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Prenez des protéines de membrane cellulaire dans des tissus cérébraux de souris.
Ces protéines présentent une modification post-traductionnelle avec des groupes palmitoyle, un acide gras, attachés aux résidus de cystéine.
Ajoutez un tampon réducteur et incubez à haute température pour rompre les liaisons entre les cystéines non palmitoylées, en les exposant.
Incuber avec un réactif bloquant qui se lie aux cystéines exposées, ne laissant que les cystéines palmitoylées réactives.
Transférez la solution, mélangez-la avec du chloroforme, du méthanol et de l’eau déminéralisée, centrifugez-la pour précipiter les protéines et éliminez toutes les impuretés. Ensuite, ajoutez du méthanol, centrifugez et jetez tous les contaminants restants.
Ajoutez un tampon, du sonicate pour solubiliser la pastille, puis centrifugez et éliminez les matériaux insolubles.
Appliquez un réactif de clivage pour éliminer les groupes palmitoyle des cystéines palmitoylées.
Répétez la précipitation du chloroforme-méthanol et éliminez toutes les impuretés.
Incuber avec un polymère qui se lie aux cystéines débloquées, aidant à identifier les protéines palmitoylées.
Répétez la précipitation du chloroforme-méthanol et éliminez tous les polymères non liés.
Remettre la pastille en suspension pour une analyse plus approfondie de l’état de palmitoylation des protéines isolées.
Tout d’abord, perturbez les liaisons disulfure en incubant la protéine solubilisée dans 25 microlitres de PTCE, pendant 60 minutes à 55 degrés Celsius. Ensuite, bloquez les cystéines libres en incubant la solution avec 12,5 microlitres de la solution mère de NEM pendant trois heures à température ambiante.
Ensuite, commencez le processus de précipitation du chloroforme-méthanol. Transférez la solution protéique du tube de 1,5 millilitre dans un tube en polypropylène ou en verre qui peut être centrifugé dans un rotor à godets oscillants à vitesse modeste. Ajoutez 2 millilitres de méthanol et tourbillonnez brièvement. Ajouter 1 millilitre de chloroforme et agiter brièvement. Ensuite, ajoutez 1,5 millilitres d’eau déminéralisée et agitez à nouveau brièvement.
Si nécessaire, retournez le tube pour assurer un mélange complet. Centrifugez les échantillons à 3 000 fois G et 25 degrés Celsius pendant 30 minutes dans un rotor à godets oscillants. Retirez et jetez soigneusement la phase supérieure de la solution dans un tube. Ajouter 1,5 millilitre de méthanol. Mélangez doucement mais soigneusement par inversion douce du tube, en faisant attention de ne pas fragmenter la crêpe protéinée opaque.
Centrifugez l’échantillon à 3 000 fois G et 25 degrés Celsius pendant 10 minutes dans un rotor à godets oscillants. À l’aide d’une pipette sérologique en verre, prélever autant que possible la phase supérieure de la solution sans déranger la galette protéinée. Rincez soigneusement le granulé avec 1 millilitre de méthanol et laissez-le sécher à l’air libre pendant au moins 10 minutes.
Une fois la précipitation du chloroforme-méthanol terminée, commencez le clivage des liaisons palmitoyl thioester en remettant en suspension le précipité protéique dans 125 microlitres de tampon A. Transférez dans un nouveau tube de 1,5 millilitre. Soniquez brièvement le tube, puis centrifugez-le à 13 000 fois G ou plus et à 25 degrés Celsius pendant 10 minutes pour éliminer les matériaux insolubles.
Transférez la protéine solubilisée dans de nouveaux tubes de 1,5 millilitre et ajoutez 375 microlitres de tampon H ou de tampon T. Après avoir incubé les échantillons pendant 60 minutes à température ambiante, répétez la précipitation au chloroforme-méthanol. Pour ajouter du mPEG à des cystéines non protégées, commencez par remettre la pastille en suspension dans 100 microlitres de tampon A contenant 10 millimolaires de TCEP.
Transférez ensuite la suspension dans un tube de 1,5 millilitre. Ajouter 25 microlitres de solution mère mPEG 5k et mélanger par pipetage. Incuber à température ambiante avec rotation de bout en bout. Après 60 minutes d’incubation, éliminer le mPEG 5k non incorporé en effectuant à nouveau une précipitation du chloroforme-méthanol.
Centrifuger à plus de 13 000 fois G et 25 degrés Celsius pendant 10 minutes. Retirez soigneusement la phase supérieure comme précédemment, en évitant la crêpe épaisse et floconneuse. Ajouter 1 millilitre de méthanol et mélanger doucement mais soigneusement. Centrifuger à plus de 13 000 fois G et 25 degrés Celsius pendant 10 minutes.
Retirez délicatement le surnageant et rincez la pastille avec 1 millilitre de méthanol. Encore une fois, centrifugez à plus de 13 000 fois G et 25 degrés Celsius pendant 10 minutes. Après séchage à l’air, la pastille est remise en suspension dans 50 microlitres de tampon A sans TCEP ni aucun agent réducteur.