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$$\longrightharp{xx}$$,
Commencez avec un cerveau de souris isolé dans un tampon glacé.
Transférez le cerveau dans une matrice cérébrale, avec la face ventrale vers le haut.
Insérez des lames de rasoir pour couper en série la partie antérieure du cerveau.
Soulevez les tranches en tenant les lames ensemble, en laissant la partie postérieure derrière. Séparez les lames de rasoir et placez-les sur une surface refroidie, les tranches de cerveau vers le haut.
Sélectionnez la tranche souhaitée et extrayez la région d’intérêt.
Divisez et émincez le tissu.
Transférez le tissu haché dans un tube contenant du liquide céphalo-rachidien complété par le produit chimique BS3.
Retournez et mélangez le tube pour briser le tissu en petits morceaux, puis incubez en rotation.
BS3, un produit chimique imperméable à la membrane cellulaire, réticulent les protéines de surface neuronales comme les récepteurs GABA, tandis que les récepteurs internes du GABA restent inaltérés.
Ajoutez de la glycine pour éteindre la réaction de réticulation.
L’échantillon est prêt pour l’évaluation des niveaux de récepteurs GABA de surface.
Pour commencer, retirez rapidement le cerveau du crâne de la souris noire 6J C57 euthanasiée. Plongez-le dans une boîte de Pétri contenant du PBS glacé pendant 10 à 15 secondes. Placez le cerveau refroidi dans la matrice cérébrale sur de la glace face à la face ventrale vers le haut. Pour couper le cerveau coronairement, insérez la première lame de rasoir à travers la bordure entre le bulbe olfactif et le pédoncule olfactif. À l’aide de trois à quatre lames de rasoir supplémentaires, coupez en série la partie antérieure du cerveau coronalement à des intervalles de 1 millimètre.
Tenez les lames de rasoir insérées ensemble pour soulever les tranches coronales de la matrice cérébrale, en laissant la partie postérieure derrière. À l’aide d’une pince, séparez les lames de rasoir les unes des autres et placez-les sur la surface plane et refroidie avec la tranche de cerveau vers le haut.
Pour prélever le cortex préfrontal, choisissez les deuxième et troisième tranches postérieures à la première tranche contenant le pédoncule olfactif. À l’aide d’un poinçon de tissu ou d’une pince, retirez la région souhaitée. Mettez le mouchoir sur la lame de rasoir refroidie et divisez-le uniformément en deux morceaux. À l’aide de la pointe fine d’une pince, coupez chaque tissu en morceaux sur la lame de rasoir en effectuant plusieurs mouvements verticaux. Remplissez le tube étiqueté pré-réfrigéré contenant du liquide céphalo-rachidien artificiel avec 30 microlitres de solution BS3. Ensuite, transférez immédiatement les tissus hachés dans le tube souhaité.
Pour une réaction de réticulation, retournez le tube contenant le tissu et la solution pour briser les morceaux de tissu en petits morceaux. Incuber les échantillons sur le rotateur de tube à 4 degrés Celsius pendant 30 minutes à 2 heures, et noter l’heure de début de l’incubation BS3 pour chaque tube. Ensuite, éteignez la réaction avec 78 microlitres de glycine 1 molaire. Incuber davantage pendant 10 minutes à 4 degrés Celsius avec une rotation constante, et notez l’heure de début et de fin de la trempe.