Name: Expérimentale transport pneumocoque humaines (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-02-15T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 47 s
Description: Découvrez comment établir un portage expérimental du pneumocoque chez l'humain par inoculation intranasale de Streptococcus pneumoniae. Cette méthode permet d'étudier l'immunité et de développer de nouveaux vaccins.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Ce travail a été financé par la Fondation Bill et Melinda Gates Foundation (prix du Grand Défi d&#39;exploration SBG), les National Institutes for Health Research (INDH), Centre de recherche biomédicale sur les maladies microbiennes, et l&#39;INDH Réseau global de recherche locale. Nous reconnaissons l&#39;NWDA de soutien aux infrastructures. Nous remercions le Professeur J. N Weiser, Université de Pennsylvanie et le professeur P Hermans, Université de Nijmegen pour les isolats de pneumocoques. Merci au comité de sécurité EHPC pour leur soutien et de conseils, à tous nos bénévoles pour leur participation et à Mathieu Bangert pour prendre les photos.

1. Sélection et présélection des bénévoles <ol><li> Volontaires sains sont recrutés par le biais d&#39;affiches et de publicités sur le site de l&#39;Université en fonction de la recherche du NHS et d&#39;éthique d&#39;orientation. </li><li> Les critères d&#39;inclusion pour la participation sont les suivantes: <ol><li> Adultes de 18-60 ans. </li><li> Il parle couramment l&#39;anglais et est capable de communiquer facilement à la fois par téléphone mobile et la messagerie texte. </li></ol></li><li> Les critères d&#39;exclusion de la participation sont les suivantes: <ol><li> Le contact étroit avec les personnes à risque (enfants, adultes immunodéprimés, personnes âgées, santé maladie chronique). </li><li> Courant des antécédents de tabagisme fumeur ou significative (&gt; 10 paquets-années). </li><li> L&#39;asthme ou autre maladie respiratoire. </li><li> Grossesse. </li><li> Allergie à la pénicilline ou amoxicilline. </li><li> Participation actuelle à un autre essai clinique à moins que l&#39;observation ou la non-intervention de phase. </li><li> Impossible de donner un consentement éclairé. </li></ol></li><li>Une visite de sélection initiale, environ une semaine avant l&#39;inoculation, comprend une histoire centrée clinique et un examen clinique ciblé. </li><li> Si un non constatés antérieurement anomalie est détectée, le volontaire seront exclus de l&#39;étude et enquête appropriée sera organisé par les soins primaires. </li><li> Au cours de l&#39;examen initial visiter un hémogramme complet est obtenu à veiller à ce que le nombre de globules blancs est dans la plage normale avant l&#39;inoculation visite. Un lavage nasal est effectué pour exclure les transporteurs pneumocoque naturelles (voir 6.1). </li><li> Avant l&#39;inoculation, les bénévoles reçoivent une formation sur les risques inhérents à la participation à l&#39;étude et sont fournis avec une notice destinée aux patients d&#39;urgence, thermomètre numérique, des numéros de téléphone d&#39;urgence et 3 jours de cours de l&#39;amoxicilline. </li></ol> 2. Préparation des stocks d&#39;inoculation <ol><li> Préparation des stocks d&#39;inoculation doit être faite dans un environnement propre. Les pipettes utilisées ne doit être utiliserpour la préparation d &#39;inoculum. Tout verrerie et les articles en plastique doivent être stériles. Nous recommandons que les stocks d&#39;inoculation être préparé dans une salle dédiée, en utilisant une hotte dédiée et un incubateur. </li><li> Souches de pneumocoques sont ensemencées sur une gélose au sang. Les plaques sont incubées à 37 ° C dans 5% de CO 2 pendant la nuit. Le lendemain de toutes les bactéries est raclée de la gélose au sang et inoculé dans un système de préservation des stocks de perles. Ces stocks perles sont utilisées pour l&#39;inoculation préparation de la pâte. Testez les stocks de perles pour la contamination et l&#39;uniformité colonie avant de préparer un stock inoculation. </li><li> Pour préparer le bouillon inoculation, inoculer une gélose au sang de deux perles du sérotype pneumococcique stock souhaité perle qui s&#39;étirent pour couvrir la totalité de la plaque. Incuber les plaques à 37 ° C dans 5% de CO2 pendant la nuit. Toutes les incubations d&#39;autres utiliseront ces mêmes conditions. Aussi incuber les médias Vegitone nuit pour assurer la stérilité. </li><li> L&#39;écouvillon lendemain matinla moitié de la plaque, en prenant soin de ne pas enlever la gélose au sang, et ajouter à 12 ml de bouillon Vegitone préchauffé. Répéter en utilisant l&#39;autre moitié de la plaque. Laisser les 12 deux flacons ml à 37 ° C pendant 2 heures ou jusqu&#39;à ce qu&#39;un changement de turbidité apparaît, selon la première éventualité. </li><li> Ajouter le ml 12 à 40 ml de bouillon Vegitone préchauffé et bien mélanger. Répétez l&#39;opération pour l&#39;autre flacon de 12 ml. Il s&#39;agit point dans le temps = 0. Prélever 100 ul de lire la densité optique (DO) à 600 nm. Retirer 20 ul pour la quantification des bactéries par unité formant colonie (UFC) Nombre moyen d&#39;une variante de la méthode de Miles et Misra (M &amp; M) 7. Incuber les deux flacons. <ol><li> Pour le M &amp; M, diviser une gélose au sang en six sections. Ajouter 180 ul de PBS stérile à six puits d&#39;une plaque de 96 puits à fond en U (). Ajouter 20 ul de bouillon pour le bien haut et bien mélanger. Diluer en série des échantillons 01h10 six fois et jeter 20 pl du puits sixième. Placer trois gouttes 10 pl du puits haut dans la première section de l&#39;gélose au sang. Répétez l&#39;opération pour les cinq autres puits. S&#39;assurer que la plaque est sèche avant qu&#39;il ne soit renversé et mis à incuber. </li><li> Le lendemain, compter le nombre de colonies visibles dans chaque section de dilution et d&#39;enregistrement. Utilisation de la section de dilution avec un nombre entre 30 et 300, il faut diviser le nombre de colonies visibles par trois pour obtenir une moyenne. </li><li> Multipliez le nombre moyen de colonies par le facteur de dilution, puis divisez par 10 (le montant de la baisse de 10 pi). Cela donne UFC / ul. </li><li> Multipliez ce nombre par 1000 pour obtenir UFC / ml. </li></ol></li><li> Effectuer DO 600 lectures et la quantification des bactéries par M &amp; M méthode chaque heure avant le début de phase semi-logarithmique est atteint, une DO de 0,25. </li><li> Une fois cette DO est atteint, ajouter 10% de glycérol stérile à un flacon et préparer aliquotes de 1 ml. Boutique aliquotes à -80 ° C. </li><li> Pour un stock plus concentré, centrifuger la fiole autre à 3345 xg pendant 15 min et éliminer le surnageant. Reprendre le culot dans 22,5 ml d&#39;Vegitone moyen et ajouter 10% de glycérol. Préparer des aliquotes de 1 ml et conserver à -80 ° C. </li><li> Laisser les stocks à -80 ° C pendant au moins 48 heures avant la décongélation et la quantification. </li><li> Quantifier le stock congelé bactérienne par la méthode M &amp; M. Testez trois tubes actions individuellement pour assurer la reproductibilité. Utilisez la valeur obtenue pour diluer le stock à la concentration désirée d&#39;inoculum dans une solution saline, comme décrit ci-dessous. </li><li> Pour l&#39;inoculation, la quantité de pneumocoques dans l&#39;inoculum est calculée avant et après l&#39;inoculation. Cette quantification des bactéries par la méthode M &amp; M est utilisé pour déterminer le nombre moyen de pneumocoques dans l&#39;inoculum qui représente le temps qu&#39;il faut pour terminer la procédure. <ol><li> Préparer un inoculum, diluer à la concentration voulue, et d&#39;effectuer la quantification par la méthode M &amp; M pour la &quot;pré-inoculation&quot; count. </li><li> Dans notre centre de recherche clinique prend l&#39;équipe de 30 min pour terminer la procédure d&#39;inoculation entier. Pnsuspensions eumococcal dans une solution saline se montrent habituellement une diminution du nombre dans cet intervalle. Pour tenir compte de cela, nous laissez l&#39;inoculum dilué à température ambiante pendant 30 min, puis effectuer un &quot;post-inoculation&quot; quantification des bactéries par la méthode M &amp; M. </li><li> Prendre la moyenne de l&#39;avant et après afin de déterminer la concentration finale inoculé. Réglez la «séance» le temps en fonction de votre protocole clinique mais gardez l&#39;intervalle aussi bref que possible. </li></ol></li><li> Tous les nouveaux stocks doivent être envoyés à un laboratoire de référence pour la confirmation de la pureté des stocks et d&#39;identité. </li></ol> 3. Préparation d&#39;inoculum <ol><li> Préparation de l&#39;inoculum doit commencer 30 minutes avant le rendez-inoculation volontaire prévue. </li><li> Prenez l&#39;un des tubes d&#39;actions déjà effectués sur le congélateur à -80 ° C, le décongeler et faire tourner le tube dans la microcentrifugeuse à 17.000 xg pendant 3 min. </li><li> Gélose au sang chaud dans l&#39;incubateur à 37 ° C. Préparerune plaque à 96 puits pour la quantification bactérienne par la méthode M &amp; M et préparer les tubes de dilution en fonction de la dose souhaitée. </li><li> Retirer le surnageant de bouillon du tube centrifugé et remettre en suspension le culot dans 1 ml de solution saline. Cette étape supprime le bouillon de l&#39;inoculum. </li><li> Répétez l&#39;étape de centrifugation. </li><li> Retirer le surnageant saline et reprendre le culot dans 1 ml de solution saline. </li><li> Effectuez ensemble taux de dilution de la concentration d&#39;inoculum désiré et quantifier par M &amp; M méthode. </li><li> Prenez l&#39;inoculum à la nomination des bénévoles et des volontaires après l&#39;inoculation, répéter la quantification au laboratoire. Etiqueter le tube avec la date et la dose de l&#39;inoculum et conserver à -80 ° C. </li><li> Pour assurer la cohérence de l&#39;inoculation à l&#39;inoculation, il est important d&#39;utiliser les mêmes pipettes et matériel de laboratoire dédié à chaque fois. </li></ol> 4. Inoculation <ol><li> Les bénévoles doivent être assis confortablement dans une position semi-allongée. </li><li&gt; En utilisant une pipette P200 et pointes à filtre stériles établir 100 pi de l&#39;inoculum et insérez la pointe juste à l&#39;intérieur de la cavité nasale. </li><li> Lentement expulser l&#39;inoculum sur la muqueuse nasale en utilisant un mouvement circulaire. </li><li> Il est essentiel que la pointe de pipette n&#39;entre pas en contact avec la muqueuse nasale comme une rupture dans l&#39;intégrité de l&#39;épithélium pourrait se traduire par des bactéries dans la circulation sanguine. </li><li> Il est également essentiel que l&#39;inoculum n&#39;est pas placé trop loin ou elle se déroulera dans la gorge, il doit se trouver à l&#39;intérieur de la cavité nasale. </li><li> Répétez l&#39;opération pour la narine autre. </li><li> Ayez le bénévolat rester dans la position semi-couchée pendant 10 min sans renifler ou se moucher. Cette alternance permet aux bactéries de se disperser à travers la muqueuse. </li></ol> 5. Surveillance <ol><li> Les bénévoles sont surveillés par jour après l&#39;inoculation. Cela inclut un message texte envoyé par le quotidien bénévole aux enquêteurs avant 14 heures. </li><li> Si le texte que jen&#39;est pas reçue par 14 heures le volontaire sera contacté pour assurer sa / son bien-être. Si il / elle ne répond pas, la prochaine alloué parent sera contacté pour assurer le volontaire du bien-être. </li><li> Les bénévoles sont invités à rendre compte des symptômes des voies respiratoires supérieures à tous les rendez-vous. Le personnel clinique demandez au volontaire de décrire ses symptômes et ses / assurera le suivi des plaintes. </li><li> Les antibiotiques donnés aux volontaires ne doivent être prises dans trois circonstances: dans le cas où ils sont malades et sont chargés de les prendre par l&#39;équipe de recherche, s&#39;ils sont porteurs pneumocoque à la fin de l&#39;étude, ou si elles sont mal et incapable de communiquer avec l&#39;équipe de recherche. Le volontaire est encouragé à maintenir cette trousse de secours avec eux pendant toute la durée de l&#39;étude et est prié de contacter l&#39;équipe de recherche sur une base quotidienne pour les 7 prochains jours. </li><li> Notre équipe est disponible 24/7 avec contact infirmière pendant les heures de travail et de deux médecins disponibles sur des hours. Toutes les requêtes sont traitées par appel téléphonique et / ou un examen immédiat. Dispositions sont disponibles pour immédiate, admission directe dans un service des maladies infectieuses, en cas de besoin. </li></ol> 6. Lavage nasal (NW) Procédure <ol><li> Lavages nasaux (NO) sont effectuées lors d&#39;une visite de dépistage initial, ainsi que 48 heures, 7 et 14 jours après l&#39;inoculation. La méthode utilisée NO est tiré de Naclerio et al. 8 volontaires naturellement colonisés par S. pneumoniae sont exclus de l&#39;inoculation et le suivi. </li><li> Le volontaire doit être confortablement assis et la tête est inclinée vers l&#39;arrière à 30 ° de la verticale. </li><li> Demandez au volontaire de prendre une profonde inspiration et retiennent leur souffle tout en poussant leur langue et vers l&#39;arrière contre le toit de la bouche. Alors que dans cette position, le volontaire est invité à indiquer qu&#39;ils sont prêts. </li><li> Une seringue remplie avec 20 ml de solution saline est inséré dans l&#39;espace nasal antérieur et 5 ml de solution saline est expulsé. Le volunteepuis se penche en avant r immédiatement et expulse le fluide en expirant par le nez rapidement dans un bol en aluminium. </li><li> Répétez cette procédure 3 fois plus de sorte que chaque narine a été lavées deux fois et la totalité des 20 ml a été utilisée. </li><li> Piscine tous les échantillons ensemble dans un tube de centrifugeuse et l&#39;envoyer au laboratoire à température ambiante pendant le traitement. </li></ol> 7. Nasal Wash traitement <ol><li> Centrifuger les échantillons pendant 10 min à 3345 x g. </li><li> Enlever le surnageant et conserver en aliquotes de 1 ml dans des tubes Eppendorf étiquetés à -80 ° C. </li><li> Ajouter 100 ul de milieu 9 StGG au culot et mélanger soigneusement. Assurez-vous que le volume total dans le tube à ce stade est déterminé. Cette dilution sera utilisé dans le calcul de l&#39;UFC d&#39;un chariot positif NO. </li><li> Plaque une baisse de 20 ul de la StGG contenant l&#39;extrait concentré sur une gélose au sang contenant de la gentamicine et de série de la plaque. <ol><li> Si le NO est post-inoculation, 10 pl retirer de la StGG contenant le culot remis en suspension et l&#39;utilisation pour la quantification bactérienne par M &amp; M méthode. </li></ol></li><li> Ajouter une autre de 800 ul StGG au tube NO et bien mélanger. </li><li> Plaque de 25 pi sur une plaque de gélose au sang et 25 pi sur une plaque de gélose chocolat, rayures toute la plaque. </li><li> Divisez les bactéries en suspension dans l&#39;montants restants StGG moyenne en 2 cryotubes et conserver à -80 ° C. </li><li> Incuber les plaques à 37 ° C pendant la nuit dans 5% de CO 2. </li><li> Examiner les plaques le lendemain pour le pneumocoque et d&#39;autres pathogènes respiratoires potentiels. </li><li> Les pneumocoques sont identifiés sur des plaques par la morphologie des colonies. Colonies hémolytiques alpha ayant une morphologie dessinateur sont repiqués sur gélose au sang avec un disque optochine et incubées pendant la nuit. </li><li> Les colonies suspectes pneumocoque qui sont sensibles sont optochine coloration de Gram pour confirmer diplocoques à Gram positif et le sérotypage en utilisant le Statens Serum Institut Pneumotest-Latex kit. </li></ol>

<ol><li>Ferreira, D. M., Jambo, K. C., Gordon, S. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Experimental+human+pneumococcal+carriage+models+for+vaccine+research%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Experimental human pneumococcal carriage models for vaccine research.</a> Trends in Microbiology. 19, 464-470 (2011).</li>
<li>Mera, R., Miller, L. A., Fritsche, T. R., Jones, R. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Serotype+replacement+and+multiple+resistance+in+Streptococcus+pneumoniae+after+the+introduction+of+the+conjugate+pneumococcal+vaccine%5BTitle%5D)+AND+%22Microbial+Drug+Resistance%22%5BJournal%5D)">Serotype replacement and multiple resistance in Streptococcus pneumoniae after the introduction of the conjugate pneumococcal vaccine.</a> Microbial Drug Resistance. 14, 101-107 (2008).</li>
<li>Tocheva, A. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Declining+serotype+coverage+of+new+pneumococcal+conjugate+vaccines+relating+to+the+carriage+of+Streptococcus+pneumoniae+in+young+children%5BTitle%5D)+AND+%22Vaccine%22%5BJournal%5D)">Declining serotype coverage of new pneumococcal conjugate vaccines relating to the carriage of Streptococcus pneumoniae in young children.</a> Vaccine. 29, 4400-4404 (2011).</li>
<li>Weinberger, D. M., Malley, R., Lipsitch, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Serotype+replacement+in+disease+after+pneumococcal+vaccination%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Serotype replacement in disease after pneumococcal vaccination.</a> Lancet. 378 (10), 1962-1973 (2011).</li>
<li>Wu, H. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Establishment+of+a+Streptococcus+pneumoniae+nasopharyngeal+colonization+model+in+adult+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Microb.+Pathog%22%5BJournal%5D)">Establishment of a Streptococcus pneumoniae nasopharyngeal colonization model in adult mice.</a> Microb. Pathog. 23, 127-137 (1997).</li>
<li>Wright, A. K. A., Ferreira, D. M., Gritzfeld, J. F., Wright, A. D., Armitage, K., Jambo, K. C., Bate, E., Batrawy, S. E. l, Collins, A., Gordon, S. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+Nasal+Challenge+with+Streptococcus+pneumoniae+is+Immunising+in+the+Absence+of+Carriage%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+Pathogens%22%5BJournal%5D)">Human Nasal Challenge with Streptococcus pneumoniae is Immunising in the Absence of Carriage.</a> PloS Pathogens. 8 (4), e1002622(2012).</li>
<li>Miles, A. A., Misra, S. S., Irwin, J. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+estimation+of+the+bactericidal+power+of+the+blood%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Hygiene%22%5BJournal%5D)">The estimation of the bactericidal power of the blood.</a> The Journal of Hygiene. 38, 732-749 (1938).</li>
<li>Naclerio, R. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mediator+release+after+nasal+airway+challenge+with+allergen%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+Rev.+Respir.+Dis%22%5BJournal%5D)">Mediator release after nasal airway challenge with allergen.</a> Am. Rev. Respir. Dis. 128, 597-602 (1983).</li>
<li>O'Brien, K. L., Nohynek, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Report+from+a+WHO+working+group%3A+standard+method+for+detecting+upper+respiratory+carriage+of+Streptococcus+pneumoniae%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatr.+Infect.+Dis+J%22%5BJournal%5D)">Report from a WHO working group: standard method for detecting upper respiratory carriage of Streptococcus pneumoniae.</a> Pediatr. Infect. Dis J. 22, 133-140 (2003).</li>
<li>Gritzfeld, J. F., Roberts, P., Roche, L., Batrawy, S. E. l, Gordon, S. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+between+nasopharyngeal+swab+and+nasal+wash%2C+using+culture+and+PCR%2C+in+the+detection+of+potential+respiratory+pathogens%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Research+Notes%22%5BJournal%5D)">Comparison between nasopharyngeal swab and nasal wash, using culture and PCR, in the detection of potential respiratory pathogens.</a> BMC Research Notes. 4, 122(2011).</li>
<li>McCool, T. L., Cate, T. R., Moy, G., Weiser, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+immune+response+to+pneumococcal+proteins+during+experimental+human+carriage%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Med%22%5BJournal%5D)">The immune response to pneumococcal proteins during experimental human carriage.</a> J. Exp. Med. 195, 359-365 (2002).</li>
</ol>

Aucun conflit d&#39;intérêt déclaré.

La plate-forme EHPC a un certain nombre d&#39;utilisations possibles, y compris l&#39;utilisation comme un modèle vaccin muqueux et comme substitut de protection pour tester des vaccins de protéines nouvelles. La méthode dépend d&#39;une technique d&#39;inoculation uniforme et une haute qualité NO. La reproductibilité peut être un problème avec l&#39;inoculum. En raison de la nature variable des aliquotes congelées bactériennes, il peut être difficile de reproduire la dose souhaitée. Une réduction de moitié ou doubler la dose désirée est considéré à sa portée. Il est essentiel que la quantification bactérienne se faire immédiatement avant et suivant l&#39;inoculation, afin de déterminer avec précision la quantification des bactéries en UFC compte. Pour cette raison, il peut être utile si les nominations de bénévoles se produire simultanément de sorte que seul un inoculum besoin d&#39;être préparé et le placage quantification réalisée avant et après l&#39;inoculation se passe pas plus de 30 minutes d&#39;intervalle. Procédé NO nécessite la coopéraration du volontaire et ne serait pas une méthode idéale chez les enfants. Si le rendement est inférieur à 5 ml, la procédure peut être répétée jusqu&#39;à l&#39;utilisation d&#39;une remise de 20 ml. Port de prothèses dentaires peuvent réduire le rendement NW. Si le bénévole a une bloqué / nez bouché et la solution saline est compté antérieurement après l&#39;insertion, de se moucher, insérez la seringue un peu plus loin en arrière, et incliner la tête en arrière plus si nécessaire. Le NO est une technique qui s&#39;améliore avec la pratique. Certains volumes seront généralement perdu tant l&#39;objectif est un rendement d&#39;au moins 10 ml. Si le volontaire peut déguster une solution saline pendant le NO, la connexion entre le nasopharynx et de l&#39;oropharynx postérieur n&#39;a pas été suffisamment fermé par la langue du volontaire. Si la plupart des bénévoles avale de la solution saline, expliquer la procédure, en insistant sur la poussée de la langue contre le palais de la bouche. Ensuite, répétez la procédure pour augmenter le volume retourné. Si le NO contient une substantial montant de mucus, il est préférable de l&#39;enlever avant la centrifugation. Vortex de l&#39;échantillon de façon à desserrer tout ce qui pourrait être lié au mucus, puis enlever autant de grands morceaux que possible tout en retirant une solution saline peu que possible. Une étude précédente EHPC aux Etats-Unis a été effectué en toute sécurité et a eu aucun événement indésirable 11. Pour assurer la sécurité permanente de la plate-forme EHPC, nous avons mis en place un protocole d&#39;urgence qui est basé sur un accès 24 h à l&#39;équipe de recherche. Les bénévoles reçoivent les coordonnées, leur permettant d&#39;accéder à l&#39;équipe de recherche de 24 heures par jour. Tous les soins médicaux nécessaires est fournie à l&#39;Hôpital Royal Liverpool University. Comme mesure supplémentaire de protection, un comité de sécurité composé de cliniciens et de scientifiques provenant de l&#39;extérieur du groupe de recherche reçoit un rapport de sécurité hebdomadaire. Le rapport contient la dose bactérienne chaque bénévole a reçu et si des symptômes de la maladie ont été signalés. Ce rapport permet la sécurité des èmee étude à l&#39;extérieur critiqué sans parti pris. Le comité de sécurité sont également disponibles 24 heures par jour dans le cas improbable d&#39;une urgence.

<table border="1"><tbody><tr><td> Nom </td><td> Entreprise </td><td> Cat # </td></tr><tr><td> Glycérol </td><td> Pêcheur </td><td> G/0650/08 </td></tr><tr><td> Chlorure de sodium à 0,9% </td><td> B. Braun </td><td> 3627667 </td></tr><tr><td> Poudre de lait écrémé </td><td> Fluka </td><td> 70166 </td></tr><tr><td> Bouillon tryptone soja </td><td> Becton Dickinson </td><td> 211768 </td></tr><tr><td> Glucose </td><td> BDH </td><td> 284504S </td></tr><tr><td> Gélose Columbia au sang de cheval chocolaté </td><td> Oxoid </td><td> PB0124 </td></tr><tr><td> Pneumotest-latex kit </td><td> Statens Serum Institut </td><td> 51823 </td></tr></tbody></table>

expérimentale transport pneumocoque humaines

Experimental Human Pneumococcal Carriage

Expérimentale chariot pneumocoque humaine (EHPC) est scientifiquement important parce que le portage nasopharyngé de Streptococcus pneumoniae est à la fois la principale source de transmission et la condition sine qua non de la maladie invasive. Un modèle de transport permettra de déterminer avec précision les indicateurs immunologiques de la protection, l&#39;effet immunisant du transport et de l&#39;effet de la pression d&#39;accueil de l&#39;agent pathogène dans le créneau du nasopharynx. En outre, les méthodes de détection de chariot utiles dans les études épidémiologiques, y compris les études sur les vaccins, peuvent être comparés. Objectif Nous visons à développer une plate-forme EHPC qui est une méthode sûre et reproductible utile qui pourrait être utilisé pour le bas-sélection des candidats vaccins contre le pneumocoque à la prévention de nouvelles de transport comme un substitut de l&#39;immunité induite par le vaccin. Il travaillera à l&#39;essai de vaccins candidats et les descriptions des mécanismes sous-jacents EHPC et la protection vaccinale de Carriage 1. Les vaccins conjugués contre le pneumocoque actuelles protéger les enfants contre les maladies invasives bien de nouveaux vaccins sont nécessaires d&#39;urgence que le vaccin actuel ne confère pas une protection optimale contre la pneumonie non bactériémique et il ya eu des preuves de remplacement des sérotypes de sérotypes non vaccinaux 2-4. Méthode Nous inoculer avec S. pneumoniae en suspension dans 100 ul de solution saline. La sécurité est un facteur majeur dans le développement du modèle EHPC et est réalisé grâce à un dépistage volontaire et de leur contrôle. Un comité de sécurité composé de cliniciens et de scientifiques qui sont indépendantes de l&#39;étude fournit des informations objectives sur une base hebdomadaire. L&#39;inoculum bactérien est normalisé et exige qu&#39;aucune produits animaux sont inoculés dans des bénévoles (à base de légumes médias et salines). Les doses requises pour la colonisation (10 4 -10 5) sont beaucoup plus faibles than ceux qui sont utilisés dans des modèles animaux (10 7) 5. Détection chariot pneumocoque est renforcée par un volume élevé (idéalement&gt; 10 ml) de lavage nasal de mucus qui est relativement libre. Ce protocole traitera des aspects les plus importants du protocole à son tour. Il s&#39;agit de la sélection des bénévoles (a), (b) préparation de l&#39;inoculum à pneumocoque, (c) l&#39;inoculation, (d) le suivi et la détection de chariot (e). Résultats Notre protocole actuel a été en sécurité dans plus de 100 bénévoles à une gamme de doses en utilisant deux différents sérotypes bactériens 6. Une étude dose-ranging utilisant S. pneumoniae 6B et 23F est actuellement menée afin de déterminer la dose optimale d&#39;inoculation pour le transport de 50%. Un taux prévu de 50% du transport permettra le modèle EHPC d&#39;avoir une grande sensibilité pour l&#39;efficacité du vaccin avec un nombre d&#39;études de petite taille.

Nous avons l&#39;expérience inoculer 159 personnes, dont 35 ont effectué le pneumocoque. La dose la plus faible nous avons atteint chariot avec l&#39;aide de sérotype 6B était 11.100 pi par narine UFC/100, la dose la plus élevée était de 313 000 UFC/100 ul par narine. La dose la plus faible nous avons atteint chariot avec l&#39;aide de sérotype 23F est 9000 UFC/100 ul par narine, la dose la plus élevée était de 84 500 pi par narine UFC/100. Notre méthode d&#39;évaluation chariot est un lavage nasal, choisi parce qu&#39;une étude récente 10 a montré que 91% des volontaires ont trouvé lavage nasal à être plus à l&#39;aise que écouvillonnage du nasopharynx, le lavage nasal était également plus susceptibles de détecter des agents pathogènes en utilisant la culture microbiologique. La flore microbienne récupérés sur des plaques de gélose au sang inoculés avec NO peut être variable et difficile à lire. La gentamicine est utilisé sur la gélose au sang d&#39;abord sélectionner pour le pneumocoque. La gélose chocolat et la plaque de gélose sang deuxième sont utilisés pour détecter d&#39;autres parcours respiratoire potentielOgens qui peuvent aider ou entraver la colonisation pneumococcique. Un exemple d&#39;une plaque de gélose au sang inoculé avec NO qui est facile à lire est illustré à la figure 1a; une plaque difficile contenant de nombreux types de flore est montré dans la figure 1b. À tous les bénévoles de rendez-vous a été demandé de décrire les symptômes des voies respiratoires supérieures, s&#39;il est présent, et les comparaisons entre les transporteurs et les non-porteurs ont été mis en évidence. Sur les 145 personnes récemment inoculés avec le pneumocoque, 28 se plaignaient de symptômes (tableau 1). Huit d&#39;entre eux étaient porteurs, vingt étaient pas. Les symptômes les plus fréquents étaient des symptômes non spécifiques nasales (tableau 1). Parmi les cas pour lesquels il a été signalé des symptômes systémiques, y compris la fièvre et / ou de malaise, aucune des enquêtes menées ont montré des signes de maladie à pneumocoques et les symptômes étaient compatibles avec une infection virale concomitante sauf dans un cas d&#39;amygdalite. Deux pneumocoque positivvolontaires ont été e traitée avec des antibiotiques. L&#39;un se plaignait de maux de gorge et des maux d&#39;oreille et, après avoir rencontré le médecin de l&#39;étude, a été conseillé de prendre des antibiotiques à titre préventif. L&#39;autre volontaire a été diagnostiqué cliniquement avec une amygdalite. Tous les bénévoles ont eu une résolution rapide des symptômes. <img alt="Figure 1" src="/files/ftp_upload/50115/50115fig1.jpg" /> Figure 1. Gélose au sang inoculé avec NO. Géloses inoculées avec du sang NO peut être difficile à lire. 1a est un exemple d&#39;une plaque qui est facile à lire avec des pneumocoques clairement visible. 1b est une plaque avec beaucoup de co-colonisateurs flore rendant plus difficile à détecter si les pneumocoques est présent. <table border="1"><tbody><tr><td> Symptômes </td><td></td><td> Chariot (n = 32) </td><td> Pas de transport (n = 112) </td></tr><tr><td> Toussymptômes </td><td></td><td> 24% </td><td> 18% </td></tr><tr><td> Systémique </td><td> Fièvre </td><td> 3% </td><td> 4% </td></tr><tr><td></td><td> * Malaise </td><td> 9% </td><td> 4% </td></tr><tr><td> Local </td><td> Ouïe </td><td> 9% </td><td> 3% </td></tr><tr><td></td><td> Nez </td><td> 0 </td><td> 10% </td></tr><tr><td></td><td> Gorge </td><td> 12% </td><td> 3% </td></tr></tbody></table> Tableau 1. Caractérisation des bénévoles ont signalé des symptômes après S. pneumoniae 6B inoculation. Toutes les plaintes ont été examinées par le comité de sécurité externe et, à la suite des enquêtes approfondies, aucun symptôme n&#39;a été attribués à la maladie pneumococcique. Les symptômes les plus communs sont le mal de gorge, nez et farcies syndrome pseudo-grippal.

Expérimentale chariot pneumocoque humain offre un modèle naturel de transport et un modèle potentiel pour une utilisation dans le développement de vaccins. Cette technique est utile mais complexe et implique un risque clinique par l&#39;introduction d&#39;un agent pathogène dans un être humain. Nous avons développé un protocole détaillé.

Expérimentale transport pneumocoque humaines

Experimental human pneumococcal carriage (EHPC) is scientifically important because nasopharyngeal carriage of Streptococcus pneumoniae is both the major ...

Le but de cette procédure est d’établir un portage expérimental du pneumocoque humain. Pour ce faire, il faut d’abord diluer et quantifier les bactéries présentes dans l’inoculum. Dans la deuxième étape, le volontaire est inoculé par voie intranasale avec streptococcus pneumoniae.Ensuite, le volontaire subit un lavage nasal les jours deux, sept et 14 après l’inoculation. Enfin, la microbiologie classique est utilisée pour déterminer si le volontaire est porteur de l’occus inoculé. En fin de compte, un portage pneumococcique humain expérimental peut être obtenu en utilisant cette méthode sûre et reproductible.Le principal avantage de cette technique par rapport aux modèles de portage murin existants est qu’elle offre un modèle de portage chez l’hôte naturel du pneumocoque, l’homme. De plus, cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine du pneumocoque, telles que quels sont les corrélats immunologiques de la protection ? Quel est l’effet immunisant du portage et quel est l’effet de la pression de l’hôte sur l’agent pathogène dans la niche nasopharyngée ?Les applications de cette technique comprennent son utilisation comme méthode pour sélectionner de nouveaux vaccins antipneumococciques. Nous prévoyons d’utiliser la prévention du portage comme substitut de l’immunité induite par le vaccin. La démonstration de la technique clinique sera assurée par la sœur Angie Wright et l’infirmier responsable David Shaw.30 minutes avant le rendez-vous prévu pour l’inoculation des volontaires, un tube de stock d’inoculum prélevé dans le congélateur à moins 80 degrés Celsius. Ensuite, faites tourner l’inoculum tho dans une micro-centrifugeuse pendant trois minutes à 17 000 fois. G, pendant que le tube tourne, réchauffez des plaques de gélose au sang dans un incubateur à 37 degrés Celsius.Retirez ensuite le bouillon de l’inoculum de la centrifugeuse et lavez la pastille dans un millilitre de solution saline. Répétez l’étape de centrifugation et de lavage. Effectuez un ensemble de dilution pour la concentration d’inoculum souhaitée, puis quantifiez la quantité de bactéries dans l’inoculum par une méthode semblable à celle des kilomètres et du misra.Les colonies développées deviendront visibles le lendemain. Apportez l’inoculum au volontaire qui doit être assis confortablement en position semi-allongée. Puis à l’aide d’un perpe P 200 et d’embouts filtrants stériles.Prélevez 100 microlitres d’inoculum dans l’embout perpe et insérez l’embout juste à l’intérieur de la cavité nasale. Expulsez lentement l’inoculum sur la muqueuse nasale en effectuant un mouvement circulaire. Ne placez pas l’embout de la pipette trop en arrière, sinon l’inoculum coulera dans la gorge.Répétez l’inoculation pour les autres narines afin d’éviter que les bactéries ne pénètrent dans la circulation sanguine. Attention à ne pas perturber la muqueuse avec la pipette. Ensuite, demandez au volontaire de rester en position semi-allongée pendant 10 minutes pour permettre aux bactéries de se disperser sur la muqueuse.Après avoir administré l’inoculum aux volontaires, répétez la quantification bactérienne au laboratoire. Étiquetez ensuite le tube avec la date et la dose d’inoculum, et conservez l’inoculum à moins 80 degrés Celsius. Avant de commencer le lavage nasal, demandez au volontaire de s’asseoir confortablement, la tête inclinée vers l’arrière à 30 degrés par rapport à la verticale.Ensuite, demandez au bénévole de prendre et de retenir une profonde respiration tout en poussant la langue vers le haut et vers l’arrière contre le toit de la bouche. Demandez au bénévole de signaler lorsque cette position est atteinte. Maintenant, lavez la cavité nasale quatre fois avec 20 millilitres de solution saline, en déchargeant cinq millilitres de solution saline à la fois dans l’espace nasal antérieur.Demandez au volontaire de se pencher immédiatement en avant et d’expirer rapidement par le nez dans un bol en aluminium pour expulser le liquide après chaque rinçage salin de cinq millilitres. Après avoir lavé la cavité nasale avec les quatre 20 millilitres, rassemblez tous les échantillons collectés dans un tube à centrifuger. Maintenant, centrifugez les échantillons volontaires de lavage nasal pendant 10 minutes à 3 345 fois G. Retirez le supinate et stockez-le sous forme d’aliquotes d’un millilitre dans des tubes einor étiquetés à moins 80 degrés Celsius.Ajoutez 100 microlitres de milieu STGG à la pastille et mélangez soigneusement, puis déterminez le volume total dans le tube. Plaque suivante, une goutte de 20 microlitres de la pastille remise en suspension sur une plaque de gélose au sang contenant de la gentamycine et striez toute la plaque. Si le lavage nasal est post-inoculation, utilisez 10 microlitres de STGG contenant la pastille remise en suspension.Pour la quantification bactérienne par la méthode des miles et Misra, ajoutez 800 microlitres supplémentaires de STGG dans le tube de lavage nasal et mélangez soigneusement. Ensuite, versez 25 microlitres de la solution de cellules bactériennes STGG sur une autre plaque de gélose au sang et 25 microlitres sur une plaque de gélose au chocolat, en striant l’intégralité des deux plaques. Congelez ensuite les bactéries restantes dans deux flacons cryogéniques à moins 80 degrés Celsius.Incuber les plaques à 37 degrés Celsius pendant la nuit dans 5 % de dioxyde de carbone. Le lendemain, examinez les plaques à la recherche de pneumocoques et d’autres agents pathogènes respiratoires potentiels. Les plaques de gélose au sang, inoculées avec des lavages nasaux, peuvent être difficiles à lire.Cette image montre un exemple de plaque facile à lire avec les pneumocoques clairement visibles. Cependant, cette plaque contient de nombreuses flores co-colonisatrices, ce qui rend plus difficile de déterminer si des pneumocoques sont présents à chaque rendez-vous. On a demandé aux volontaires de décrire tout symptôme des voies respiratoires supérieures s’il était présent, et la comparaison entre les porteurs et les non-porteurs a été mise en évidence.Sur les 145 personnes récemment inoculées avec le pneumocoque, 28 se sont plaintes de symptômes, comme le résume ce tableau. Huit de ces volontaires étaient des porteurs, 20 ne l’étaient pas. Toutes les plaintes ont été examinées par le comité de sécurité externe et ont fait l’objet d’enquêtes approfondies.Aucun symptôme n’a été attribué à une pneumococcie. Les symptômes les plus courants étaient le mal de gorge, le nez bouché et la grippe. Lors de cette procédure, il est important d’avoir un plan de sécurité très complet en place, qui couvre chaque étape de la méthode, en particulier pour la sécurité des volontaires.Après avoir regardé cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension de la façon d’établir un portage pneumococcique humain expérimental et de détecter le portage à l’aide d’un lavage nasal.

Research

Recherche

JoVE Journal

Medicine

Médecine

La colonisation du nasopharynx murin avec Streptococcus pneumoniae et l’extraction ultérieure des cellules adhérentes ou recrutées sont décrites. Cette technique consiste à rincer le nasopharynx et la collecte du liquide à travers les narines et est adaptable à diverses lectures, y compris la quantification cellulaire différentielle et l’analyse de l’expression de l’ARNm in situ.

Caractérisation des réponses inflammatoires au cours de la colonisation intranasale avec Streptococcus pneumoniae

Les essais in vitro d'adhérence peuvent être utilisés pour étudier la fixation de Streptococcus pneumoniae à des monocouches de cellules épithéliales et d'enquêter sur les interventions possibles tels que l'utilisation des probiotiques pour inhiber la colonisation pneumococcique.

Étude des effets des probiotiques sur la colonisation pneumococcique l&#39;aide d&#39;un<em&gt; In Vitro</em&gt; Respect de dosage

Streptococcus pneumoniae est l'agent pathogène menant pneumopathies sévères acquis communautaire et responsable de plus de 2 millions de décès dans le monde. L'impact des facteurs bactériens impliqués dans la virulence de remise en forme ou peut être contrôlé en temps réel dans une pneumonie ou une bactériémie modèle de souris en utilisant des bactéries bioluminescentes aiguë.

Après en temps réel l&#39;impact des facteurs de virulence contre le pneumocoque dans une souris modèle pneumonie aiguë avec bactéries bioluminescentes

Streptococcus pneumoniae forme des lésions microscopiques discrètes non purulentes dans le cœur. Le protocole pour un modèle murin de formation de microlésions cardiaques est décrit. Des instructions sont fournies sur la visualisation des microlésions à l’aide de la microscopie, la discrimination entre les microlésions précoces et tardives et les méthodes de détection du remodelage cardiaque dans le cœur des animaux convalescents.

Visualisation des<em&gt; Streptococcus pneumoniae</em&gt; Dans les microlésions cardiaques et le remodelage cardiaque ultérieur

Plusieurs procédés ont été décrits dans la littérature pour la modélisation de la pneumonie bactérienne chez les souris. Nous décrivons ici un peu coûteux, un procédé rapide et non invasif destiné à induire une pneumonie par aspiration ( par exemple, inhalation) , d'un inoculum bactérien pipeté dans l'oropharynx. méthodes en aval pour l'évaluation de la réponse immunitaire innée pulmonaire sont également détaillées.

Une méthode non-invasive et technique non-intensif pour Induction et phénotypage of Experimental pneumonie bactérienne chez les souris

Une méthode d’établissement des infections pulmonaires chez les rongeurs immunocompétents est décrite. Avec de l’habileté, cette méthode peut être mise en œuvre rapidement et facilement pour induire une infection stable avec de nombreux isolats de S. pneumoniae, H. influenzae, P. aeruginosa, K. pneumoniae et A. baumannii.

Un modèle de pneumonie robuste en immunocompétents Rongeurs pour évaluer Efficacité antibactérienne contre<i&gt; S. pneumoniae</i&gt;,<i&gt; H. influenzae</i&gt;,<i&gt; K. pneumoniae</i&gt;,<em&gt; P. aeruginosa</em&gt; ou<em&gt; A. baumannii</em

Un protocole simplifié permettant d’effectuer une caractérisation biochimique et structurelle vaste une protéine de liaison du substrat glucidique de Streptococcus pneumoniae est présenté.

Caractérisation biochimique et structurelle de l’hydrate de carbone Transport substrat-GRB2 SP0092

Cette étude décrit la surveillance microscopique de l'adhérence au pneumocoque aux chaînes de facteur von Willebrand produites à la surface des cellules endothéliales primaires humaines différenciées sous l'effort de cisaillement dans des conditions définies d'écoulement. Ce protocole peut être étendu à la visualisation détaillée de structures cellulaires spécifiques et à la quantification des bactéries en appliquant des procédures d'immunostaining différentielles.

Infection de Pneumococcus des cellules endothéliales humaines primaires dans le flux constant

Ici, nous décrivons une souche 519/43 de sérotype 1 de S. pneumoniae qui peut être génétiquement modifiée en utilisant sa capacité à acquérir naturellement de l’ADN et un plasmide suicide. Comme preuve de principe, un mutant isogénique dans le gène de la pneumolysine (pli) a été fabriqué.

Construction de mutants dans la souche 519/43 de Streptococcus pneumoniae de sérotype 1

Cet article décrit un nouveau modèle murin pour la transition du pneumocoque d’un colonisateur asymptomatique à un agent pathogène pathogène au cours d’une infection virale. Ce modèle peut être facilement adapté pour étudier les interactions polymicrobiennes et hôte-pathogène au cours des différentes phases de la progression de la maladie et entre divers hôtes.

Un modèle murin pour la transition de Streptococcus pneumoniae de colonisateur à pathogène lors d’une co-infection virale récapitule la maladie exacerbée par l’âge

Découvrez comment établir un portage expérimental du pneumocoque chez l'humain par inoculation intranasale de Streptococcus pneumoniae. Cette méthode permet d'étudier l'immunité et de développer de nouveaux vaccins.

Expérimentale transport pneumocoque humaines

Explorer plus de vidéos