JoVE Encyclopedia of Experiments
Neurosciences
0 vues • 3:28 min • April 28th, 2025
Prenez une plaque multi-puits contenant des cellules de type microglie présentant une activité phagocytaire.
Incuber avec une coloration nucléaire pour marquer les noyaux.
Ajouter un inhibiteur de polymérisation d’actine au puits de contrôle négatif.
Pendant l’incubation, l’inhibiteur se lie aux filaments d’actine, inhibant la polymérisation de l’actine et la phagocytose.
Maintenez la plaque à basse température et ajoutez des synaptosomes humains marqués à un colorant sensible au pH--des fragments isolés de terminaisons synaptiques neurales.
Centrifuge la plaque à basse température pour favoriser les interactions cellule-synaptosome mais prévenir l’absorption prématurée.
Transfère la plaque vers un système d’imagerie de cellules vivantes.
Dans le puits de test, les synaptosomes sont phagocytés et fusionnent avec les lysosomes pour former des phagolysosomes. L’environnement acide lysosomal active le colorant, ce qui entraîne sa fluorescence.
Au fil du temps, dans le puits de test, davantage de synaptosomes sont engloutis, ce qui entraîne une nouvelle augmentation de la fluorescence.
Cependant, dans le puits de contrôle négatif, la polymérisation de l’actine est inhibée, empêchant l’absorption des synaptoles. La fluorescence minimale résultante confirme la dépendance de la fluorescence à la phagocytose médiée par l’actine.
Le jour du test, prélever 40 microlitres de milieu par puits, et ajouter 10 microlitres de la solution de coloration nucléaire. Incuber l’assiette pendant deux heures. Décongelez les synaptosomes marqués sur de la glace et sonifiez doucement à l’aide d’un sonicateur d’eau pendant une minute. Encore une fois, placez immédiatement les synaptosomes sur de la glace. Diluez les synaptosomes marqués et le milieu complet IMG à 1 microlitre de synaptosomes pour 50 microlitres de milieu.
Pour un contrôle négatif, préparez 60 micromolaires de cytochalasine D dans un milieu complet IMG pour inhiber la polymérisation de l’actine, et donc la phagocytose. Ensuite, ajoutez 10 microlitres de cette solution dans chaque puits pour une concentration finale de 10 micromolaires et incubez pendant 30 minutes. Retirez la plaque de l’incubateur et incubez à 10 degrés Celsius pendant 10 minutes. Maintenez la plaque sur de la glace et ajoutez 50 microlitres de milieu contenant des synaptosomes.
Centrifuge la plaque à 270 fois g pendant trois minutes à 10 degrés Celsius et maintiens la plaque sur la glace jusqu’à l’acquisition de l’imagerie. Insérez la plaque dans un lecteur d’imagerie de cellules vivantes et sélectionnez les puits à analyser. Ensuite, sélectionnez un objectif 20x. Ensuite, ajustez la mise au point, la diode électroluminescente ou l’intensité de la LED, le temps d’intégration et le gain du champ clair et des canaux bleus. La fluorescence des synaptosomes doit être négligeable au point temporel initial.
Sélectionnez le nombre de tuiles individuelles à acquérir dans un montage par puits. Acquérez 16 tuiles au centre du puits, en imageant environ 5 % de la surface totale du puits. Réglez la température sur 37 degrés Celsius et l’intervalle de temps souhaité pour l’imagerie.
Cette étude examine l'activité phagocytaire de cellules semblables aux microglies à l'aide d'un système d'imagerie de cellules vivantes. Les effets de l'inhibition de la polymérisation de l'actine sur l'absorption des synaptosomes sont analysés afin de comprendre les mécanismes de la phagocytose.
Les tests quantitatifs de phagocytose en cellules vivantes utilisant des synaptosomes humains et des cellules de type microglial fournissent une plateforme robuste pour analyser les mécanismes neuro-immunitaires liés aux voies de maladies neurodégénératives. Cette approche permet une détection mécanistique des risques et une validation des cibles en isolant la fonction phagocytaire dépendante de l’actine dans un système pertinent pour l’humain. Le test offre une confiance prédictive pour les décisions précoces concernant les portefeuilles de recherche sur la neuroinflammation et le maintien synaptique.
Ce test sur cellules vivantes s'inscrit dans le continuum de la découverte précoce à l'identification de candidats, fournissant des données exploitables pour la validation de cibles et des études mécanistiques en neurobiologie.
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Dernière mise à jour : 29 août 2026