Modèle d’invasion tumorale basé sur la matrice utilisant la co-culture de glioblastome de microglie

0 vues3:23 min • July 8th, 2025

Commencez par ajouter une suspension froide de glioblastome et de cellules microgliales, chacune colorée avec un colorant fluorescent distinct, dans une solution froide de matrice polymère.

L’état froid empêche la polymérisation prématurée de la matrice.

Ensuite, transférez le mélange dans une chambre poreuse insérée à l’intérieur d’une plaque de culture.

Incuber pour permettre la polymérisation matricielle, formant un gel qui intègre les cellules.

Ajoutez un milieu sans sérum dans l’insert et un milieu de croissance contenant du sérum dans le puits ci-dessous, puis incuber.

Les facteurs chimiques présents dans le sérum favorisent la migration cellulaire vers les milieux riches en sérum.

De plus, la microglie sécrète des molécules de signalisation qui interagissent avec les cellules du glioblastome.

Cela améliore la migration des cellules de glioblastome vers la face inférieure de l’insert poreux, ressemblant à leur migration d’une tumeur vers les tissus environnants.

Retirez les cellules du haut de la chambre.

Maintenant, fixez les cellules restantes avec un fixateur et lavez-les avec un tampon. La fluorescence distincte des cellules aide à suivre la migration cellulaire.

Décongelez le mélange matriciel à quatre degrés Celsius pendant la nuit. Ensuite, préparez une concentration de 10 mg/ml de matrice dans le milieu approprié sur de la glace. Ensuite, récoltez les cellules marquées pour les mettre en suspension dans la matrice, comme indiqué précédemment. Ensuite, pipetez 1,5 fois 10 à la cinquième cellule GL261 d’un volume de 150 microlitres, plus cinq fois 10 à la quatrième cellule microgliale de 50 microlitres dans un tube de microfuge de 1,5 millilitre.

Ajoutez 2 fois 10 à la cinquième cellule GL261 dans un volume de 200 microlitres dans un tube de microfuge séparé de 1,5 millilitre. Faites tourner les cellules dans un microfuge pendant cinq minutes à 120 fois g. Ensuite, mettez les cellules en suspension dans 200 microlitres de matrice froide sur glace.

Pour cette étape, il est crucial d’avoir un bac à glaçons prêt dans la hotte. Conservez les tubes sur pointes à glace au réfrigérateur. Assurez-vous que tout est refroidi afin d’éviter la polymérisation prématurée du gel mature.

Après la remise en suspension, plaquez 50 000 cellules d’un volume de 50 microlitres au centre du compartiment supérieur d’un insert de chambre de pores de 8 microns. Ensuite, incubez-le à 37 degrés Celsius pendant 30 minutes pour permettre la polymérisation. Après 30 minutes, ajoutez 200 microlitres de milieu sans sérum dans la chambre supérieure et 700 microlitres de sérum contenant du milieu de croissance cellulaire dans le puits inférieur.

Après une incubation de 48 heures, retirez les cellules de la partie supérieure de la chambre par aspiration douce. Fixez les chambres comme précédemment, et remplacez le fixateur par 500 microlitres de 1X PBS avant d’imager les cellules.

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Dernière mise à jour : 29 août 2026