Name: Une unité fonctionnelle du moteur dans la boîte de culture: La co-culture dexplants de la moelle épinière et les cellules musculaires (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-04-12T12:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 6 s
Description: Découvrez comment reproduire une unité motrice fonctionnelle in vitro par co-culture de cellules musculaires humaines avec des explants de moelle épinière de rat. Cette méthode permet d'étudier l'innervation musculaire et la différenciation cellulaire.

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Notre travail est soutenu par le Fonds national suisse (FNS), l&#39;initiative suisse en biologie des systèmes (SystemsX.ch), la Muscular Dystrophy Association aux Etats-Unis (MDA), l&#39;Association française Contre les Myopathies (AFM), le Royaume-mitochondrial Disease Foundation (UMDF), la Fondation Gebert Rüf-Programme des maladies rares (GRF), la Société suisse pour la recherche des maladies musculaires (SSEM / FSRMM), le Swiss Life &quot;Jubiläumsstiftung für Forschung Volksgesundheit und medizinische&quot;, la Roche Research Foundation et l&#39;Université de Bâle.

1. Préparation de la culture primaire de cellules musculaires humaines <ol><li> Mettre en place des cultures de cellules musculaires humaines, selon la technique explantation-re-explantation 4. Tout d&#39;abord, éliminer les obstacles non-tissu musculaire à partir des biopsies. Puis, incorporer 1 mm explants musculaires 3 dans un caillot de plasma, ce qui permet de sortir de fibroblastes des explants. </li><li> Les explants incorporés sont transférées sur un plat de plasma gélatine revêtue et laisser croître dans un milieu de croissance normale (MEM supplémenté avec 25% support 199, 10% de sérum bovin foetal [FBS], 1% de pénicilline / streptomycine, 10 pg / ml d&#39;insuline, 10 ng / ml de facteur de croissance épidermique humain [EGF], 12,5 ng / ml de facteur humain de croissance des fibroblastes [FGF]) dans une monocouche. Les cellules qui émergent à partir des explants dans ces conditions sont des cellules musculaires. Ces cellules vont continuer à croître dans une monocouche après le retrait des explants. </li><li> Culture des cellules aneurally sur 0,1% de gélatine recouvertes de plaques en milieu de croissance normal. Les cellules peuvent êtreaneurally cultivées et amplifiées selon les besoins. Il est préférable d&#39;utiliser des cellules musculaires à un passage entre 3 et 8 pour effectuer les co-cultures. Il est essentiel pour innerver myotubes jeunes, après ce point, les co-cultures ont un risque élevé d&#39;échec. En outre, les myotubes ne devrait pas être trop grand et trop épais. </li><li> Deux jours avant l&#39;innervation est prévu, plaque les cellules musculaires sur 35 mm boîtes de culture tissulaire (ou plaques à 6 puits) à une densité de 500.000 cellules par boîte de milieu de croissance normal. A cette densité, les cellules sont à confluence du bon de commencer la fusion, le lendemain, et l&#39;innervation ultérieure le jour d&#39;après. En utilisant ces conditions, les myotubes sont à la bonne étape pour l&#39;innervation optimale et donc la contraction des fibres ultérieure. </li><li> Le jour suivant, remplacer le milieu de croissance normale avec un milieu de fusion composée d&#39;MEM supplémenté avec 25% support 199, 5% de FBS, 10 pg / ml d&#39;insuline et de 1% de pénicilline / streptomycine. </li></ol> 2. Isolati<html> sur des explants embryonnaires de rat de la moelle épinière Toute la procédure d&#39;isoler les explants de moelle épinière est effectuée sous une loupe binoculaire, dans une solution saline équilibrée de Hank (HBSS, Gibco / Invitrogen ref 14170) contenant 10% de sérum de veau fœtal (FBS). <ol><li> Il est crucial que les embryons de rat sont entre ED 13 et 14, un stade de développement différent mettrait en péril l&#39;ensemble de la procédure. Sacrifiez une femme enceinte avec du CO 2 et de recueillir la chaîne embryon entier dans un milieu HBSS. Isoler chaque embryon et les décapiter pour l&#39;euthanasie. </li><li> Disséquer le cordon médullaire embryon à partir du reste du corps d&#39;une seule pièce et enlever de muscle entourant et du tissu conjonctif. Soyez très prudent de garder les ganglions de racine dorsale (DRG) rattachés à la moelle épinière afin d&#39;assurer l&#39;innervation fonctionnelle. </li><li> Couper chaque moelle épinière transversalement de manière que chaque explant contient au moins deux DRG attaché (explants de 1 mm 3). </li></ol><html> ove_title &quot;&gt; 3. Innervation des cellules musculaires humaines avec des explants embryonnaires de rat de la moelle épinière <ol><li> Retirer le milieu de fusion de la culture des cellules musculaires, en laissant une fine couche de support sur la monocouche. </li><li> Placez les explants attentivement sur la couche de cellules musculaires, cinq explants régulièrement espacés par boîte de 35 mm. </li><li> Ajouter très lentement, goutte à goutte milieu de fusion, sur chaque explant. Il est nécessaire d&#39;ajouter moyenne pour les cellules musculaires pour survivre, mais pas trop afin de permettre aux explants d&#39;adhérer d&#39;abord et prendre contact avec les cellules. Si le milieu n&#39;est pas ajouté correctement (trop fort ou trop moyennes), les explants va flotter et ne parviendra pas à innerver les cellules musculaires. </li><li> Une fois que les explants de commencer à respecter, le haut le milieu de fusion à 2 ml par boîte de 35 mm, et mis les petits plats très soigneusement de nouveau dans l&#39;incubateur. </li></ol> 4. Entretien des hétérologues nerf-muscle co-cultures <ol><li> Changer le milieu de fusion deux fois par semaine. </li></ol>_title &quot;&gt; Résultats représentatifs 5. Dès que deux jours après l&#39;innervation, il est possible de voir les neurites émanant de chaque explant et établir des contacts avec les cellules musculaires, représentés par les structures sur le bouton-like (figure 1). Dès 4-6 jours après l&#39;innervation, quelques fibres individuelles va commencer à se contracter. Les contractions persistent pendant plusieurs mois, maintenu en changeant simplement le milieu de culture deux fois par semaine. Après environ 2 semaines, l&#39;explant la moelle épinière se dégénère, mais l&#39;innervation est conservée. Ceci est normal. Une fine couche de composant nerf reste à la surface de la couche de cellules musculaires. Ce réseau nerveux est suffisante pour maintenir la fonctionnalité de l&#39;unité motrice. Si les explants flottent dans le milieu de la journée après l&#39;innervation, ils ne seront jamais respecter. Cela se produit lorsque la couche de cellules musculaires estpas suffisamment confluentes, ou lorsque le milieu est ajouté trop rudement. Parfois, les explants adhère, mais pas de neurites vont émerger. Cela est probablement dû à l&#39;absence de GHM qui s&#39;y rattachent. Dans ce cas aussi, l&#39;innervation ne sera pas établie. Manipuler les plats très attentivement la première semaine, comme les explants peuvent encore se détachent facilement. Pour échanger les médias de fusion, ajoutez le liquide goutte à goutte avec une vitesse minimale pour éviter le détachement des cellules. <img alt="Figure 1" src="/files/ftp_upload/3616/3616fig1.jpg" /> Figure 1. Moelle épinière explants-cellules musculaires des co-cultures à partir du jour 1 au jour 15.

<ol><li>Delaporte, C., Dautreaux, B., Fardeau, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+myotube+differentiation+in+vitro+in+different+culture+conditions%5BTitle%5D)+AND+%22Biol.+Cell%22%5BJournal%5D)">Human myotube differentiation in vitro in different culture conditions.</a> Biol. Cell. 57, 17-22 (1986).</li>
<li>Kobayashi, T., Askanas, V., Engel, W. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+muscle+cultured+in+monolayer+and+cocultured+with+fetal+rat+spinal+cord%3A+importance+of+dorsal+root+ganglia+for+achieving+successful+functional+innervation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Human muscle cultured in monolayer and cocultured with fetal rat spinal cord: importance of dorsal root ganglia for achieving successful functional innervation.</a> J. Neurosci. 7, 3131-3141 (1987).</li>
<li>Braun, S., Croizat, B., Lagrange, M. C., Warter, J. M., Poindron, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Constitutive+muscular+abnormalities+in+culture+in+spinal+muscular+atrophy%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Constitutive muscular abnormalities in culture in spinal muscular atrophy.</a> Lancet. 345, 694-695 (1995).</li>
<li>Askanas, V., Engel, W. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+program+for+investigating+adult+human+skeletal+muscle+grown+aneurally+in+tissue+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Neurology%22%5BJournal%5D)">A new program for investigating adult human skeletal muscle grown aneurally in tissue culture.</a> Neurology. 25, 58-67 (1975).</li>
<li>Guettier-Sigrist, S., Coupin, G., Warter, J. M., Poindron, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+types+required+to+efficiently+innervate+human+muscle+cells+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Cell+Res%22%5BJournal%5D)">Cell types required to efficiently innervate human muscle cells in vitro.</a> Exp. Cell Res. 259, 204-212 (2000).</li>
<li>Lefebvre, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+and+characterization+of+a+spinal+muscular+atrophy-determining+gene%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Identification and characterization of a spinal muscular atrophy-determining gene.</a> Cell. 80, 155-165 (1995).</li>
<li>Schrank, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inactivation+of+the+survival+motor+neuron+gene%2C+a+candidate+gene+for+human+spinal+muscular+atrophy%2C+leads+to+massive+cell+death+in+early+mouse+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Inactivation of the survival motor neuron gene, a candidate gene for human spinal muscular atrophy, leads to massive cell death in early mouse embryos.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 94, 9920-9925 (1997).</li>
<li>Hsieh-Li, H. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+mouse+model+for+spinal+muscular+atrophy%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Genet%22%5BJournal%5D)">A mouse model for spinal muscular atrophy.</a> Nat. Genet. 24, 66-70 (2000).</li>
<li>Monani, U. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+human+centromeric+survival+motor+neuron+gene+%28SMN2%29+rescues+embryonic+lethality+in+Smn%28-%2F-%29+mice+and+results+in+a+mouse+with+spinal+muscular+atrophy%5BTitle%5D)+AND+%22Hum.+Mol.+Genet%22%5BJournal%5D)">The human centromeric survival motor neuron gene (SMN2) rescues embryonic lethality in Smn(-/-) mice and results in a mouse with spinal muscular atrophy.</a> Hum. Mol. Genet. 9, 333-339 (2000).</li>
<li>Sleigh, J. N., Gillingwater, T. H., Talbot, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+contribution+of+mouse+models+to+understanding+the+pathogenesis+of+spinal+muscular+atrophy%5BTitle%5D)+AND+%22Dis.+Model.+Mech%22%5BJournal%5D)">The contribution of mouse models to understanding the pathogenesis of spinal muscular atrophy.</a> Dis. Model. Mech. 4, 457-467 (2011).</li>
<li>Durbeej, M., Campbell, K. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Muscular+dystrophies+involving+the+dystrophin-glycoprotein+complex%3A+an+overview+of+current+mouse+models%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Muscular dystrophies involving the dystrophin-glycoprotein complex: an overview of current mouse models.</a> 12, 349-361 (2002).</li>
<li>Schnabel, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuroscience%3A+Standard+model%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Neuroscience: Standard model.</a> Nature. 454, 682-685 (2008).</li>
<li>Benatar, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lost+in+translation%3A+treatment+trials+in+the+SOD1+mouse+and+in+human+ALS%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiol.+Dis%22%5BJournal%5D)">Lost in translation: treatment trials in the SOD1 mouse and in human ALS.</a> Neurobiol. Dis. 26, 1-13 (2007).</li>
<li>Dorchies, O. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Normal+innervation+and+differentiation+of+X-linked+myotubular+myopathy+muscle+cells+in+a+nerve-muscle+coculture+system%5BTitle%5D)+AND+%22Neuromuscul.+Disord%22%5BJournal%5D)">Normal innervation and differentiation of X-linked myotubular myopathy muscle cells in a nerve-muscle coculture system.</a> Neuromuscul. Disord. 11, 736-746 (2001).</li>
<li>McFerrin, J., Engel, W. K., Askanas, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impaired+innervation+of+cultured+human+muscle+overexpressing+betaAPP+experimentally+and+genetically%3A+relevance+to+inclusion-body+myopathies%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroreport%22%5BJournal%5D)">Impaired innervation of cultured human muscle overexpressing betaAPP experimentally and genetically: relevance to inclusion-body myopathies.</a> Neuroreport. 9, 3201-3205 (1998).</li>
</ol>

Nous n&#39;avons rien à communiquer.

Un outil physiologique in vitro pour étudier la fonction des cellules musculaires dans le contexte normal et pathologique est du plus haut intérêt pour les myologues, parce que les cultures de cellules musculaires ne sont généralement pas récapituler l&#39;importance de plusieurs cellules et des cellules de type de connexions. L&#39;ajout de purifier les neurones moteurs dans les cellules musculaires ne suffit pas pour parvenir à une unité motrice fonctionnelle puisque la présence de cellules de Schwan...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nom de réactif </td><td> Entreprise </td><td> Numéro de catalogue </td></tr><tr><td> HBSS </td><td> Gibco / Invitrogen </td><td> 14170 </td></tr><tr><td> MEM </td><td> Gibco / Invitrogen </td><td> 31095 </td></tr><tr><td> Milieu 199 </td><td> Gibco / Invitrogen </td><td> 31153 </td></tr><tr><td> Sérum fœtal bovin </td><td> Clone fœtale Perbio </td><td> SH30066.03 </td></tr><tr><td> Insuline </td><td> Sigma </td><td> I9278 </td></tr><tr><td> EGF humain </td><td> Sigma </td><td> E9644 </td></tr><tr><td> Human FGF </td><td> Sigma </td><td> F0291 </td></tr><tr><td> Pénicilline / streptomycine solution </td><td> Gibco </td><td> 15140 </td></tr></tbody></table>

une unité fonctionnelle du moteur dans la boîte de culture: la co-culture d&#39;explants de la moelle épinière et les cellules musculaires

A Functional Motor Unit in the Culture Dish: Co-culture of Spinal Cord Explants and Muscle Cells

Homme cellules musculaires primaires en culture en monocouche aneurally rarement contrat spontanément en raison, en l&#39;absence d&#39;une composante du nerf, la différenciation cellulaire est limitée et la stimulation des neurones moteurs est une manquante. Ces limitations entravent l&#39;étude in vitro de nombreuses maladies neuromusculaires dans les cellules musculaires en culture. Surtout, les contraintes expérimentales de monocouches, les cellules musculaires en culture peuvent être surmontés par l&#39;innervation fonctionnelle des fibres musculaires avec des explants de moelle épinière dans les co-cultures. Ici, nous montrons les différentes étapes nécessaires à la réalisation efficace, innervation correcte de l&#39;homme des cellules musculaires primaires, menant à une contraction de la différenciation et la fibre selon la méthode développée par Askanas 2. Pour ce faire, les cellules musculaires sont co-cultivées avec des explants de moelle épinière d&#39;embryons de rat chez ED 13,5, avec les ganglions de la racine dorsale encore attaché aux tranches de la moelle épinière. Après quelques jours, le muscle fibres de commencer à contrat et devenir contre-striée par innervation par neurites fonctionnels saillie à partir des explants de moelle épinière qui se connectent à des cellules musculaires. Cette structure peut être maintenue pendant de nombreux mois, tout simplement par un échange régulier du milieu de culture. Les applications de cet outil précieux sont nombreux, car il représente un modèle fonctionnel pour des analyses multidisciplinaires de développement musculaire humaine et l&#39;innervation. En fait, un complet de novo d&#39;installation de la jonction neuromusculaire se produit dans une boîte de culture, ce qui permet une mesure facile de nombreux paramètres à chaque étape, dans un contexte fondamental et physiologique. Pour ne citer que quelques exemples, génomique et / ou des études protéomiques peuvent être effectuées directement sur les co-cultures. En outre, les effets pré-et post-synaptique peut être évalué précisément et séparément à la jonction neuromusculaire, parce que les deux composants proviennent d&#39;espèces différentes,rat et l&#39;homme, respectivement. Le nerf-muscle de co-culture peut également être effectuée avec des cellules musculaires humaines isolées chez des patients souffrant de maladies neuromusculaires du muscle ou 3, et peut donc être utilisé comme un outil de dépistage pour les médicaments candidats. Enfin, aucun équipement spécial, mais un habitué BSL2 installation est nécessaire pour reproduire une unité motrice fonctionnelle dans une boîte de culture. Cette méthode est donc précieuse tant pour le muscle ainsi que les communautés de recherche neuromusculaire pour des études physiologiques et mécaniste de la fonction neuromusculaire, dans un contexte normal et la maladie.

Les cellules musculaires en culture sont un modèle inadéquat de récapituler les muscles innervés<em&gt; In vivo</em&gt;. Une unité fonctionnelle du moteur peut être reproduite<em&gt; In vitro</em&gt; Par l&#39;innervation de l&#39;homme les cellules musculaires différenciées primaires à l&#39;aide de rats explants d&#39;embryons de la moelle épinière. Cet article décrit comment les co-cultures d&#39;explants de moelle épinière et les cellules musculaires sont établis.

Une unité fonctionnelle du moteur dans la boîte de culture: La co-culture d&#39;explants de la moelle épinière et les cellules musculaires

Les cellules musculaires primaires humaines cultivées en monocouche sans innervation se contractent rarement de manière spontanée car, en l'absence d'une composante nerveuse, la cellule...

L'objectif général de cette procédure est de reproduire une unité motrice fonctionnelle in vitro. Cela est réalisé en cultivant des cellules musculaires humaines primaires conjointement avec des explants de moelle épinière isolés d'embryons de rat. Les implants de moelle épinière sont ensuite laissés libres d'innervater les cellules musculaires humaines tout en restant attachés à l'explant.Le milieu est ajouté avec précaution à la culture jusqu'à ce que les cellules musculaires se différencient complètement. Le phénotype moléculaire ou cellulaire des cellules musculaires différenciées peut ensuite être évalué à l'aide d'un choix d'outils moléculaires. La démonstration visuelle de cette méthode est essentielle car, premièrement, il est difficile d'apprendre à isoler la moelle épinière.Et surtout, vous devez être très délicat lors de l'ajout du milieu de culture aux cellules musculaires innovantes. Euthanasier un rat gestant ayant des embryons aux stades compris entre le Jour 12,5 et le Jour 13,5.Soyez précis car cette étape est cruciale pour l'ensemble de la procédure. Disséquez l'utérus et récupérez toute la chaîne d'embryons dans du milieu HBSS contenant 10 % de FBS sous un stéréomicroscope, puis isolez et décapitez chaque embryon individuellement. Isolez la moelle épinière en un seul morceau et retirez les muscles et les tissus conjonctifs environnants.Pour ce faire, commencez par fixer les embryons à l’aide de ciseaux microchirurgicaux. Effectuez une incision sur chaque côté de la moelle épinière et retirez délicatement la peau. Ensuite, placez l’embryon sur le côté et isolez soigneusement la moelle épinière en laissant le ganglion de la racine dorsale, ou DRG, toujours attaché.L'innervation fonctionnelle ne se produira pas si les ganglions rachidiens restent détachés de la moelle épinière. La moelle épinière est plus claire que les tissus conjonctifs roses environnants et que le muscle. Retirez soigneusement les tissus environnants sans perturber les ganglions rachidiens.Une fois isolée, utilisez l'aiguille d'une microsyringe pour découper chaque moelle épinière transversalement en cubes comportant au moins deux ganglions racinaires dorsaux (DRG) attachés. Ces fragments auront une taille d'environ un millimètre cube et sont désormais prêts à être cultivés en co-culture avec une culture standard de cellules musculaires humaines. Ce protocole nécessite que les cellules musculaires humaines soient cultivées à partir de biopsies tissulaires.Consulter le protocole écrit pour plus de détails sur cette procédure. Commencer par éliminer le milieu de fusion de la culture de cellules musculaires, en laissant une fine couche de milieu sur la monocouche. Ensuite, placer délicatement l'explant x sur la cellule musculaire.Cinq explants X espacés régulièrement peuvent être disposés sur chaque boîte de 35 millimètres. Ajouter lentement le milieu de fusion goutte à goutte sur chaque explant X. Ne pas ajouter le milieu de fusion trop rapidement ni en trop grand volume.Sinon, les explants x flotteront et ne parviendront pas à innervater les cellules musculaires. Ensuite, remettez très soigneusement les boîtes dans l'incubateur. Continuez à ajouter le milieu lentement.Lorsqu'ils sont manipulés avec soin, les explants x cesseront de flotter dans le milieu et adhéreront aux cellules en environ une heure. Une fois l'adhésion réalisée, augmentez le volume de milieu de fusion à deux millilitres par boîte de 35 millimètres. Si, après avoir attendu toute une nuit, les explants X flottent encore dans le milieu, cela signifie soit que la couche de cellules musculaires n'était pas suffisamment confluente, soit que le milieu a été ajouté.Deux, environ. Ces X explan n'adhéreront jamais deux fois par semaine. Remplacez tout le milieu de fusion goutte à goutte très lentement afin d'éviter le détachement des cellules.Les explants X sont assez fragiles durant la première semaine et peuvent se détacher facilement. Cette technique est très intéressante, car après l'innovation, il suffit de mesurer ou de prélever le milieu de culture pour quantifier l'ome des cocultures. Et si vous choisissez soigneusement les outils moléculaires, vous pouvez distinguer ce qui provient du muscle de ce qui provient du nerf.Deux jours après l'innervation, les neurites émergent de chaque explant et établissent des contacts avec les cellules musculaires, représentés par des structures en forme de bouton. Lorsque les neurites n'émergent pas, l'innervation échoue probablement en raison d'un manque d'attachement des ganglions de la racine dorsale (DRG). Dès quatre à six jours après l'innervation, quelques fibres individuelles commencent à se contracter.Les contractions ont persisté pendant plusieurs mois, simplement entretenues par un changement du milieu de culture deux fois par semaine. Après environ deux semaines, comme prévu, les explants de moelle épinière eux-mêmes se sont dégradés, mais les innervations ont été conservées. Une fine couche de composants nerveux est restée à la surface de la couche de cellules musculaires, et ce réseau nerveux s'est avéré suffisant pour maintenir la fonctionnalité de l'unité motrice.Un des grands avantages de cette technique est la possibilité de prélever des échantillons chez les patients et de mesurer ou de comparer le phénotype des cocultures entre l'échantillon témoin et celui du patient. En suivant cette procédure, vous pouvez utiliser des techniques classiques très courantes telles que la PCR en temps réel, le Western blot, l'immunohistochimie, et vous pouvez effectivement étudier le phénotype musculaire ou nerveux des cocultures.

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Adultes et embryonnaires Culture squelettique Microexplant musculaire et isolement de cellules souches du muscle squelettique

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Une unité fonctionnelle du moteur dans la boîte de culture: La co-culture dexplants de la moelle épinière et les cellules musculaires (Vidéo) | JoVE Journal

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