Détection de la co-localisation de l’orexine et des récepteurs cannabinoïdes chez le poisson-zèbre obèse induit par l’alimentation

0 vues2:31 min • July 8th, 2025

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Dans le cerveau du poisson-zèbre, les neurones expriment l’orexine et les récepteurs cannabinoïdes qui régulent le métabolisme.

Chez les poissons-zèbres obèses induits par l’alimentation, ou DIO, ces récepteurs se co-localisent de plus en plus pour former des hétéromères, modifiant la signalisation en aval et affectant la régulation métabolique.

Prenez des cryosections du tissu cérébral du poisson zèbre témoin et DIO. Lavez les sections avec un tampon pour enlever le support d’enrobage.

Traiter avec un tampon bloquant la perméabilisation pour perméabiliser les membranes cellulaires et masquer les sites de liaison non spécifiques. Laver pour enlever l’excès de tampon.

Incuber avec un cocktail d’anticorps primaires ciblant les récepteurs. Laver pour éliminer les anticorps non liés.

Incuber avec différents anticorps secondaires marqués au fluorophore qui se lient aux anticorps primaires. Laver pour éliminer les anticorps non liés.

Ajoutez un colorant fluorescent de liaison à l’ADN pour marquer le noyau. Ensuite, appliquez un support de montage et scellez les sections avec une lamelle.

À l’aide d’un microscope confocal, détectez la fluorescence de l’anticorps. Une co-localisation accrue des anticorps chez le poisson-zèbre DIO par rapport aux témoins indique une hétéromérisation plus élevée des récepteurs.

Tout d’abord, rincez les sections trois fois pendant 5 minutes chacune avec un tampon de phosphate de 0,1 molaire. Ajoutez le mélange d’anticorps primaires au lutécium PBT et incubez les sections pendant la nuit dans une boîte humide à température ambiante. Le lendemain, rincez les sections trois fois pendant 5 minutes chacune avec un tampon de phosphate 0,1 molaire. Incuber des sections à température ambiante pendant 2 heures dans un mélange approprié d’anticorps secondaires dilués dans du PBT.

Rincez les sections trois fois pendant 5 minutes chacune avec un tampon de phosphate de 0,1 molaire. Dissoudre 1,5 microlitres de DAPI dans 3 millilitres de tampon phosphate pour préparer le colorant nucléaire DAPI. Contre-colorez les sections dans le colorant, puis utilisez un support de montage pour couvrir les lames afin de stabiliser le tissu et de les colorer pour une utilisation à long terme. Les échantillons fluorescents peuvent être stockés dans l’obscurité à 4 degrés Celsius.

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Dernière mise à jour : 22 août 2026