JoVE Encyclopedia of Experiments
Neurosciences
0 vues • 3:05 min • July 8th, 2025
Commencez avec une souris anesthésiée fixée dans un appareil stéréotaxique avec la tête rasée.
Désinfectez le cuir chevelu et faites une incision pour exposer le crâne.
Nettoyez le crâne pour enlever la couche de tissu conjonctif.
À l’aide du point de référence sur le crâne, marquez le site cible et percez un trou.
Prenez une seringue contenant une solution de lysophosphatidylcholine, ou LPC, fixée sur l’appareil stéréotaxique.
Déterminez les coordonnées de deux points d’injection dans la région de la substance blanche du cerveau et positionnez la seringue en conséquence.
Injectez la solution de LPC et maintenez l’aiguille en place pendant un certain temps après l’injection à chaque site.
Suturez l’incision et laissez l’animal récupérer.
Au site d’injection, le LPC interagit directement avec la myéline, perturbant sa structure et provoquant sa dégradation.
Cela provoque un dysfonctionnement neuronal local, établissant ainsi un modèle de démyélinisation focale.
Commencez par connecter une aiguille de calibre 32 à une seringue de cinq microlitres. Prélever 5 microlitres de solution LPC pour la préparation de l’injection. Ensuite, confirmez la profondeur de l’anesthésie de la souris par l’absence de réflexe de pincement des orteils, tandis que la respiration est douce. Positionnez la souris dans un cadre stéréotaxique avec le côté dorsal vers le haut, et fixez la tête avec un cône nasal et une pince à dents.
Fixez la souris à l’appareil stéréotaxique avec des barres d’oreille bilatérales. Assurez-vous que les barres d’oreille sont de niveau et que la tête est horizontale et stable. Désinfectez la peau de la tête en l’essuyant avec de l’iodophore. Ensuite, utilisez un scalpel pour couper une petite incision à environ 1,5 centimètre le long de la ligne médiane du cuir chevelu pour exposer le crâne. Essuyez le crâne avec un coton-tige trempé dans du peroxyde d’hydrogène à 1 % jusqu’à ce que la bregma, la lambda et la fontanelle postérieure soient exposées.
Placez la seringue sur l’appareil stéréotaxique. Assurez-vous du positionnement horizontal de l’animal et localisez le corps calleux. Une fois le site d’injection déterminé, notez les coordonnées et faites une marque avec un marqueur sur le crâne. Percez doucement le site marqué avec une perceuse à crâne. Prenez soin d’éviter tout saignement.
Déplacez lentement l’aiguille jusqu’aux coordonnées données. Pour induire la démyélinisation du corps calleux, injecter 2 microlitres de solution de LPC à chaque site d’injection à un débit de 0,4 microlitre par minute. Après l’injection, gardez l’aiguille dans chaque site pendant 10 minutes supplémentaires. Enfin, suturez la peau avec une suture 4-0 et attendez que l’animal se réveille dans les 10 minutes.
Cet article décrit une méthode permettant d'induire une démyélinisation focale dans le cerveau de la souris à l'aide de lysophosphatidylcholine (LPC). La procédure implique des injections stéréotaxiques précises dans la région de la substance blanche, ce qui permet aux chercheurs d'étudier les effets de la démyélinisation sur la fonction neuronale.
Ce modèle de démyélinisation focale permet une interrogation mécanistique des interactions entre la myéline et les neurones dans un environnement contrôlé in vivo, soutenant ainsi la validation de cibles pour des thérapies neuroprotectrices et remyélinisantes. En offrant une démyélinisation localisée et reproductible, cette méthode réduit la variabilité biologique et renforce la confiance prédictive dans les programmes précoces de découverte axés sur des pathologies démyélinisantes telles que la sclérose en plaques. Le modèle constitue un système pertinent sur le plan pathologique pour minimiser les risques liés aux hypothèses thérapeutiques avant de passer à des criblages phénotypiques complexes ou à des études précliniques d'efficacité.
La méthode s'inscrit dans le continuum de découverte allant de la validation de cibles à l'identification de composés candidats, offrant une plateforme fondée sur la biologie permettant d'évaluer les effets mécanistiques sur l'intégrité de la myéline et des axones avant le criblage phénotypique.
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Dernière mise à jour : 22 août 2026