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Prenez une souris anesthésiée préparée pour la pose d’un implant cérébral.
La souris est équipée d’une vis de masse fixée au crâne en contact avec le cervelet pour l’enregistrement du signal de référence.
Insérez la sonde connectée à la tête et la vis de terre dans l’hippocampe pour enregistrer l’activité neuronale.
Identifiez les rafales synchronisées d’activité neuronale, en confirmant le placement de la sonde dans la couche pyramidale de l’hippocampe.
Ensuite, insérez une pompe à ions microfluidique remplie de GABA dans l’hippocampe, avec une électrode source dans son canal. La vis de masse fixée au crâne agit comme l’électrode cible.
Enfin, insérez une micropipette dans l’hippocampe et injectez un inhibiteur des canaux potassiques pour induire une hyperexcitabilité neuronale, déclenchant des convulsions.
Appliquez immédiatement une tension à la pompe pour générer un champ électrique, conduisant les ions GABA à travers la membrane échangeuse d’ions jusqu’au foyer épileptique.
Le GABA induit un afflux de chlorure, réduisant l’excitabilité neuronale et prévenant les convulsions, confirmant l’efficacité de l’administration électrophorétique.
Pour l’insertion d’une sonde en silicone multicanal, placez la sonde sur le bras stéréotaxique fixé à un support magnétique. Et placez le bras à côté du cadre stéréotaxique. Placez les bras stéréotaxiques dans un léger angle antérieur et postérieur de 20 degrés pour laisser suffisamment d’espace pour le positionnement des deux autres implants. Et connectez la sonde à la tête et à la vis de terre.
Utilisez le bras stéréotaxique précis au micron pour abaisser lentement la sonde en silicium dans l’hippocampe. Et lancez le logiciel d’enregistrement pour enregistrer les signaux neuronaux électriques, tout en déplaçant la sonde en silicium multicanal du haut du cortex jusqu’à ce que la position dorso ventrale ciblée soit atteinte.
Ensuite, enregistrez simultanément le signal de potentiel de champ local des couches du cortex et de l’hippocampe pendant la pénétration sur l’écran d’ordinateur, et utilisez l’activité d’ondulation dans la couche pyramidale de la formation de l’hippocampe dans le potentiel de champ local enregistré comme marqueur de la zone cible.
Pour le remplissage de la pompe ionique microfluidique, connectez les tubes à l’entrée de la pompe et remplissez la sonde avec une solution GABA 0,05 molaire. Retirez les tubes et fermez l’entrée avec un film de paraffine, et assurez-vous que la pompe ionique microfluidique est solidement fixée au support. Faites attention lors du montage du support sur le bras du micromanipulateur avant de connecter les fils électriques à l’unité de mesure de source.
Avec le bras stéréotaxique à un angle médiolatéral de 20 degrés, abaissez lentement la pompe avec des mouvements axiaux aussi près que possible de la sonde, sans laisser la pompe se plier jusqu’à ce que la pompe atteigne la coordonnée ventrale dorsale, à moins 1 200 micromètres de la surface corticale. En préparation de l’induction de la crise, retirez l’embout métallique de l’aiguille d’une seringue de 10 microlitres et fixez une micropipette en borosilicate sur l’embout de la seringue. Placez l’embout sur l’embout de la micropipette et positionnez la seringue à un angle latéromédial de 20 degrés.
À l’aide d’une pompe de micro-injection automatisée, chargez 500 à 1 000 nanolitres d’aminopyridine complète de 50 millimolaires dans du liquide céphalo-rachidien artificiel dans la seringue et abaissez la micropipette en verre jusqu’à la position de coordonnées dorso ventrale. Injectez 250 nanolitres de la solution dans le cerveau et lancez l’enregistrement dans le logiciel. Regardez ensuite l’écran et attendez que le premier pic interictal apparaisse, avant d’appliquer 1 volt entre la source et la cible pendant 100 secondes et 1 seconde d’arrêt pendant 30 cycles pour délivrer la solution GABA.