Name: Les dosages biochimiques pour lanalyse des activités de lATP-dépendant remodelage de la chromatine enzymes (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-10-25T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 14 s
Description: Découvrez les dosages biochimiques pour caractériser les enzymes de remodelage de la chromatine dépendantes de l'ATP. Cette méthode utilise l'EMSA et la chromatographie sur couche mince pour mesurer le glissement des nucléosomes et l'activité ATPasique.

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Le travail dans le laboratoire des auteurs est soutenu par une subvention du National Institute of General Medical Sciences (GM41628) et par une subvention au Stowers Institute for Medical Research du Helen Nelson Medical Research Fund de la Greater Kansas City Community Foundation.

1. dépendant de l&#39;ATP nucléosome Rénovation Essais Pour mesurer ATP-dépendant des activités de remodelage des nucléosomes, immunopurifié INO80 ou sous-complexes de INO80 sont incubées avec de l&#39;ATP et un substrat de mononucleosomal, qui contient un seul nucléosome positionné à une extrémité d&#39;un fragment d&#39;ADN de 216 pb, marqué au 32P. Les produits de réaction sont ensuite soumis à une électrophorèse dans des gels de poly-acrylamide natif. <ol><li> Pour générer le P-marqué, «601» fragment 32 d&#39;ADN, amplification de pGEM-3Z-601 4 un fragment d&#39;ADN de 216 pb contenant une 601 séquence de positionnement des nucléosomes d&#39;extrémité positionnée, en utilisant les oligonucléotides 5&#39;-ACAGGATGTATATATCTGACACGTGCCTGG et 5&#39;-AATACTCAAGCTTGGATGCCTGCAG que amorces sens et antisens. <ol><li> Mettre en place une réaction PCR de 100 pi, comme décrit dans le tableau 1. </li><li> Effectuer les réactions PCR dans un thermocycleur en utilisant le programme suivant: 1 mn à 96 ° C, followed de 45 sec à 94 ° C, 30 sec à 57 ° C, 60 secondes à 72 ° C pendant 30 cycles; se terminant par 7 min à 72 ° C. </li><li> Après la réaction de PCR est terminée, retirez les nucléotides non constituées en faisant passer les produits de la réaction deux fois à travers des colonnes de centrifugation sans nucléase. </li><li> Exécuter 5 ul du produit de PCR purifié dans un gel d&#39;agarose à 1,2% pour confirmer que la réaction PCR a généré l&#39;~ fragment d&#39;ADN de 216 pb désiré. </li><li> Diluer 5 ul du produit de PCR purifié 20 fois, et de mesurer la concentration d&#39;ADN en utilisant un spectrophotomètre UV. Le rendement moyen est d&#39;environ 40 ng / ul. </li><li> Mesurer la radioactivité de 1 ul du produit de PCR purifié dans un compteur à scintillation. Estimer l&#39;efficacité de l&#39;étiquetage en calculant le cpm / ng. On s&#39;attend à une réaction de marquage succès pour obtenir ~ 15 000 cpm / ng de 601 fragment d&#39;ADN. </li></ol></li><li> Transfert de cellules Hela nucléosomes sur l&#39;ADN marqué 601 en utilisant une méthode de dilution en série 5. <ol><li> Mélanger 2 pmol deMarqué au 32P 601 fragment d&#39;ADN de 6 pg de nucléosomes Hela (préparé comme décrit 5) dans 50 pl d&#39;un tampon contenant 1,0 M de NaCl, 10 mM Tris-HCl, pH 8,0, EDTA 1 mM, mM PMSF 0,1, et 1 mM DTT et incuber à 30 ° C pendant 30 min. </li><li> Diluer le mélange séquentiel à 0,8 M, 0,6 M et 0,4 M de NaCl, par dilution avec 12,5 ul, 20,8 ul, et 41,6 pi, respectivement, de 10 mM de Tris-HCl (pH 8,0), EDTA 1 mM, PMSF 0,1 mM, et DTT 1 mM, avec une incubation de 30 min à 30 ° C après chaque dilution. </li><li> Diluer ensuite le mélange à 0,2 M puis de NaCl 0,1 M par addition de 125 ul et 250 ul du même tampon contenant 0,1% de Nonidet P-40, 20% de glycérol, et 200 pg / ml de BSA, avec une incubation de 30 min à 30 ° C entre les deux dilutions finales. Stocker le substrat mononucléosome à 4 ° C pendant 3 mois. </li></ol></li><li> Réaliser des réactions de nucléosomes glissement dépendant de l&#39;ATP dans un volume total de 10 pl. Le reacomposants ction sont répertoriés dans le tableau 2. Puisque la concentration de NaCl optimale pour l&#39;activité des nucléosomes de remodelage INO80 est d&#39;environ 50 mM de NaCl (résultats non publiés), ajuster la concentration totale de NaCl dans chaque réaction à 50 mM, en tenant compte de la quantité de NaCl contenue dans les préparations de l&#39;enzyme et nucléosomes. <ol><li> Avant de commencer à mettre en place les tests, fonte des gels de poly-acrylamide natifs (18 x 16 cm). Pour préparer un gel contenant 5% d&#39;acrylamide (acrylamide: bis-acrylamide à 37,5: 1), 0,5 x TBE (45 mM de Tris borate, 1 mM EDTA), 0,01% de persulfate d&#39;ammonium (APS), et 0,001% de N, N, N &#39;, N&#39;-tetramethylethylenediamine (TEMED), mélanger les ingrédients énumérés dans le tableau 3. Laisser le gel polymériser pendant au moins 2 heures à température ambiante. </li><li> Pendant ce temps, pour chaque réaction à effectuer, mélanger dans un tube de silicone de 1,5 ml pré-réfrigérés ~ 20 nM INO80 ou INO80 sous-complexe (préparé comme décrit 3) avec une quantité de tampon EB100 ( <strong&gt; Tableau 4) suffisante pour obtenir un volume de 4,75 ul. Immédiatement recongeler des fractions contenant de INO80-restant dans la glace sèche en poudre ou de l&#39;azote liquide. </li><li> Configuration d&#39;un cocktail de maître avec le reste des ingrédients, mise à l&#39;échelle par un facteur de &#39;X&#39; (où X = nombre total de réactions 3). La quantité de chaque ingrédient nécessaire pour une seule réaction de 10 ul est listé dans le tableau 5; la recette doit être agrandi en fonction du nombre de réactions à effectuer. Mélangez bien en appuyant sur le tube ou par aspiration et refoulement avec un Pipetman et tourner le tube pendant quelques secondes dans une microcentrifugeuse de paillasse. </li><li> Verser 5,25 pi du cocktail maître à chacun des tubes réactionnels mis en place à l&#39;étape 1.3.2. Bien mélanger par pipetage de haut en bas. Démarrer la réaction en transférant des tubes de réaction dans un bain à 30 ° C-bloc de la chaleur ou de l&#39;eau et incuber pendant 2 heures. </li><li> Pendant ce temps, préparer «l&#39;élimination mix &#39;cocktail contenant de l&#39;ADN de concurrentet nucléosomes, mise à l&#39;échelle par un facteur de X (X = nombre total de réactions + 4). La quantité de chacun des ingrédients nécessaires à la préparation de 1,5 ul de mélange pour retirer une seule réaction est listé dans le tableau 6; la recette doit être agrandi en fonction du nombre d&#39;essais à effectuer. </li><li> Terminer réactions en ajoutant 1,5 ul du mélange retirer. Mélangez bien, spin-down, et incuber à 30 ° C pendant encore 30 min. </li><li> Pendant ce temps, pré-exécuter le gel de polyacrylamide natif dans une unité d&#39;électrophorèse vertical à 100 V pendant 30 min à 4 ° C, à l&#39;aide 0.5x TBE comme tampon avec une barre d&#39;agitation magnétique à l&#39;intérieur de la chambre inférieure pour maintenir la circulation de tampon constant. </li><li> Pour charger l&#39;échantillon, ajouter 2,5 pi de colorant de charge contenant 3x TBE, 30% de glycérol, 0,25% de bleu de bromophénol, et 0,25% Xylène Cyanol FF. Mélangez bien, centrifuger brièvement les échantillons, et les charger sur le gel à l&#39;aide des conseils de chargement. </li><li> Exécuter le gel à 200 V pendant 4,5 heures à 4 ° C avec une circulation d&#39;un tampon.</li><li> Pour détecter le signal, le gel à transférer un empilement de deux feuilles de papier filtre. Enroulez le papier filtre avec le gel sur le dessus, avec un collier en plastique transparent, puis l&#39;exposer à un écran au phosphore de stockage à 4 ° C pendant le temps désiré. </li><li> Balayer l&#39;écran d&#39;un système de scanner d&#39;imagerie par isotope et analyser les données en utilisant un logiciel approprié. </li></ol></li></ol> 2 mononucléosome essais de liaison Pour doser l&#39;affinité de liaison d&#39;un complexe de INO80 donné pour mononucléosomes, effectuer un décalage de mobilité électrophorétique Assay (EMSA) en utilisant le substrat de mononucleosomal généré à l&#39;étape 1.2. <ol><li> Mettre en place la réaction mélanges pour les analyses de liaison comme décrit pour les essais de remodelage du nucléosome mais omettre l&#39;ATP et la suppression mélange des réactions; incuber à 30 ° C pendant 30 min. </li><li> Ajouter 2,5 pi de colorant de charge à chaque mélange réactionnel, et l&#39;appliquer à un gel de polyacrylamide natif contenant 3,5% d&#39;acrylamide (acrylamide: bis 37,5: 1), 1% de glycérol, 0.5x TBE, 0,01% APS, et 0,001% TEMED. </li><li> Utilisation 0.5x TBE comme tampon, exécutez le gel à 200 V pendant 2,5 heures à 4 ° C avec circulation de tampon et exposer à un écran au phosphore de stockage. </li></ol> 3. ADN et Nucléosome dépendantes ATPase dosages Réaliser des tests de ATPase dans des mélanges réactionnels 5 ul contenant 20 mM de Tris-HCl (pH 7,5), 60 mM de NaCl, 6,6 mM de MgCl2, mM EDTA 0,8, 0,015% de Nonidet P-40, 2,5% de glycerol, 0,1 mg / ml de BSA, 1 mM de DTT, 0,1 mM PMSF, 2 mM d&#39;ATP, 2 pCi de [α- 32 P] ATP (3000 Ci / mmol). Pour chaque complexe INO80 ou la quantité de complexe INO80 à doser mis en place trois réactions parallèles, un tampon de EB100 contenant à mesurer l&#39;ADN ou nucléosome indépendant ATPase, un contenant fermé ADN plasmidique circulaire (5000 pb, ~ 30 nM) pour mesurer l&#39;ADN ATPase dépendante, et un contenant (~ 185 nM) de Hela pour mesurer nucléosome dépendant ATPase. Mettre en place toutes les réactions sur la glace. <ol&gt; <li> Pour chaque réaction, combiner 10-50 nM des INO80 ou INO80 Subcomplexes immunopurifiés avec une quantité de tampon de EB100 suffisante pour obtenir un volume de 2,2 ul dans lubrifiés 1,5 ml microtubes pré-réfrigérés. Immédiatement recongeler des fractions contenant INO80-dans de la glace sèche en poudre ou de l&#39;azote liquide. </li><li> Mettre en place un master cocktail. La quantité de chaque ingrédient nécessaire pour une seule réaction est listé dans le tableau 7. Grande échelle la recette par mise à l&#39;échelle par un facteur de 3 (X + 2) 1, où X = le nombre de préparations de INO80 à doser. </li><li> Pour préparer le tampon contenant &#39;sous-cocktails seulement, ADN, ou nucléosomes, distribuent 2,5 (X + 2) ul du maître cocktail dans trois tubes séparés. Ajouter 0,3 (X + 2) ul soit EB100, l&#39;ADN plasmidique circulaire fermé (1,5 ug / ul), ou (1,5 pg / la ul) de Hela et bien mélanger. </li><li> Distribuer 2,8 pi de la sous-cocktail approprié pour les tubes de réaction contenant des enzymes créé à Saint-ep 3.1. Pipette doucement monter et descendre à mélanger; éviter d&#39;introduire des bulles. </li><li> Pour démarrer les réactions, transférer les tubes de réaction à un bloc C à la chaleur de 30 °. </li><li> Après 5, 15, 30, et 60 min d&#39;incubation, repérer 0,5 ul de chaque mélange réactionnel sur une chromatographie cellulose polyéthylèneimine sur couche mince (CCM) plaque (20 x 10 cm), en ligne droite d&#39;au moins 1,5 cm du bord inférieur . Remettre immédiatement les tubes de réaction pour le bloc C de chaleur de 30 ° de sorte que plusieurs points dans le temps peuvent être prises à partir d&#39;un seul tube. Après avoir repéré, sécher les plaques de CCM en utilisant un sèche-cheveux. </li><li> Transférer les plaques de CCM à une chambre de verre contenant suffisamment de phosphate 0,375 M de potassium (pH 3,5) pour permettre aux bas de 0,5 cm de la plaque de CCM à être immergé dans la solution. </li><li> Couvrir la chambre, et développer jusqu&#39;à ce que la face de la phase liquide atteint la partie supérieure des plaques de CCM. Immédiate sécher les plaques à fond en utilisant un sèche-cheveux. </li><li> Exposer les plaques de CCM séchées à un écran de phosphore de stockage à température ambiante.Balayez l&#39;écran d&#39;un système de scanner d&#39;imagerie isotopique et de déterminer la quantité de substrat de l&#39;ATP radioactif et le produit ADP. </li><li> Pour calculer la quantité d&#39;ATP hydrolysé, multiplier la ATP% hydrolyse par la quantité d&#39;ATP présente dans le mélange réactionnel de départ à l&#39;aide de la formule suivante: pmol d&#39;ATP hydrolysé = 10 pmol d&#39;ATP à partir réaction x [ADP / ATP (+ ADP)] </li></ol>

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</ol>

Les auteurs déclarent qu’ils n’ont pas d’intérêts financiers concurrents.

Afin de s&#39;assurer que nucléosome remodelage et activités ATPase on observe dans des dosages dépendent de l&#39;activité catalytique des complexes de INO80, et non sur contaminant rénovation et / ou d&#39;enzymes ATPase, nous nucléosome régulièrement dosage remodelage et l&#39;activité ATPase de versions catalytiquement inactives de complexes INO80, purifié dans parallèle avec le type sauvage INO80 utilisant la même procédure. Une réaction témoin négatif dépourvu ATP doit également être effectué lors du dosage de l&#...

SNF2 complexes chromatine de la famille de remodelage comprennent une sous-unité ATPase central SNF2 comme 1,2. Certaines fonctions des ATPases SNF2 comme les enzymes de sous-unités simples, tandis que d&#39;autres fonctionnent comme la sous-unité catalytique de grands complexes multi-sous-unités. Élucider les mécanismes moléculaires par lesquels chacune des sous-unités de complexes de remodelage de la chromatine contribuent à leurs activités nécessite la capacité à effectuer des dosages biochimiques qui dissèquent le processus de remodelage. ATP-dépendante des nucléosomes remodelage par le complexe INO80 humain et d&#39;autres enzymes de remodelage de la chromatine peut être envisagé comme un processus en plusieurs étapes qui commence par la liaison du remodelage enzyme de nucléosomes, suivie de l&#39;activation de son ADN et / ou des nucléosomes dépendante ATPase, la translocation de l&#39;enzyme sur l&#39;ADN nucléosomique remodelage, et éventuel repositionnement des nucléosomes 1,2. La compréhension des détails moléculaires de l&#39;ATP-dépendante processus de remodelage de la chromatine récessite dissection de la réaction de remodelage en ses différentes étapes de définition et des contributions des sous-unités individuelles du complexe de remodelage de chromatine à chaque étape de la réaction. Ces analyses nécessitent la capacité d&#39;analyser le remodelage du nucléosome et autres activités utilisant des substrats moléculaires définies in vitro. Dans un protocole de JOVE précédente, nous avons décrit les procédures utilisées pour générer des complexes et Subcomplexes de remodelage INO80 avec des compositions de sous-unités définies 3. Ici, nous présentons trois dosages biochimiques qui permettent une analyse quantitative de la liaison, l&#39;ADN et nucléosome activé ATPase, et les activités de remodelage du nucléosome associés à ces complexes nucléosome.

<table><tbody><tr><td>Inhibiteur de protéase Cocktail</td><td>Sigma</td><td>P8340</td><td></td></tr><tr><td>10x tampon de réaction PCR&nbsp ;</td><td>Roche Applied Science&nbsp ;</td><td></td><td></td>11435094001</tr><tr><td>Roche Taq ADN polymérase</td><td>Roche Applied Science&nbsp ;</td><td></td><td></td>11435094001</tr><tr><td>NucAway Colonnes de centrifugation sans nucléase&nbsp ;</td><td>Ambion</td><td>Cat. # AM10070</td><td></td></tr><tr><td>ATP ultra-pur&nbsp ;</td><td>USB/Affymetrix</td><td>77241 25 UM</td><td></td></tr><tr><td>albumine sérique bovine&nbsp ;</td><td>Sigma</td><td>A9418&nbsp ;</td><td></td></tr><tr><td>40 % Acrylamide/Bis 37.5:1</td><td>Amresco</td><td>0254-500ML</td><td></td></tr><tr><td>ADN de spermatozoïdes de saumon soniqués&nbsp ;</td><td>GE Healthcare</td><td>27-4565-01</td><td></td></tr><tr><td>10 % persulfate d’ammonium (APS)</td><td>Thermo Scientific</td><td>17874</td><td></td></tr><tr><td>benzonase&nbsp ;</td><td>Novagen</td><td>Cat. N° 70664</td><td></td></tr><tr><td>dCTP, [&alpha ;-32P]- 6 000 Ci/mmol</td><td></td> Thermocycleur BLU013Z250UC <td></td>PCR <td>PerkinElmer</td></tr><tr><td>PTC 200</td><td>MJ Research</td><td>PTC 200</td><td></td></tr><tr><td>Unité d’électrophorèse verticale Hoefer</td><td></td><td>SE600X-15-1.5</td><td></td></tr><tr><td>tubes à microcentrifuger lubrifiés de 1,5 ml&nbsp ;</td>Écran de stockage au phosphore <td>Costar</td><td>3207</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp ;</td><td>Molecular Dynamics</td><td>63-0034-79</td><td></td></tr><tr><td>Papier filtre 3MM</td><td>Whatman&nbsp ;</td><td>28458-005</td><td>VWR</td></tr><tr><td>Typhoon PhosphorImager&nbsp ;</td><td>GE Healthcare</td><td>8600</td><td></td></tr><tr><td>Logiciel ImageQuant</td><td>GE Healthcare</td><td>ver2003.02</td><td></td></tr><tr><td>Plaques de verre TLC, PEI-Cellulose F</td><td>Millipore</td><td>5725-7</td><td></td></tr><tr><td>Immobilon-FL Membrane de transfert 7 x 8,4</td><td>Millipore</td><td>IPFL07810</td><td></td></tr><tr><td>Radiamètre à usage général avec fenêtre d’extrémité ou sonde en crêpe GM (Geiger-Mueller)</td><td>Biodex</td><td>Modèle 14C</td><td></td></tr></tbody></table>

les dosages biochimiques pour l&#39;analyse des activités de l&#39;atp-dépendant remodelage de la chromatine enzymes

Biochemical Assays for Analyzing Activities of ATP-dependent Chromatin Remodeling Enzymes

Les membres de la famille SNF2 des ATPases fonctionnent souvent comme des composants de complexes de remodelage de la chromatine multi-sous-unitaires qui régulent la dynamique des nucléosomes et l’accessibilité de l’ADN en catalysant le remodelage des nucléosomes dépendant de l’ATP. La dissection biochimique des contributions des sous-unités individuelles de ces complexes à la réaction de remodelage de la chromatine dépendante de l’ATP en plusieurs étapes nécessite l’utilisation de tests qui surveillent la production de produits de réaction et mesurent la formation d’intermédiaires de réaction. Ce protocole JOVE décrit des tests qui permettent de mesurer les activités biochimiques de complexes ou de sous-complexes de remodelage de la chromatine contenant diverses combinaisons de sous-unités. Le remodelage de la chromatine est mesuré à l’aide d’un test de glissement de nucléosome dépendant de l’ATP, qui surveille le mouvement d’un nucléosome sur une molécule d’ADN à l’aide d’une méthode basée sur un test de déplacement de mobilité électrophorétique (EMSA). L’activité de liaison des nucléosomes est mesurée en surveillant la formation de mononucléosomes liés à des complexes de remodelage à l’aide d’une méthode similaire basée sur l’EMSA, et l’activité de l’ATPase dépendante de l’ADN ou des nucléosomes est dosée à l’aide de la chromatographie sur couche mince (CCM) pour mesurer le taux de conversion de l’ATP en ADP et en phosphate en présence d’ADN ou de nucléosomes. À l’aide de ces tests, on peut examiner les fonctions des sous-unités d’un complexe de remodelage de la chromatine en comparant les activités du complexe complet à celles dépourvues d’une ou plusieurs sous-unités. Le complexe de remodelage de la chromatine humaine INO80 est utilisé à titre d’exemple ; Cependant, les méthodes décrites ici peuvent être adaptées à l’étude d’autres complexes de remodelage de la chromatine.

Les chiffres montrent des résultats représentatifs de tests biochimiques utilisés pour caractériser les activités de INO80, y compris nucléosome glissière (figure 1) et de liaison (Figure 2) des tests et des analyses d&#39;ADN ou de l&#39;ATPase nucléosome-dépendant (figure 3). L&#39;expérience a montré à la figure 1, on compare la capacité des complexes de INO80 intact purifié à travers FLAG-Ies2 ou FLAG-INO80E et de INO80 ...

Ici, nous décrivons des dosages biochimiques qui peuvent être utilisés pour caractériser les enzymes de remodelage de la chromatine dépendantes de l’ATP pour leurs capacités à 1) catalyser le glissement des nucléosomes dépendants de l’ATP, 2) s’engager avec les substrats des nucléosomes, et 3) hydrolyser l’ATP de manière dépendante des nucléosomes ou de l’ADN.

Les dosages biochimiques pour l&#39;analyse des activités de l&#39;ATP-dépendant remodelage de la chromatine enzymes

Members of the SNF2 family of ATPases often function as components of multi-subunit chromatin remodeling complexes that regulate nucleosome dynamics and ...

L'objectif de la procédure suivante est de mesurer les différentes activités biochimiques des complexes de remodelage de la chromatine dépendants d'une TP. Cela est réalisé en mesurant le déplacement, dépendant d'une TP, d'un nucléosome positionné d'une extrémité d'une molécule d'ADN vers une position plus centrale sur l'ADN, à l'aide d'un test de migration en gel ou EMSA (essai de modification de la mobilité électrophorétique). Une méthode similaire fondée sur l'EMSA peut être utilisée pour suivre la formation de mononucléosomes liés au complexe de remodelage, afin d'évaluer l'activité de liaison au nucléosome des complexes de remodelage de la chromatine.En outre, la chromatographie sur couche mince peut être utilisée pour mesurer l'activité des APA dans des complexes de remodelage de la chromatine dépendants de TP. En définitive, ces méthodes permettent de mesurer le remodelage de la chromatine dépendant de TP dans les complexes humains de O 80. Dans cette vidéo, nous démontrerons des tests biochimiques étudiant les complexes de remodelage de la chromatine de NO 80.Une méthode similaire peut également être appliquée à l'étude d'autres complexes de remodelage de la chromatine afin d'effectuer un dosage de remodelage des nucléosomes dépendant de l'ATP. Préparez tout d'abord les substrats nucléosomiques après avoir mis en place une réaction PCR de 100 microlitres, comme indiqué dans le tableau. Réalisez les réactions PCR dans un thermocycleur, puis faites passer les produits réactionnels deux fois à travers des colonnes filtrantes sans nuclease afin d'éliminer les nucléotides non incorporés.Ensuite, mélanger deux unités oléaires de fragments d'ADN marqués au P 32 6 0 1 avec six microgrammes de nucléosomes hilariaux dans 50 microlitres de tampon, puis incuber le mélange à 30 degrés Celsius pendant 30 minutes. Ensuite, diluer progressivement le mélange à 0,8 molaire, 0,6 molaire et 0,4 molaire en chlorure de sodium par addition respectivement de 12,5 microlitres, 20,8 microlitres et 41,6 microlitres de solution tampon tris HCl supplémentée en E-D-T-A-P-M-S-F et DTT, en incubant 30 minutes à 30 degrés Celsius après chaque addition, après la dernière incubation ajouter alors 125 puis 250 microlitres du tampon tris hydrochlorure. Poursuivre par deux autres dilutions supplémentaires de 30 minutes à 30 degrés Celsius, en complétant davantage le tampon avec du P 40 non ionique, du glycérol et de la PSA, pour atteindre respectivement des concentrations de 0,2 molaire et 0,1 molaire en chlorure de sodium.Ensuite, conserver le substrat de mononucléosome à quatre degrés Celsius pendant jusqu'à trois mois avant de préparer les dosages sur gels natifs de polyacrylamide. Ensuite, pour chaque réaction à effectuer, combiner environ 20 nanomolaires en OH 80 avec la quantité appropriée de tampon EB 100 suffisante pour obtenir un volume de 4,75 microlitres dans un tube microcentrifuge de 1,5 millilitre silanisé prérefroidi. Recongeler immédiatement toutes les fractions restantes contenant NO 80, en poudre sèche sur de la glace sèche.Ensuite, distribuez 5,25 µL de cocktail maître fraîchement préparé dans chaque tube de réaction, en mélangeant soigneusement par aspiration et expulsion répétées à l’aide d’une pipette. Incubez ensuite les réactions dans un bloc chauffant à 30 °C. À la fin de l'incubation, ajoutez 1,5 µL de mélange d’élimination fraîchement préparé dans chaque tube pour arrêter les réactions, puis mélangez chaque tube de réaction.Centrifuger brièvement puis incuber à 30 degrés Celsius pendant 30 minutes supplémentaires. Pendant ce temps, pré-électrophoréser le gel natif de polyacrylamide dans un appareil vertical d'électrophorèse à 100 volts pendant 30 minutes à quatre degrés Celsius, en utilisant 0,5 XTBE comme tampon de migration avec une barrette aimantée dans la chambre inférieure pour assurer une circulation constante du tampon. À la fin de l'incubation, remplacer le mélange par un nouveau mélange, puis ajouter 2,5 microlitres de colorant de charge à chaque réaction. Après une brève centrifugation, utiliser des pointes de charge pour déposer les échantillons sur le gel.Faites migrer le gel à 200 volts pendant 4,5 heures à quatre degrés Celsius avec une circulation du tampon. Ensuite, transférez le gel sur une pile de deux feuilles de papier filtre et placez délicatement les filtres avec le gel par-dessus à l’aide d’un film plastique transparent pour détecter le signal. Exposez le gel à un écran de détection phosphorée à quatre degrés Celsius pendant la durée souhaitée, puis numérisez l’écran à l’aide d’un système de scanner d’imagerie isotopique et analysez les données en utilisant le logiciel approprié pour réaliser les tests APA dépendants de l’ADN et des nucléosomes.Commencez par combiner de 10 à 50 nanomolaires de sous-complexes purifiés par immunoprécipitation avec une quantité suffisante de tampon eeb 100 pour obtenir un volume de 2,2 microlitres dans un tube micro-centrifuge de 1,5 millilitre préalablement refroidi et lubrifié, pour chaque réaction, puis recongelez immédiatement les fractions contenant NO 80 dans de la glace sèche pulvérisée. Ensuite, mélangez délicatement 2,8 microlitres de sous-cocktail fraîchement préparé contenant des nucléosomes d'ADN ou aucun des deux aux tubes de réaction contenant l'enzyme, à l’aide de pipetage ascendant et descendant, et transférez les tubes dans un bloc chauffant à 30 degrés Celsius. Ensuite, utilisez un crayon pour tracer une ligne très légère à au moins 1,5 centimètre du bord inférieur d’un polyéthylène de 20 par 10.J'entends par là une plaque de chromatographie sur couche mince ou plaque CCM. Déposez ensuite 0,5 microlitre de chaque mélange réactionnel sur la ligne aux temps de 5, 15, 30 et 60 minutes après incubation, en replaçant immédiatement chaque échantillon dans le bloc chauffant, afin de pouvoir prélever plusieurs points temporels à partir d'un seul tube. Après avoir appliqué le dernier échantillon, utilisez un sèche-cheveux pour sécher la plaque, puis transférez-la dans une chambre en verre contenant suffisamment.0,375 molaire de phosphate de potassium afin que les 0,5 centimètres inférieurs de la plaque de CCM soient immergés dans la solution. Couvrez la chambre et laissez migrer la phase mobile jusqu'à ce que le front du liquide atteigne le haut de la plaque de CCM ; à ce moment-là, la plaque doit être immédiatement séchée à l'air et exposée à un écran phosphorescent de stockage à température ambiante. Enfin, analysez l'écran à l'aide d'un système de détection d'isotopes par imagerie pour déterminer la quantité de substrat radioactif a TP et de produit a DP.Ce premier expérience démontre que le complexe purifié par l'intermédiaire du drapeau IES deux drapeaux, N-O-A-T-E et drapeau NO 80 delta N, présente des activités de glissement des nucléosomes similaires, indiquant que l'extrémité N-terminale de NO 80 et/ou ses sous-unités associées sont dispensables pour le remodelage des nucléosomes par le complexe NO 80. En revanche, le complexe purifié par le drapeau NO 80 delta n delta HSA est inactif dans ce test, ce qui indique que l'activité de remodelage dépend du domaine HSA des APAs de NO 80 et/ou de ses sous-unités associées. En utilisant une modification de la procédure du test de glissement des nucléosomes, on peut mesurer l'activité de liaison aux nucléosomes des complexes de remodelage de la chromatine.Dans cette expérience, l'incubation des nucléosomes avec des quantités croissantes de complexes NO 80 intacts, purifiés via la sous-unité NO 80 E, a entraîné une disparition dépendante de la dose de la bande correspondant aux mononucléosomes libres et l'apparition d'une nouvelle espèce déplacée qui migrait près du haut du gel. En revanche, lorsque les nucléosomes ont été incubés avec des complexes plus petits, purifiés via NO 80 delta N et dépourvus d'un sous-ensemble de sous-unités NO 80, l'espèce déplacée a migré plus rapidement, suggérant que la mobilité relative de la bande surdéplacée dépend de la taille des complexes testés. Dans cette dernière expérience, les résultats d'un test comparant les activités APA activées par l'ADN et les nucléosomes de deux sous-complexes NO 80 différents sont présentés.Les taches migrantes plus lentement correspondent à l'alpha 32 P marqué de départ, l'a TP, tandis que les espèces migrantes plus rapidement sont les produits de la réaction A DP, les zones indiquant la direction de la migration du solvant. Lors de l'utilisation de ces procédures, il est important de se rappeler d'effectuer des dosages variant par durée et contenant différentes concentrations d'enzyme. Cela garantira que les mesures sont prises lorsque les courbes de réponse produit en fonction du temps et de la dose sont linéaires.Après avoir visionné cette vidéo, vous devriez bien comprendre comment analyser les activités de liaison aux nucléosomes et de glissement des nucléosomes par des complexes de remodelage de la chromatine purifiés. N'oubliez pas que le travail avec des matières radioactives peut être dangereux. Il convient de prendre des précautions telles que porter une blouse de laboratoire et des protections oculaires, surveiller la contamination radioactive et éliminer correctement les déchets radioactifs.

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Mesure<em&gt; In vitro</em&gt; Activité ATPase pour Enzymatic Caractérisation

Sequential extraction du sel de protéines chromatiniennes lié est un outil utile pour déterminer les propriétés de liaison de complexes protéiques importantes. Cette méthode peut être utilisée pour évaluer le rôle des sous-unités individuelles ou des domaines de l’affinité globale d’une protéine complexe en bloc de la chromatine.

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Ce protocole décrit l’utilisation de combinatoire de ChIP-seq, 4sU-seq, total RNA-seq et ribosomes profilage de lignées cellulaires et les cellules primaires. Il permet aux changements suivi de transcription-facteur contraignant, novo de transcription, l’ARN traitement, chiffre d’affaires et traduction au fil du temps et d’afficher le cours général des événements dans les cellules activées ou évolues rapidement.

Analyse en temps réel du facteur de Transcription Binding, Transcription, traduction et chiffre d’affaires pour afficher des événements mondiaux au cours de l’Activation cellulaire

Les inhibiteurs de l’hétone acétyltransférases (HATs, également connu sous le nom d’acétyltransférases de lysine), tels que CBP/p300, sont des traitements potentiels pour traiter le cancer. Cependant, des méthodes rigoureuses pour valider ces inhibiteurs sont nécessaires. Trois méthodes in vitro pour la validation incluent des essais de HAT avec des acétyltransférases recombinantes, l’immunoblotting pour l’acétylation d’histone dans la culture cellulaire, et ChIP-qPCR.

Tests de validation des inhibiteurs de l’histone d’acétyltransférase

Ce protocole se concentre sur la préparation de la chromatine à partir de tissus congelés et convient à l’immunoprécipitation de la chromatine par réticulation (X-ChIP) suivie d’une analyse PCR quantitative (X-ChIP-qPCR) ou d’approches de séquençage de nouvelle génération (X-ChIP-seq).

Extraction de chromatine à partir de tissu hépatique chimérique congelé pour l’analyse de l’immunoprécipitation de la chromatine

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Spectroscopie CD pour étudier les interactions ADN-protéine

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In vitro Caractérisation des chaperons de histones à l’aide d’essais analytiques, de rabattement et de chaperoning

Le rideau d’ADN, une technique d’imagerie à haut débit d’une seule molécule, fournit une plate-forme pour la visualisation en temps réel de diverses interactions protéine-ADN. Le présent protocole utilise la technique du rideau d’ADN pour étudier le rôle biologique et le mécanisme moléculaire d’Abo1, une ATPase AAA+ contenant du bromodomaine de Schizosaccharomyces pombe .

Déchiffrer le mécanisme moléculaire de l’assemblage des histones par la technique du rideau d’ADN

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