Name: Un modèle murin immunocompétent pour la thérapie thermique interstitielle au laser du glioblastome (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-11-15T14:10:00.000+00:00
Duration: 9 min 10 s
Description: Découvrez la thérapie thermique interstitielle au laser pour le glioblastome inopérable à l'aide d'un modèle murin immunocompétent optimisé. Cette méthode permet d'évaluer les réponses tissulaires et cellulaires au traitement par la chaleur.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

<ol><li>Canadian Cancer Society. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Cancer+Statistics+2023%22">Cancer Statistics 2023</a>. , Canadian Cancer Statistics Advisory Committee in collaboration with the Canadian Cancer Society, Statistics Canada and the Public Health Agency of Canada. Toronto, ON. http://cancer.ca/Canadian-Cancer-Statistics-2023-EN (2023).</li>
<li>Glioblastoma Research Organization. Glioblastoma Research Organization. , 
 <a target="_blank" href="https://www.gbmresearch.org">https://www.gbmresearch.org</a> (2024).</li>
<li>Carpentier, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser+thermal+therapy%3A+Real-time+MRI-guided+and+computer-controlled+procedures+for+metastatic+brain+tumors%5BTitle%5D)+AND+%22Lasers+Surg+Med%22%5BJournal%5D)">Laser thermal therapy: Real-time MRI-guided and computer-controlled procedures for metastatic brain tumors.</a> Lasers Surg Med. 43 (10), 943-950 (2011).</li>
<li>Haddad, A. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+models+of+glioblastoma+for+the+evaluation+of+novel+therapeutic+strategies%5BTitle%5D)+AND+%22Neurooncol+Adv%22%5BJournal%5D)">Mouse models of glioblastoma for the evaluation of novel therapeutic strategies.</a> Neurooncol Adv. 3 (1), vdab100(2021).</li>
<li>Chokshi, C. R., Savage, N., Venugopal, C., Singh, S. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+patient-derived+xenograft+model+of+glioblastoma%5BTitle%5D)+AND+%22STAR+Protoc%22%5BJournal%5D)">A patient-derived xenograft model of glioblastoma.</a> STAR Protoc. 1 (3), 100179(2020).</li>
<li>Alcaniz, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clinically+relevant+glioblastoma+patient-derived+xenograft+models+to+guide+drug+development+and+identify+molecular+signatures%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Oncol%22%5BJournal%5D)">Clinically relevant glioblastoma patient-derived xenograft models to guide drug development and identify molecular signatures.</a> Front Oncol. 13, 1129627(2023).</li>
<li>Muir, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser+interstitial+thermal+therapy+for+newly+diagnosed+glioblastoma%5BTitle%5D)+AND+%22Lasers+Med+Sci%22%5BJournal%5D)">Laser interstitial thermal therapy for newly diagnosed glioblastoma.</a> Lasers Med Sci. 37 (3), 1811-1820 (2022).</li>
<li>Muir, M., Traylor, J. I., Gadot, R., Patel, R., Prabhu, S. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Repeat+laser+interstitial+thermal+therapy+for+recurrent+primary+and+metastatic+intracranial+tumors%5BTitle%5D)+AND+%22Surg+Neurol+Int%22%5BJournal%5D)">Repeat laser interstitial thermal therapy for recurrent primary and metastatic intracranial tumors.</a> Surg Neurol Int. 13, 311(2022).</li>
<li>De Groot, J. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficacy+of+laser+interstitial+thermal+therapy+%28LITT%29+for+newly+diagnosed+and+recurrent+IDH+wild-type+glioblastoma%5BTitle%5D)+AND+%22Neurooncol+Adv%22%5BJournal%5D)">Efficacy of laser interstitial thermal therapy (LITT) for newly diagnosed and recurrent IDH wild-type glioblastoma.</a> Neurooncol Adv. 4 (1), vdac040(2022).</li>
<li>Holste, K. G., Orringer, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser+interstitial+thermal+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Neurooncol+Adv%22%5BJournal%5D)">Laser interstitial thermal therapy.</a> Neurooncol Adv. 2 (1), vdz035(2020).</li>
<li>Leuthardt, E. C., Voigt, J., Kim, A. H., Sylvester, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+single-center+cost+analysis+of+treating+primary+and+metastatic+brain+cancers+with+either+brain+laser+interstitial+thermal+therapy+%28LITT%29+or+craniotomy%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmacoecon+Open%22%5BJournal%5D)">A single-center cost analysis of treating primary and metastatic brain cancers with either brain laser interstitial thermal therapy (LITT) or craniotomy.</a> Pharmacoecon Open. 1 (1), 53-63 (2017).</li>
<li>Bastos, D. C. D. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Predictors+of+local+control+of+brain+metastasis+treated+with+laser+interstitial+thermal+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosurgery%22%5BJournal%5D)">Predictors of local control of brain metastasis treated with laser interstitial thermal therapy.</a> Neurosurgery. 87 (1), 112-122 (2020).</li>
<li>Darbinyan, A., Leelatian, N., Fomchenko, E. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Histological+changes+associated+with+laser+interstitial+thermal+therapy+for+radiation+necrosis%3A+illustrative+cases%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosurg+Case+Lessons%22%5BJournal%5D)">Histological changes associated with laser interstitial thermal therapy for radiation necrosis: illustrative cases.</a> J Neurosurg Case Lessons. 4 (1), CASE21373(2022).</li>
<li>Grant, G. A., Porter, B. E., Li, D., Barros Guinle, M. I., Kaur, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Approach%2C+complications%2C+and+outcomes+for+37+consecutive+pediatric+patients+undergoing+laser+ablation+for+medically+refractory+epilepsy+at+Stanford+Children%27s+Health%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosurg+Pediatr%22%5BJournal%5D)">Approach, complications, and outcomes for 37 consecutive pediatric patients undergoing laser ablation for medically refractory epilepsy at Stanford Children's Health.</a> J Neurosurg Pediatr. 33 (1), 1-11 (2023).</li>
<li>Ogasawara, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser+interstitial+thermal+therapy+for+cerebral+cavernous+malformations%3A+A+systematic+review+of+indications%2C+safety%2C+and+outcomes%5BTitle%5D)+AND+%22World+Neurosurg%22%5BJournal%5D)">Laser interstitial thermal therapy for cerebral cavernous malformations: A systematic review of indications, safety, and outcomes.</a> World Neurosurg. 166, 279-287.e1 (2022).</li>
<li>Satzer, D., Mahavadi, A., Lacy, M., Grant, J. E., Warnke, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interstitial+laser+anterior+capsulotomy+for+obsessive-compulsive+disorder%3A+lesion+size+and+tractography+correlate+with+outcome%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurol+Neurosurg+Psychiatry%22%5BJournal%5D)">Interstitial laser anterior capsulotomy for obsessive-compulsive disorder: lesion size and tractography correlate with outcome.</a> J Neurol Neurosurg Psychiatry. 93 (3), 317-323 (2022).</li>
<li>Salehi, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Therapeutic+enhancement+of+blood-brain+and+blood-tumor+barriers+permeability+by+laser+interstitial+thermal+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Neurooncol+Adv%22%5BJournal%5D)">Therapeutic enhancement of blood-brain and blood-tumor barriers permeability by laser interstitial thermal therapy.</a> Neurooncol Adv. 2 (1), vdaa071(2020).</li>
<li>Navarro, K. L., Huss, M., Smith, J. C., Sharp, P., Marx, J. O., Pacharinsak, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+anesthesia%3A+The+art+and+science%5BTitle%5D)+AND+%22ILAR+J%22%5BJournal%5D)">Mouse anesthesia: The art and science.</a> ILAR J. 62 (1-2), 238-273 (2021).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>Absorbion Spears</td><td>FST</td><td>18105-01</td><td>Éponges hémostatiques.</td></tr><tr><td>Pince à tissus Adson</td><td>FST</td><td>11006-12</td><td></td></tr><tr><td>C57BL/6 souris</td><td>Jackson Laboratories</td><td>Souche #000664</td><td>mâle et femelle de 6 à 12 semaines</td></tr><tr><td>Applicateurs à pointe de coton (6")</td><td>Electron Microscopy Sciences</td><td>72308</td><td></td></tr><tr><td>CT2A gliome cell line</td><td></td><td></td><td>Généreusement donné par le Dr Peter Fecci, Duke University.</td></tr><tr><td>Extrait de membrane basale à facteur de croissance réduit Cultrex, PathClear</td><td>Biotechne, R& D systems</td><td>3433-010-01</td><td></td></tr><tr><td>DMEM/F-12, HEPES</td><td>Gibco, ThermoFisher Scientific</td><td>11330032</td><td></td></tr><tr><td>Lames à deux chambres&nbsp ;</td><td>Tubes BIO-RAD</td><td>1450003</td><td></td></tr><tr><td>Eppendorf Safe-Lock 2,0 mL</td><td>Eppendorf</td><td>22363352</td><td></td></tr><tr><td>Alcool éthylique anhydre</td><td>Greenfield Global</td><td>P016EAAN</td><td>Diluer à 70 % avec du ddH2O</td></tr><tr><td>Sérum de veau fœtal, qualifié, Canada</td><td>Gibco, ThermoFisher Scientific</td><td>12483020</td><td></td></tr><tr><td>Glad Press-n-Seal</td><td>Amazon.ca</td><td></td><td></td>12587704417</tr><tr><td>Perceuse à grande vitesse</td><td>Kopf Instruments</td><td>Modèle 1474</td><td></td></tr><tr><td>K & J Thermocouple téméraire</td><td>Omega</td><td>HH509R</td><td></td></tr><tr><td>Metacam (meloxicam)</td><td>WDDC</td><td>114424</td><td></td></tr><tr><td>Pousse-seringue de micro-injection</td><td>WPI</td><td>UMP3T-1</td><td></td></tr><tr><td>Seringue de microlitre (série 700)</td><td>Hamilton</td><td>87908</td><td>Des aiguilles personnalisées sont disponibles. Un biseau d’aiguille raide aide à une livraison précise, et une longueur d’aiguille plus courte aide à la stabilité.</td></tr><tr><td>Tourne-aiguille/porte-aiguille</td><td>FST</td><td>12500-12</td><td>Une pointe fine est la plus appropriée en raison de l’espace de travail confiné, mais de nombreux styles conviennent en fonction de la préférence de poignée.</td></tr><tr><td>Opixcare Plus pommade ophtalmique</td><td>WDDC</td><td>135941</td><td></td></tr><tr><td>Phosphate Buffered Saline (10x)</td><td>Fisher bioreagents</td><td>BP399-4</td><td>Diluer à 1x avec ddH2O</td></tr><tr><td>Povidone-iode</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>3955-16</td><td>Aliquat dans des tubes plus petits pour une utilisation avec des applicateurs à embout en coton.</td></tr><tr><td>Saline (normale)</td>Scalpel <td>126588</td><td></td> <td>WDDC</td></tr><tr><td>, à usage unique (lame #15)</td><td>Ciseaux Feather</td><td>Feather NO15</td><td></td></tr><tr><td>, chirurgicaux fins</td><td>FST</td><td>91460-11</td><td>Les ciseaux d’étudiant fins, Iris ou Bonn conviennent tous.</td></tr><tr><td>Cadre stéréotaxique</td><td>Kopf Instruments</td><td>Modèle 940</td><td>Avec console d’affichage numérique et souris cône de nez et barres d’oreille.</td></tr><tr><td>Porte-seringue stéréotaxique</td><td>Kopf Instruments</td><td>Modèle 1772-F</td><td>Si vous n’utilisez pas de pompe d’injection.</td></tr><tr><td>Sutures (monofilament 5-0)</td><td>Ethicon</td><td>MCP463G</td><td>Monofilament violet monocryle avec embout coupant inversé</td></tr><tr><td>Seringue, 28 G&nbsp ; (0,5 ml)&nbsp ;</td><td>BD</td><td>BD 329461</td><td>BD Lo-Dose U-100 Seringues à insuline</td></tr><tr><td>TC20 Compteur de cellules automatisé</td><td>BIO-RAD</td><td>1450102</td><td></td></tr><tr><td>Sonde thermocouple, diamètre fin (Type K)</td><td>Omega</td><td>TJM-CA316-IM025G-150</td><td></td></tr><tr><td>Trypsine-EDTA (0,25 %), rouge de phénol</td><td>Gibco, ThermoFisher Scientific</td><td>25200072</td><td></td></tr><tr><td>Vetbond de 3M, colle pour tissus vétérinaires&nbsp ;</td><td>WDDC</td><td>126125</td><td></td></tr><tr><td>Wahl Peanut Clippers</td><td>WDDC/Wahl</td><td>100963</td><td>Également disponible directement auprès du fabricant.</td></tr><tr><td>Coussin chauffant</td><td>Bensen Medical</td><td>70308/121873</td><td>Tout article similaire peut être utilisé.</td></tr><tr><td>Webcol Préparation à l’alcool</td><td>Microscopie électronique Sciences</td><td>71005-20</td><td>Lingette de préparation à l’alcool, 2 plis, taille moyenne.</td></tr></tbody></table>

un modèle murin immunocompétent pour la thérapie thermique interstitielle au laser du glioblastome

An Immunocompetent Murine Model for Laser Interstitial Thermal Therapy of Glioblastoma

L’implantation réussie de la tumeur CT2A et les traitements LITT peuvent être caractérisés à l’aide de l’IRM pondérée T2, comme le montrent les figures 4, 5 et 6. Des images IRM ont été obtenues à l’aide d’un aimant supraconducteur sans cryogène 7T avec un alésage de 17 cm et une bobine de tête de souris en quadrature en utilisant les paramètres de séquence décrits dans le protocole ci-dessus. Une adhésion minutieuse à cette méthode devrait entraîner des taux de prise approchant les 100 %, une localisation tumorale cohérente et une formation tumorale à peu près sphérique, comme le montre la figure 4. Ces caractéristiques constituent une base optimale pour les traitements LITT ultérieurs et d’éventuelles analyses ultérieures. De même, comme le montre la figure 5, les ablations LITT doivent également être cohérentes à la fois en taille et en emplacement. Le noyau central du tissu ablatif sera composé d’une nécrose coagulative et liquéfactive et facilement visualisable comme une hypo-intensité (c’est-à-dire noire) sur l’IRM pondérée en T2. Dans les jours qui suivent immédiatement le traitement par la litt, il est également typique, en fonction du traitement effectué par la litt, de voir une zone hyper-intense (c’est-à-dire blanche) dans et autour de la lésion correspondant à un œdème périopératoire. La figure 6 montre un mauvais résultat et met en évidence certains des pièges potentiels lors de l’exécution de ce protocole.
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67381/67381fig04.jpg"> 
Figure 4 : Images IRM coronales pondérées en T2 de la formation tumorale CT2A idéale. Images représentatives de la formation tumorale chez trois souris C57BL/6 (A, B, C) 12 jours après l’implantation. Les flèches blanches indiquent la bordure de la tumeur. Notez l’emplacement cohérent de la tumeur et la formation grossièrement sphérique. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67381/67381fig04large.jpg" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67381/67381fig05.jpg"> 
Figure 5 : Images IRM coronaires pondérées en T2 de l’ablation LITT idéale (1 jour après la LITT). Images représentatives de l’ablation tumorale LITT chez trois souris C57BL/6 (A, B, C) à 13 jours après l’implantation. Notez la taille et l’emplacement constants du noyau de la lésion nécrotique. La réalisation d’IRM pré-LITT et d’ablations LITT un peu plus tôt fournirait un meilleur équilibre entre la taille optimale de la tumeur pour le ciblage laser et la capacité d’obtenir des points d’évaluation post-traitement ultérieurs. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67381/67381fig05large.jpg" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.</a>
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67381/67381fig06.jpg"> 
Figure 6 : Images IRM coronales pondérées en T2 de traitements LITT pré-optimisés. Images de trois souris C57BL/6 (A, B, C) traitées avec des paramètres laser identiques et des cibles stéréotaxiques avant les optimisations de protocole, comme exemple de résultat non idéal. Les flèches blanches indiquent la bordure de la tumeur. Les zones bordées montrent la région de l’œdème. Une variabilité significative est observée, notamment une croissance tumorale moins uniforme et un mauvais ciblage de l’ablation au laser, entraînant des lésions tissulaires incohérentes. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67381/67381fig06large.jpg" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.</a>

Un modèle murin immunocompétent pour la thérapie thermique interstitielle au laser du glioblastome

Glioblastoma (GB), the most aggressive form of primary brain cancer, accounts for approximately half of all high-grade primary brain tumors in adults and ...

an-immunocompetent-murine-model-for-laser-interstitial-thermal

Research

Recherche

JoVE Journal

Cancer Research

Recherche sur le cancer

L'implantation intracrânienne d'GL261 cellules en souris C57BL / 6 produit gliomes malins qui récapitulent plusieurs des caractéristiques de glioblastome humain. Nous avons utilisé des cellules exprimant de façon stable GL261 luciférase pour nous permettre...

Implantation intracrânienne avec 3D ultérieures In Vivo Bioluminescent imagerie des gliomes murin

Nous décrivons une méthode intégrée pour la précision, l'implantation stéréotaxique de cellules humaines de glioblastome multiforme dans le cerveau des souris nude et de série...

Implantation stéréotaxique intracrânienne et<em&gt; In vivo</em&gt; Imagerie bioluminescente de xénogreffes tumorales dans un système de modèle de souris de glioblastome multiforme

Commencez par un modèle murin de glioblastome, une tumeur cérébrale invasive.À la périphérie de la tumeur, la barrière hémato-encéphalique (BHE) reste intacte, les cellules endothéliales formant des jonctions serrées qui régulent l’entrée moléculaire.La souris est équipée d’une fibre optique montée sur la tête pour fournir une lumière laser.Administrez un laser infrarouge de faible intensité, qui pénètre la peau et le crâne pour atteindre le cerveau.Le laser excite l’oxygène moléculaire dans...

Perturbation de la barrière hémato-encéphalique induite par laser pour l’administration de liposomes dans un modèle murin de glioblastome

Source : Clark, A.J., et al. Imagerie par bioluminescence d’un modèle animal immunocompétent pour le glioblastome. J. Vis. Exp. (2016)Cette vidéo fait la démonstration de l’imagerie par bioluminescence pour suivre la progression du glioblastome dans un modèle murin immunocompétent, en utilisant des cellules tumorales exprimant la luciférase et la luciférine pour quantifier la croissance tumorale de manière non invasive.

Imagerie par bioluminescence d’un modèle murin immunocompétent pour le glioblastome

Nous avons établi un modèle de glioblastome orthotopique corticale chez la souris pour intravitale microscopie à deux photons qui récapitule les contraintes biophysiques normalement en jeu au cours de la croissance de la tumeur. Une fenêtre en verre chronique remplaçant le crâne au-dessus de la tumeur permet le suivi de la progression de la tumeur au cours du temps par microscopie à deux photons.

Un modèle de souris orthotopique glioblastome maintien contraintes physiques et parenchyme cérébral Convient pour intravitale deux microscopie biphotonique

Les cellules de gliome GL261 fournissent un modèle animal immunocompétent utile du glioblastome. Les objectifs de ce protocole sont de démontrer des techniques appropriées pour surveiller la croissance tumorale intracrânienne à l’aide de l’imagerie de bioluminescence in vivo, et de vérifier l’utilité des cellules GL261 modifiées par la luciférase pour l’étude de l’immunologie tumorale et des approches immunothérapeutiques pour le traitement du glioblastome.

Bioluminescence imagerie d&#39;un modèle animal pour immunocompétentes glioblastome

La microdissection laser (LMD) est une technique sensible et hautement reproductible qui peut être utilisée pour découvrir des voies qui médité glioma hétérogénéité et invasion. Ici, nous décrivons un protocole optimisé pour isoler les zones discrètes du tissu de gliome utilisant le LMD laser suivi de l’analyse transcriptomique.

Microdissection laser de sous-régions de Glioma pour la caractérisation spatiale et moléculaire de l’hétérogénéité intratumorale, des oncostreams et de l’invasion

Ici, nous décrivons un modèle murin orthotopique préclinique pour le GBM, établi par injection intracrânienne de cellules dérivées de tumeurs modèles de souris génétiquement modifiées. Ce modèle présente les caractéristiques de la maladie du GBM humain. Pour les études translationnelles, la tumeur cérébrale de souris est suivie par IRM in vivo et histopathologie.

Modèles orthotopiques translationnels de glioblastome multiforme

Ce protocole présente les techniques et la méthodologie nécessaires à la thérapie hyperthermique ciblée dans des modèles de tumeurs solides. L’approche exploite la conversion photothermique de la lumière proche infrarouge par des nanotiges d’or injectées intratumorale pour induire un réchauffement localisé dans le microenvironnement tumoral.

Induction d’une légère hyperthermie ciblée dans des modèles de tumeurs murines par conversion photothermique de la lumière proche infrarouge par des nanotiges d’or intratumorales

L’objectif de ce protocole est de fournir aux chercheurs une technique hautement reproductible pour les implantations intracrâniennes.

Implantation intracrânienne stéréotactique de lignées cellulaires de xénogreffes dérivées d’un patient chez des souris

Découvrez la thérapie thermique interstitielle au laser pour le glioblastome inopérable à l'aide d'un modèle murin immunocompétent optimisé. Cette méthode permet d'évaluer les réponses tissulaires et cellulaires au traitement par la chaleur.

Un modèle murin immunocompétent pour la thérapie thermique interstitielle au laser du glioblastome

Explorer plus de vidéos