Imagerie au microscope électronique à transmission de l’endocytose des vésicules synaptiques dans les neurones de l’hippocampe de souris

0 vues5:41 min • April 28th, 2025

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Commencez par traiter les neurones de l’hippocampe de souris avec un tampon à haute teneur en potassium contenant de la peroxydase de raifort ou HRP.

Un potassium élevé dépolarise les neurones présynaptiques, déclenchant l’exocytose des vésicules synaptiques. Les neurones récupèrent ensuite les membranes des vésicules synaptiques par endocytose, en incorporant la HRP dans les vésicules nouvellement formées. Fixez les neurones avec du glutaraldéhyde et lavez-les pour éliminer l’excès de glutaraldéhyde.

Ajoutez du peroxyde d’hydrogène et un substrat chromogène, qui est oxydé par HRP pour former des précipités denses en électrons. Laver pour enlever tout substrat n’ayant pas réagi.

Traiter avec du tétroxyde d’osmium pour améliorer le contraste de la membrane, puis laver l’excès de réactif. Ensuite, ajoutez de l’acétate d’uranyle pour améliorer le contraste des organites.

Déshydratez les neurones en augmentant les concentrations d’éthanol et intégrez-les dans de la résine.

Identifiez au microscope les régions denses en cellules et excisez-les. Ensuite, préparez des sections ultra-minces.

Transférez une section sur une grille en cuivre et contre-tachez-la avec des agents de contraste.

En utilisant la microscopie électronique à transmission, les vésicules contenant de la HRP apparaissent comme des structures denses en électrons.

Stimulez la culture de neurones de l’hippocampe en ajoutant 1,5 millilitre de solution de stimulation à haute teneur en potassium dans chaque puits à température ambiante pendant 90 secondes. Dans cette étape, préparez un tampon de cacodylate de sodium de 0,1 molaire à pH 7,4. Fixez les cellules avec 4 % de glutaraldéhyde dans un tampon de cacodylate de sodium 0,1 molaire pendant au moins une heure à température ambiante.

Ensuite, lavez les cellules trois fois avec un tampon de cacodylate de sodium de 0,1 molaire à chaque fois pendant sept minutes. Ensuite, préparez la solution DAB et filtrez-la avec le filtre de 0,22 micromètre. Ensuite, appliquez 1,5 millilitre de solution DAB sur les cellules pendant 30 minutes à 37 degrés Celsius.

Ensuite, lavez les cellules trois fois avec un tampon de cacodylate de sodium de 0,1 molaire à chaque fois pendant sept minutes. En post-fixation, incubez les neurones avec 1,5 millilitre de tétroxyde d’osmium à 1 % dans un tampon de cacodylate de sodium à 0,1 molaire pendant une heure à quatre degrés Celsius.

Ensuite, lavez les neurones trois fois avec 1,5 millilitre de tampon cacodylate de sodium de 0,1 molaire à chaque fois pendant sept minutes. Par la suite, préparez un tampon d’acétate de sodium de 0,1 molaire avec de l’acétate de sodium et de l’acide acétique glacial. Lavez les cellules trois fois avec 1,5 millilitre de tampon d’acétate de 0,1 molaire à chaque fois pendant sept minutes.

Après cela, incubez les cellules avec 1,5 millilitre d’acétate d’uranyle à 1 % dans un tampon d’acétate à 0,1 molaire pendant 1 heure à quatre degrés Celsius. Ensuite, lavez les cellules trois fois avec 1,5 millilitre de tampon d’acétate de 0,1 molaire pendant sept minutes à chaque fois. Dans une hotte, déshydratez la culture neuronale avec des lavages uniques de 1,5 millilitre d’éthanol à 50 %, 70 % et 90 % pendant sept minutes à chaque lavage, suivis de trois lavages avec 1,5 millilitre d’éthanol à 100 % pendant sept minutes à chaque fois.

Ensuite, créez la résine époxy et mélangez-la soigneusement et stockez-la sous vide pour éliminer les bulles d’air. Infiltrer l’échantillon en remplaçant l’éthanol par de la résine époxy à 50 % dans de l’éthanol sur un shaker pendant 30 minutes à température ambiante, puis de la résine époxy à 70 % et de l’éthanol pendant 30 minutes à température ambiante sur un shaker.

Remplacez la solution de résine époxy par de la résine époxy à 100 % et incubez pendant 10 minutes à 50 degrés Celsius. Effectuez deux échanges de résine époxy fraîche à 100 %. Chaque échange est incubé pendant une heure à 50 degrés Celsius. Ensuite, ajoutez de la résine époxy fraîche à 100 % et laissez-la durcir à 50 degrés Celsius pendant la nuit, puis à 60 degrés Celsius pendant plus de 36 heures.

Ensuite, retirez chaque échantillon de la plaque à plusieurs puits avec la scie à main du bijoutier. À l’aide d’un microscope à lumière inversée, sélectionnez les régions d’intérêt qui ont des concentrations denses de cellules. Ensuite, coupez les blocs de 4 x 5 x 8 millimètres cubes pour le sectionnement. Ensuite, contre-colorez les sections par immersion avec de l’acétate d’uranyle aqueux à 1 % pendant 15 minutes, puis du citrate de plomb aqueux à 3 % pendant 5 minutes pour améliorer le contraste des échantillons.

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Dernière mise à jour : 1 août 2026