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Prenez une boîte d’imagerie à fond de verre contenant des neurones corticaux embryonnaires de souris.
Placez la parabole à l’intérieur de la chambre environnementale d’un microscope à contraste interférentiel différentiel, ou CID, pour maintenir la viabilité cellulaire pendant l’imagerie.
La microscopie DIC divise la lumière polarisée en deux faisceaux qui traversent l’échantillon.
Les variations de l’indice de réfraction à travers l’éprouvette introduisent des déphasages entre ces faisceaux.
Lorsque les faisceaux se recombinent, leur interférence génère une image très contrastée, rendant visibles des structures cellulaires plus fines.
Identifiez les neurones avec des axones non ramifiés et utilisez l’imagerie en accéléré pour visualiser les ramifications axonales.
Traiter avec la nétrine-1, un signal de guidage extracellulaire qui se lie aux récepteurs axonaux et déclenche une exocytose localisée.
Les vésicules exocytaires délivrent des composants membranaires aux sites tandis que le cytosquelette est réorganisé pour soutenir l’expansion membranaire.
Au microscope, ces changements apparaissent sous la forme de petites protubérances, marquant le début de la ramification axonale.
Au fil du temps, ces protubérances se transforment en branches axonales matures, illustrant le processus dynamique du développement neuronal.
Au bout de deux jours in vitro, placez la parabole d’imagerie à fond de verre contenant les neurones non transfectés dans une chambre environnementale humide préchauffée. Utilisez un microscope équipé d’un objectif apochromatique plan 60x, d’une ouverture numérique de 1,4, d’un objectif DIC et d’un condenseur à grande ouverture numérique pour une qualité d’image et une résolution optimales. Ensuite, avec l’éclairage en lumière transmise, ajustez le plan focal pour trouver les neurones à travers les oculaires.
Pour l’imagerie DIC de la ramification axonale, la configuration appropriée d’un éclairage plus froid fera partie intégrante de l’optimisation de l’image et est essentielle pour produire des résultats analysables. Ensuite, avec les neurones d’intérêt dans le champ de vision, utilisez la fonction d’acquisition multizone dans le logiciel d’imagerie pour trouver et enregistrer les emplacements XYZ d’au moins six cellules. Maintenant, ajoutez à une concentration finale de 250 nanogrammes par millilitre de nétrine-1 ou d’un autre facteur d’intérêt pour stimuler les cellules, et appuyez sur Démarrer l’acquisition multizone.
De manière séquentielle, acquérez des images à chaque position toutes les 20 secondes pendant 24 heures, en interrompant l’acquisition et en refaisant la mise au point si nécessaire. Dans le logiciel d’imagerie, examinez les images en choisissant App, Examiner les données multidimensionnelles et ouvrez le fichier souhaité. Identifiez les branches axonales stables qui se forment pendant la séance d’imagerie. Utilisez l’outil de région de trace pour mesurer une branche axonale stable de la base de l’axone à la pointe.