$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Prenez une lame contenant des cryosections de tissu coronal de rat fixes et perméabilisées.
Tracez le contour des sections avec un stylo hydrophobe pour créer un environnement de coloration contrôlé.
Transférez les sections dans une chambre humide pour éviter le dessèchement des réactifs et des tissus lors des étapes suivantes.
Traitez les sections avec des protéines sériques pour bloquer les sites de liaison non spécifiques.
Rincer avec un tampon pour éliminer l’excès de protéines sériques.
Incuber avec des anticorps primaires ciblant des protéines spécifiques sur la microglie et les neurones.
Laver avec un tampon pour éliminer les anticorps primaires non liés.
Incuber avec des anticorps secondaires conjugués aux fluorophores qui se lient aux anticorps primaires.
Laver avec un tampon pour éliminer les anticorps secondaires non liés. Ensuite, rincez à l’eau bi-distillée.
Appliquez un support de montage aqueux pour protéger le signal fluorescent, placez une lamelle et scellez-le.
Imagez les coupes au microscope à fluorescence pour visualiser les microglies et les neurones immunomarqués.
Séchez les bords des lames et faites une bordure hydrofuge autour du bord de la lame avec un stylo à l’aide d’un stylo à l’aide d’un stylo à eau, afin d’assurer une couverture uniforme du liquide et de réduire les effets sur les bords. Ensuite, bloquez les sections en ajoutant 300 microlitres de sérum dans du PBS à chaque lame. Le sérum doit provenir de l’espèce dans laquelle l’anticorps secondaire est élevé. Dans ce cas, du sérum d’âne a été utilisé.
Assurez-vous que la solution de blocage s’étend jusqu’au bord de la lame et recouvre complètement le tissu pour éviter les taches inégales. Placez les lames dans une chambre d’humidité pour incuber à température ambiante, pendant une heure. Pendant l’incubation, préparez les anticorps primaires. Diluez l’anticorps IBA1, 1 à 5 000 et l’anticorps panneuronal, 1 à 500 dans un mélange de sérum d’âne à 1 % dans du PBS.
Retirez la solution bloquante et ajoutez 300 microlitres de la solution d’anticorps, qui contient les deux anticorps d’intérêt. Placez toutes les lames dans une chambre d’humidité et incubez-les pendant la nuit à 4 degrés Celsius. Le lendemain matin, lavez les lames trois fois dans PBS pendant cinq minutes chacune.
Préparez le mélange d’anticorps secondaires fluorescents, en diluant les deux de 1 à 250, dans du sérum d’âne à 1 % dans du PBS. Ajoutez 300 microlitres du mélange sur chaque lame. Et placez les lames dans une chambre d’humidité légère et étanche pendant 60 minutes à température ambiante. Ensuite, lavez les lames trois fois dans PBS pendant cinq minutes chacune. Et enfin, rincez-les à l’eau distillée doublement. Protégez les lames de la lumière pendant le lavage en PBS.
Ajoutez quelques gouttes d’un milieu de montage aqueux, qui aide à préserver l’intensité du signal de fluorescence sur chaque lame. Ensuite, couvrez-la lame et retirez les bulles d’air restantes à l’aide d’un applicateur à embout de coton. Pour sceller le support de montage sur les lames et éviter que les sections ne se dessèchent, enduisez les bords de vernis à ongles. Les lames sont laissées à sécher à plat pendant une heure dans une boîte protégée de la lumière, avant d’être stockées dans un récipient léger et hermétique, enveloppé dans une feuille d’aluminium à 4 degrés centigrades.