l’aide d’un microscope à contraste de phase pour assurer une bonne confluence de 50 % à 80 % par puits avant de retourner à l’incubateur. Ensuite, préparez le milieu de stimulation en ajoutant 10 millimolaires d’HEPES et 5 millimolaires de glucose à la solution saline équilibrée de Hank. Décongeler des aliquotes de 55 microlitres d’aliquotes de réactifs de substrat d’analyse AMP cyclique en temps réel sur de la glace.

Préparez une solution d’équilibrage à 2 % en mélangeant 55 microlitres de réactif de substrat et 2 750 microlitres de milieu de stimulation. Après avoir étalé une épaisse couche d’essuie-tout sur le banc, tapotez doucement et à plusieurs reprises l’assiette à l’envers sur les essuie-tout afin que le fluide de transfection soit absorbé par les essuie-tout. Lavez les cellules en pipetant 50 microlitres de milieu de stimulation dans chaque puits.

Tapotez doucement et à plusieurs reprises le milieu de stimulation de la plaque à 96 puits. Pipetez 25 microlitres de solution d’équilibrage à 2 % dans chaque puits et incubez à température ambiante dans l’obscurité pendant 2 heures. Avant la fin du temps d’incubation, diluer les solutions mères odorantes décongelées à la concentration de travail dans le milieu de stimulation.

Avant l’ajout d’odorisant, utilisez un lecteur de plaque de chimiluminescence pour mesurer le niveau de luminescence basale de la plaque. Retirez rapidement la plaque du lecteur de plaques et ajoutez 25 microlitres de dilutions odorantes dans chaque puits. Ensuite, lancez immédiatement la mesure de luminescence continue de tous les puits pendant 20 cycles dans les 30 minutes.

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Dernière mise à jour : 1 août 2026