JoVE Encyclopedia of Experiments
Neurosciences
0 vues • 3:18 min • April 28th, 2025
Commence avec un œil humain. Retirez la gaine pour exposer le nerf optique.
Coupez l’œil en deux, puis retirez l’humeur vitrée du segment postérieur.
Coupez la sclère, la couche externe, et étendez la rétine contenant les cellules ganglionnaires rétiniennes connectées au nerf optique via la lamina cribrosa, une structure en forme de maille.
Placez ce segment sur le dôme de la chambre inférieure du système autonome translaminaire, avec le nerf optique vers le haut, puis scellez-le.
Connectez le tube et faites couler un milieu de perfusion.
Le mouvement du liquide crée une pression à l’intérieur de l’œilleton, ressemblant à une pression intraoculaire.
Ensuite, positionnez la chambre supérieure recouvrant le nerf optique et scellez-la.
Connectez le tube pour faire circuler le fluide autour du nerf, ressemblant à une pression intracrânienne.
La différence de pression entre ces chambres établit une pression translaminaire à travers la lamina cribrosa, permettant l’étude de la transmission du signal des cellules ganglionnaires rétiniennes au nerf optique dans cette condition de pression.
Pour préparer un échantillon de globe oculaire entier, retirez la gaine du nerf optique et retirez l’humeur vitrée du segment postérieur. Pour assurer un bon ajustement sur le dôme rond de la chambre de PIO, coupez la sclérotique supplémentaire du segment postérieur si nécessaire et utilisez une pince pour vous assurer que la rétine est répartie uniformément sur la partie postérieure humaine du segment. Placez ensuite le segment dans la chambre IOP du TAS sur le dôme rond, avec le nerf optique vers le haut, et utilisez un joint torique en résine époxy et 4 vis pour sceller le segment postérieur.
Pour configurer la chambre IOP, insérez le tube dans les orifices d’entrée et de sortie de la chambre et insérez la seringue d’entrée IOP dans l’orifice d’entrée. Insérez la seringue de sortie de PIO vide dans l’orifice de sortie et utilisez la méthode push-pull pour infuser lentement le milieu de perfusion dans l’orifice d’entrée afin de remplir l’œilleton postérieur tout en tirant lentement le milieu de perfusion à travers la seringue de sortie pour éliminer les bulles d’air des conduites. Une fois que les tubes d’entrée et de sortie sont exempts de bulles d’air, arrêtez l’infusion et verrouillez les robinets d’arrêt en position d’arrêt.
Retirez la seringue de l’ensemble de filtre d’importation IOP et remplissez la seringue avec 30 millilitres supplémentaires de fluide. Réinsérez ensuite la configuration de la seringue dans l’ensemble de filtre. Pour mettre en place la chambre ICP, placez la chambre à l’arrière du segment postérieur, en veillant à ce que le nerf optique se trouve à l’intérieur de la chambre supérieure, et scellez la chambre supérieure avec 4 vis.
Ensuite, insérez le tube dans les orifices d’entrée et de sortie de la chambre ICP - la seringue d’entrée ICP dans l’orifice d’entrée et la seringue de sortie ICP vide dans l’orifice de sortie pour rincer le système avec du fluide, comme nous venons de le démontrer.
Cet article démontre la préparation de tissus oculaires de donneurs humains pour l'étude des effets des gradients de pression translaminaire sur la signalisation des cellules ganglionnaires de la rétine. À l'aide d'un système autonome translaminaire (TAS), le protocole simule les pressions intraoculaires et intracrâniennes afin d'explorer comment les différences de pression à travers la lame criblée influencent la transmission du signal nerveux de la rétine au nerf optique.
Cette méthode permet une détection mécanistique des cibles des cellules ganglionnaires de la rétine en simulant des conditions de pression translaminaire physiologiquement pertinentes. Elle soutient la validation des cibles en recherche sur le glaucome en fournissant un système pertinent pour évaluer les réponses fonctionnelles sous des gradients de pression contrôlés. L'approche améliore la fiabilité prédictive des modèles précliniques en isolant la pression comme variable indépendante dans les études de signalisation des voies visuelles.
La méthode s'intègre à la continuité de la découverte en permettant des tests fonctionnels modulés par la pression après l'identification de la cible et avant l'optimisation du composé candidat dans les programmes de neurosciences et d'ophtalmologie.
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Dernière mise à jour : 29 août 2026