Imagerie micro-TDM avec produit de contraste de lésions de malformation caverneuse cérébrale dans le cerveau d’une souris

0 vues3:35 min • May 29th, 2025

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Prenez le cerveau d’un bébé souris fixé chimiquement avec des malformations caverneuses cérébrales ou CCM – des grappes de vaisseaux sanguins anormaux remplis de sang stagnant.

Isolez le cerveau postérieur, rincez-le avec un tampon et incubez dans une solution de coloration à base d’iode.

L’iode pénètre dans les vaisseaux sanguins perméables dans les zones CCM, se lie aux composants sanguins et améliore le contraste des lésions.

Faites sécher le mouchoir à l’air libre pour éliminer l’excès de solution de coloration.

Placez le tissu dans un tube et scellez-le pour éviter le rétrécissement du tissu.

Fixez le tube à l’intérieur d’un tube plus grand avec des éponges et montez-le verticalement dans le support micro-CT.

Lancez l’analyse.

La source de rayons X émet des rayons X concentrés qui traversent les tissus.

Les zones colorées à l’iode absorbent plus de rayons X que les tissus environnants.

Le détecteur enregistre les rayons X transmis, générant des images où les CCM apparaissent plus brillants.

Le système fait pivoter le tissu, capturant des images 2D sous plusieurs angles.

Un logiciel spécialisé reconstruit ces images en un modèle 3D, révélant les emplacements des CCM dans le cerveau.

Commencez la préparation de l’échantillon en remplissant une seringue de 10 millilitres équipée d’une aiguille de calibre 29 avec trois millilitres de paraformaldéhyde à 2 % de PBS. Effectuez ensuite une perfusion intracardiaque sur un chiot P8 euthanasié, en insérant l’aiguille dans le ventricule du cœur de la souris et en injectant lentement tout le volume de paraformaldéhyde.

Après avoir utilisé des ciseaux pour détacher la tête, retirez la peau de la tête et décollez le crâne, à l’aide d’une pince pour disséquer tout le cerveau en 4 % de paraformaldéhyde dans PBS. Postfix les cerveaux pendant la nuit à 4 degrés Celsius. Le lendemain, détachez les cerveaux postérieurs à l’aide d’une pince et rincez avec une solution PBS.

Ensuite, incubez les cerveaux postérieurs dans la solution iodée de Lugol pendant 48 heures. Après l’incubation, faites sécher brièvement la cervelle postérieure à l’air libre pour éliminer l’excès de solution iodée de Lugol. Ensuite, emballez les cerveaux postérieurs colorés à l’iode du Lugol dans des tubes de microcentrifugation de 0,65 microlitre et fermez-les complètement avec un film de paraffine plastique pour éviter le rétrécissement des tissus. Placez les tubes de microcentrifugation dans des tubes en plastique de cinq millilitres avec des éponges pour les empêcher de bouger pendant le balayage.

Montez verticalement le tube contenant un cerveau postérieur sur un support en aluminium dans le système micro-CT. Définissez les paramètres de numérisation. Utilisez 540 projections dans un temps d’exposition de deux secondes, avec des conditions de source de 50 kilovolts et 10 watts pour acquérir les ensembles de données tomographiques. Les radiographies du scanner le reconstruisent automatiquement à l’aide d’un logiciel de reconstruction de projection basé sur le matériel fourni par le système de micro-tomodensitométrie, produisant une série d’images de coupes axiales de 16 bits.

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Dernière mise à jour : 15 août 2026