Name: Immunoprécipitation ADN méthylé (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-01-02T00:00:00.000+00:00
Duration: 21 min 24 s
Description: Apprenez l'immunoprécipitation de l'ADN méthylé (MeDIP) pour isoler spécifiquement l'ADN méthylé de manière non biaisée. Cette technique épigénétique permet d'étudier le méthylome dans le développement normal et les maladies comme le cancer.

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Nous tenons à remercier les membres de la Brown et laboratoires Lam pour leur participation à la critique de cette vidéo et de l&#39;article. Ce travail a été soutenu par des fonds des Instituts canadiens de recherche en santé et de la Fondation Michael Smith pour la recherche en santé.

EXTRACTION D&#39;ADN et préparation des échantillons L&#39;ADN d&#39;une variété de différents échantillons (cellules en culture, frais congelé ainsi que des tissus de paraffine fixés au formol intégrés) peut être utilisé pour MeDIP. Il est important d&#39;utiliser l&#39;ADN hautement purifié, sans protéines associées telles que les histones. Il est également important de retirer l&#39;ARN autant que possible de l&#39;échantillon, car il peut interférer avec une quantification ADN et liaison à l&#39;anticorps. La quantité d&#39;ADN utilisée pour MeDIP peut varier de 200 ng à 1 pg en fonction de la quantité d&#39;ADN disponibles. Pour démontrer ce protocole, 1 pg d&#39;ADN sera utilisé. Le protocole suivant permettra de haute qualité d&#39;ADN double brin à partir des cellules cultivées. D&#39;autres protocoles devraient être employées pour l&#39;extraction de l&#39;ADN d&#39;autres types d&#39;échantillons. <ol><li> Ajouter 400 ul de tampon de digestion d&#39;un culot cellulaire dans un tube de 1,7 ml Eppendorf. </li><li> Ajouter 100 ug de la protéinase K dans le tube et incuber une nuit à 50 ° C. </li><li> Ajouter 500 ul de phénol pH 7 et mélanger délicatement mais soigneusement en renversant. </li><li> Centrifuger à 13 000 g pendant 10 min à température ambiante. </li><li> Retirer aqueuse (en haut) fraction dans un nouveau tube. </li><li> Répétez les étapes 3 à 5 fois. </li><li> Ajouter 500 ul 01h01 pH phénol / chloroforme 7 et mélanger délicatement mais soigneusement en renversant. </li><li> Centrifuger à 13 000 g pendant 10 min à température ambiante. </li><li> Retirer aqueuse (en haut) fraction dans un nouveau tube. </li><li> Ajouter 40 ug de RNase A et incuber 1 h à 37 ° C. </li><li> Ajouter 500 ul de phénol pH 7 et mélanger délicatement mais soigneusement en renversant. </li><li> Centrifuger à 13 000 g pendant 10 min à température ambiante. </li><li> Retirer aqueuse (en haut) fraction dans un nouveau tube. </li><li> Répétez les étapes 11 à 13 fois. </li><li> Ajouter 500 ul 01h01 pH phénol / chloroforme 7 et mélanger délicatement mais soigneusement en renversant. </li><li> Centrifuger à 13 000 g pendant 10 min à température ambiante. </li><li> Retirer aqueuse (en haut) fraction dans un nouveau tube. </li><li> Ajouter le volume 1/10ème acétate de sodium 3 M (40 pi) et bien mélanger. </li><li> Ajouter 2 volumes (900 pi) d&#39;éthanol à 100%, bien mélanger, et placer à -20 ° C pendant 20 min. </li><li> Centrifuger à 13 000 g pendant 20 min à 4 ° C. </li><li> Enlever l&#39;éthanol, le spin d&#39;impulsion, et éliminer l&#39;éthanol résiduel. </li><li> Ajouter 500 ul d&#39;éthanol froid à 70% pour se laver. Centrifuger à 13 000 g pendant 20 min à 4 ° C. </li><li> Enlever l&#39;éthanol à 70%, le spin d&#39;impulsion, et éliminer l&#39;éthanol résiduel par pipetage. </li><li> Sécher à l&#39;air le culot avec le bouchon ouvert pour 10 min à température ambiante pour enlever toute trace d&#39;éthanol résiduelle. </li><li> Resuspendre l&#39;ADN dans 50 ul de dH2O stérilisés nuit à 4 ° C. </li><li> Quantifier l&#39;ADN à l&#39;aide d&#39;un spectrophotomètre NanoDrop. Un A 260: Un ratio de 1,8 280 est idéal. </li><li> Déterminer la qualité de l&#39;ADN et gamme de taille sur un gel d&#39;agarose avec 100 pb échelle. Aussi peu que 10 ng d&#39;ADN génomique peut être exécuté sur un gel d&#39;agarose 1,7% suivie d&#39;une coloration à l&#39;aide d&#39;un colorant qui est très sensible à de petites quantités d&#39;ADN tels que SYBR Gold. </li><li> Dans un tube siliconé par échantillon, préparer 1 pg d&#39;ADN dans un volume total de 50 pi avec le reste du volume faite avec stérilisés dH 2 O. </li></ol> L&#39;ADN SONICATION Sonication de l&#39;ADN et le protocole MeDIP doit être effectuée dans des tubes siliconzied pour empêcher la liaison non spécifique des protéines à parois du tube. Fois sonication optimale pour les échantillons d&#39;ADN sont basées sur le degré de fragmentation échantillon d&#39;ADN tel que déterminé par électrophorèse sur gel (étape 27). Par exemple, l&#39;ADN extrait de cellules cultivées devraient être de très haut poids moléculaire, et sera par la suite besoin de plus de sonication que l&#39;ADN extrait d&#39;échantillons d&#39;archives qui sont souvent partiellement dégradés. Si les échantillons sont de poids moléculaire élevé et uniforme, il est raisonnable à ce stade de procéder à la sonication comme décrit dans le présent Protocole sans vérifier chaque échantillon individuellement. Si les échantillons sont fragmentés avec des échantillons d&#39;archives, il sera nécessaire d&#39;adapter la procédure sonication vraisemblablement en diminuant les temps sonication pour obtenir 300 100 points de base de fragments. Si vous envisagez de traiter des échantillons qui sont partiellement dégradés, l&#39;optimisation des paramètres de sonication peut être effectuée sur un échantillon représentatif de ceux qui vous intéressent. Basé sur le degré de fragmentation de l&#39;ADN observée de l&#39;électrophorèse sur gel (étape 27), l&#39;expérimentateur peut prédéterminer le temps de sonication optimale pour l&#39;échantillon. Nous décrivons ici une méthode pour obtenir des fragments d&#39;ADN 300-1000 pb par sonication avec un dispositif automatisé sonication (Bioruptor partir Diagenode, UCD-200 TM) en utilisant l&#39;ADN de haute masse moléculaire. <ol><li> L&#39;eau dans Biorupter doit être à 4 ° C. </li><li> Soniquer pour 7 minutes sur les réglages automatiques (30 sec 30 sec sur le descendre à puissance maximale). </li><li> Retirer 800 ng (40 pi) de produit et le placer dans soniqué siliconé 1,7 ml tube de centrifugeuse pour l&#39;immunoprécipitation (IP) de réaction. </li><li> Mettez de côté restante de 200 ng (10 pi) pour servir d&#39;entrée (IN) d&#39;ADN de référence (conserver à 4 ° C). </li&gt; </ol> IMMUNOPRECIPITATON D&#39;ADN méthylé <ol><li> Dénaturer l&#39;ADN qui sera utilisé pour la réaction de propriété intellectuelle (800 ng) à 95 ° C pendant 10 min dans un bain d&#39;eau. </li><li> Refroidir immédiatement sur la glace. Laissez refroidir complètement l&#39;ADN (environ 5 minutes sur la glace) avant de procéder à l&#39;étape suivante. </li><li> Ajouter 5 g d&#39;anticorps monoclonaux. </li><li> Ajouter tampon IP (utilisé à la température ambiante au long de ce protocole) pour un volume final de 500 pl. </li><li> Incuber pendant 2 heures à 4 ° C en rotation porte-tube. </li><li> Juste avant l&#39;étape 5 est terminée, préparer Dynabeads par lavage (étapes 6-11). Tout d&#39;abord, remettre en suspension les perles à fond dans le flacon au vortex. </li><li> Transfert 30 pl (~ 2 x 10 7) du Dynabeads resuspendu par réaction plus 1, dans un nouveau tube siliconé (par exemple, si, ce faisant 8 réactions, enlever assez de billes pour le 9, soit 270 pl). </li><li> Placer le tube sur le support magnétique pour 2 minutes à température ambiante. </li><li> Pipeter le surnageant. Lors du retrait de surnageant, évitez de toucher les billes de l&#39;intérieur contre le mur (où les perles attirent l&#39;aimant) avec la pointe de la pipette. </li><li> Enlevez le tube de l&#39;aimant, et remettre en suspension les perles dans un volume de plus de mémoire tampon IP (750 ul ul-1000). Placer le tube de retour sur la grille magnétique pour 2 minutes à température ambiante. </li><li> Répétez le laver une fois de plus, puis remettre en suspension les billes lavées dans un tampon de propriété intellectuelle dans le premier volume retiré à l&#39;étape 7. </li><li> Ajouter 30 ul de Dynabeads lavés à chaque réaction IP </li><li> Incuber dans un porte-tube en rotation pendant 2 heures à 4 ° C. </li><li> Après incubation est terminée, placer le tube sur le support magnétique pour 2 minutes à température ambiante. </li><li> Pipeter le surnageant. Evitez de toucher le mur à l&#39;intérieur du tube (où les perles attirent l&#39;aimant) avec la pointe de la pipette. Ajouter 500 pi de tampon de propriété intellectuelle. Mélanger le contenu du tube et de le remettre sur la grille magnétique pour 2 mn. Répétez laver avec tampon de 500 ul IP en même temps. </li><li> Après avoir retiré le surnageant du dernier lavage, remettre en suspension les perles dans 400 ul de tampon de digestion. </li><li> Traiter la réaction avec 100 ug de protéinase K et incuber une nuit à 50 ° C. </li></ol> Purification de l&#39;ADN immunoprécipité <ol><li> Ajouter 500 ul 01h01 pH phénol / chloroforme et vortex 7 à fond. </li><li> Centrifuger à 13 000 g pendant 10 min à température ambiante. </li><li> Retirer aqueuse (en haut) fraction dans un nouveau tube. </li><li> Répétez les étapes 1 à 3 si l&#39;interphase entre les phases aqueuse et organique semble brouillée. </li><li> Ajouter 1 / 10 ème de volume d&#39;acétate de sodium 3 M (40 pi) et de vortex. </li><li> Ajouter 1 l de glycogène (20 pg / pl) et vortex. </li><li> Ajouter 2 volumes (1000 pi) de l&#39;éthanol à 100%, vortex, et au lieu de -20 ° C pendant 20 min. </li><li> Centrifuger à 13 000 g pendant 20 min à 4 ° C. </li><li> Enlever l&#39;éthanol, le spin d&#39;impulsion, et éliminer l&#39;éthanol résiduel. </li><li> Ajouter 500 ul d&#39;éthanol froid à 70% pour se laver. Brièvement au vortex et spin à 13 000 g pendant 20 min à 4 ° C. </li><li> Enlever l&#39;éthanol à 70%, le spin d&#39;impulsion, et éliminer l&#39;éthanol résiduel par pipetage. </li><li> Sécher à l&#39;air le culot avec le bouchon ouvert pour 10 min à température ambiante pour enlever toute trace d&#39;éthanol résiduelle. </li><li> Resuspendre culot d&#39;ADN dans 10 ul stérilisés dH 2 0. </li></ol> VALIDATION PAR PCR <ol><li> Vous pouvez tester afin de s&#39;assurer que votre procédure MeDIP travaille en effectuant le protocole MeDIP aide normale de l&#39;ADN humain (homme ou femme), et ensuite doser une région connue pour être enrichi pour la méthylation. </li><li> Retirer 30% du produit MeDIP au tube de PCR, et un autre 30% du produit MeDIP à un autre tube de PCR. </li><li> Mettez 10 ng de l&#39;ADN EN dans un tube PCR, et 10 ng de l&#39;ADN EN dans un autre tube de PCR. Vous devriez maintenant avoir quatre réactions PCR séparées de mettre en place. </li><li> Effectuer PCR en utilisant H19 et CTRL amorces comme indiqué dans le tableau 1. </li><li> Préparer deux mastermixes (un pour chaque ensemble d&#39;amorces) pour les réactions PCR avec 12,5 ul volume total comme indiqué dans le tableau 2. </li><li> Thermocycle la PCR en utilisant les conditions décrites dans le Tableau 3. </li><li> Exécuter 5 pl de produits de PCR sur un gel agarose à 2% pour la visualisation. </li><li> Les résultats attendus pour MeDIP succès sont présentés dans le Tableau 4. </li></ol> Tableaux Tableau 1: H19 et CTRL amorces pour la validation de la PCR. <table border="1"><tbody><tr><td> Ensemble d&#39;amorces </td><td> Amorce sens </td><td> Amorce antisens </td><td> Taille du produit anticipé </td></tr><tr><td> H19 </td><td> H19_F 5&#39;-cgagtgtgcgtgagtgtgag </td><td> H19_R 5&#39;-ggcgtaatggaatgcttgaa </td><td> 174 pb </td></tr><tr><td> CTRL (contrôle) </td><td> CTRL_F5&#39;-gagagcattagggcagacaaa </td><td> CTRL_R 5&#39;-gttcctcagacagccacattt </td><td> 139 pb </td></tr></tbody></table> Tableau 2. Mastermixes pour les réactions PCR. <table border="1"><tbody><tr><td></td><td> H19 Mix (par Rxn) </td><td> CTRL Mix (par Rxn) </td></tr><tr><td&gt; ddH 2 O </td><td> 6,875 </td><td> 6,875 </td></tr><tr><td> Tampon 10X </td><td> 1,25 </td><td> 1,25 </td></tr><tr><td> mélange de dNTP (10 mM chacun) </td><td> 0,25 </td><td> 0,25 </td></tr><tr><td> MgCl2 (50 mM) </td><td> 0,25 </td><td> 0,25 </td></tr><tr><td> Amorces (H19_F / R ou CTRL_F / R) (10 uM de chaque F / R) </td><td> 0,625 </td><td> 0,625 </td></tr><tr><td> Taq Platinum </td><td> 0,25 </td><td> 0,25 </td></tr></tbody></table> Tableau 3. PCR conditions thermocyling. <table border="1"><tbody><tr><td></td><td> 95 ° C </td><td> 05:00 </td></tr><tr><td rowspan="3"> 40X </td><td> 95 ° C </td><td> 00:30 </td></tr><tr><td> 56 ° C </td><td> 00:30 </td></tr><tr><td> 72 ° C </td><td> 00:15 </td></tr></tbody></table> Tableau 4. Résultats attendus PCR pour MeDIP succès. <table border="1"><tbody><tr><td></td><td colspan="2" align="center"> Matrice d&#39;ADN </td></tr><tr><td> Amorce utilisée </td><td> EN </td><td> IP </td></tr><tr><td> H19 </td><td> Positive </td><td> Positive </td></tr><tr><td> CTRL </td><td> Positive </td><td> Négative </td></tr></tbody></table>

<ol><li>Beck, S., Rakyan, V. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+methylome%3A+approaches+for+global+DNA+methylation+profiling%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Genet%22%5BJournal%5D)">The methylome: approaches for global DNA methylation profiling.</a> Trends Genet. 24, 231-237 (2008).</li>
<li>Lu, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epigenetics%2C+disease%2C+and+therapeutic+interventions%5BTitle%5D)+AND+%22Ageing+research+reviews%22%5BJournal%5D)">Epigenetics, disease, and therapeutic interventions.</a> Ageing research reviews. 5, 449-467 (2006).</li>
<li>Zilberman, D., Henikoff, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genome-wide+analysis+of+DNA+methylation+patterns%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Genome-wide analysis of DNA methylation patterns.</a> Development. 134, 3959-3965 (2007).</li>
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<li>Weber, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Distribution%2C+silencing+potential+and+evolutionary+impact+of+promoter+DNA+methylation+in+the+human+genome%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Genet%22%5BJournal%5D)">Distribution, silencing potential and evolutionary impact of promoter DNA methylation in the human genome.</a> Nat Genet. 39, 457-466 (2007).</li>
<li>Weber, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chromosome-wide+and+promoter-specific+analyses+identify+sites+of+differential+DNA+methylation+in+normal+and+transformed+human+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Genet%22%5BJournal%5D)">Chromosome-wide and promoter-specific analyses identify sites of differential DNA methylation in normal and transformed human cells.</a> Nat Genet. 37, 853-862 (2005).</li>
<li>Wilson, I. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epigenomics%3A+mapping+the+methylome%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Cycle%22%5BJournal%5D)">Epigenomics: mapping the methylome.</a> Cell Cycle. 5, 155-158 (2006).</li>
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<li>Karpinski, P., Sasiadek, M. M., Blin, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Aberrant+epigenetic+patterns+in+the+etiology+of+gastrointestinal+cancers%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+applied%22%5BJournal%5D)">Aberrant epigenetic patterns in the etiology of gastrointestinal cancers.</a> Journal of applied. 49, 1-10 (2008).</li>
<li>Maekawa, M., Watanabe, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epigenetics%3A+relations+to+disease+and+laboratory+findings%5BTitle%5D)+AND+%22Current+medicinal+chemistry%22%5BJournal%5D)">Epigenetics: relations to disease and laboratory findings.</a> Current medicinal chemistry. 14, 2642-2653 (2007).</li>
<li>Vucic, E. A., Brown, C. J., Lam, W. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epigenetics+of+cancer+progression%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmacogenomics%22%5BJournal%5D)">Epigenetics of cancer progression.</a> Pharmacogenomics. 9, 215-234 (2008).</li>
<li>Egger, G., Liang, G., Aparicio, A., Jones, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epigenetics+in+human+disease+and+prospects+for+epigenetic+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Epigenetics in human disease and prospects for epigenetic therapy.</a> Nature. 429, 457-463 (2004).</li>
<li>Jones, P. A., Baylin, S. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+fundamental+role+of+epigenetic+events+in+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Genet%22%5BJournal%5D)">The fundamental role of epigenetic events in cancer.</a> Nat Rev Genet. 3, 415-428 (2002).</li>
<li>Fraga, M. F., Esteller, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNA+methylation%3A+a+profile+of+methods+and+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechniques%22%5BJournal%5D)">DNA methylation: a profile of methods and applications.</a> Biotechniques. 33, 632-649 (2002).</li>
</ol>

Il ya une conscience croissante de la joue rôle important dans la maladie de méthylation de l&#39;ADN, donc le développement de tests pour mesurer cette modification sont de plus en plus important 3, 12, 13. La technique est un outil MeDIP prête pour le dépistage à la fois l&#39;ensemble du génome et spécifiques de locus niveau 6, 7. Cette technique offre une vue rapide des niveaux de méthylation de l&#39;ADN en utilisant des quantités limitées de démarrage de l&#39;ADN et permet des comparaisons f...

<table><tbody><tr><td>Sonicateur Biorupter</td><td>Outil</td><td>Diagenode</td><td>UCD-200 TM</td><td></td></tr><tr><td>Tubes microcentrifuge SafeSeal de 1,7 ml</td><td>Autre</td><td>Sorenson BioScience</td><td>11510</td><td></td></tr><tr><td>Spectrophotomètre ND 3300</td><td>Outil</td><td>NanoDrop</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Anticorps primaire : anticorps monoclonal de souris anti-5&amp;rsquo;-méthylcytosine</td><td>Réactif</td><td>Calbiochem</td><td>162 33 D3</td><td></td></tr><tr><td>Anticorps secondaire : billes magnétiques Dynabeads M-280 anti-IgG de mouton</td><td>Réactif</td><td>Invitrogen</td><td>112-01D</td><td></td></tr><tr><td>Support magnétique pour tubes</td><td>Outil</td><td>Invitrogen</td><td>CS15000</td><td></td></tr><tr><td>Mini LabRoller</td><td>Outil</td><td>Labnet International</td><td>H5500</td><td></td></tr><tr><td>Buffer d'immunoprécipitation (IP Buffer)</td><td></td><td></td><td></td><td>10 mM NaPO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt; pH 7,0, 140 mM NaCl, 0,05 % de Triton X-100. À conserver à température ambiante</td></tr><tr><td>Buffer de digestion</td><td></td><td></td><td></td><td>10 mM Tris pH 8,0, 100 mM EDTA, 0,5 % de SDS, 50 mM NaCl</td></tr></tbody></table>

immunoprécipitation adn méthylé

Methylated DNA Immunoprecipitation

L&#39;identification de modèles de méthylation d&#39;ADN est une procédure commune à l&#39;étude de l&#39;épigénétique, la méthylation est connu pour avoir des effets significatifs sur l&#39;expression des gènes, et est impliqué dans le développement normal ainsi que les maladies<sup&gt; 1-4</sup&gt;. Ainsi, la capacité à discriminer entre l&#39;ADN méthylé et non méthylés d&#39;ADN est essentielle pour générer des profils de méthylation pour de telles études. Méthylés d&#39;ADN immunoprécipitation (MeDIP) est une technique efficace pour l&#39;extraction de l&#39;ADN méthylé à partir d&#39;un échantillon d&#39;intérêt<sup&gt; 5-7</sup&gt;. Un échantillon d&#39;aussi peu que 200 ng d&#39;ADN est suffisante pour l&#39;anticorps, ou immunoprécipitation (IP), la réaction. L&#39;ADN est traité par ultrasons en fragments d&#39;une taille allant 300-1000 pb, et est divisé en immunoprécipité (IP) et d&#39;entrée (IN) portions. L&#39;ADN IP est ensuite dénaturé à la chaleur et ensuite incubées avec des anti-5&#39;mC, permettant à l&#39;anticorps monoclonal de lier l&#39;ADN méthylé. Après cela, les billes magnétiques contenant un anticorps secondaire ayant une affinité pour l&#39;anticorps primaire sont ajoutés et incubés. Ces anticorps perles liés liera l&#39;anticorps monoclonal utilisé dans la première étape. ADN lié au complexe anticorps (ADN méthylé) est séparé du reste de l&#39;ADN en utilisant un aimant pour tirer les complexes de la solution. Plusieurs lavages à l&#39;aide du tampon IP sont ensuite effectuées pour enlever le non consolidées, non méthylés d&#39;ADN. L&#39;ADN méthylé / anticorps sont ensuite digérés par la protéinase K pour digérer les anticorps ne laissant que l&#39;ADN méthylé intacte. L&#39;ADN est purifié enrichi par le phénol: l&#39;extraction du chloroforme pour éliminer la matière protéique et ensuite précipité et resuspendu dans de l&#39;eau pour une utilisation ultérieure. Les techniques de PCR peut être utilisée pour valider l&#39;efficacité de la procédure MeDIP par l&#39;analyse des produits d&#39;amplification de l&#39;ADN IP et IN pour les régions connues pour manque et connu pour contenir des séquences méthylées. L&#39;ADN purifié méthylées peuvent alors être utilisées pour les locus spécifiques (PCR) ou l&#39;ensemble du génome (biopuces et séquençage) des études de méthylation, et est particulièrement utile lorsqu&#39;il est appliqué en conjonction avec d&#39;autres outils de recherche tels que le profilage d&#39;expression génique et d&#39;hybridation génomique comparative sur microréseau ( CGH)<sup&gt; 8</sup&gt;. Une enquête plus approfondie méthylation de l&#39;ADN va conduire à la découverte de nouvelles cibles épigénétiques, qui à leur tour, peuvent être utiles au développement de nouveaux outils de recherche thérapeutique ou pronostique pour les maladies comme le cancer qui sont caractérisées par l&#39;ADN méthylé aberrante<sup&gt; 2, 4, 9-11</sup&gt;.

Cette vidéo montre le protocole pour immunoprécipitation ADN méthylé (MeDIP). MeDIP est une procédure de deux jours qui extrait sélectivement des fragments d&#39;ADN méthylé à partir d&#39;un échantillon d&#39;ADN génomique en utilisant des anticorps avec une spécificité pour la 5-méthylcytosine (anti-5 MC).

Immunoprécipitation ADN méthylé

L'identification des profils de méthylation de l'ADN est une procédure courante dans l'étude de l'épigénétique, car il est établi que la méthylation a des effets significatifs sur...

Ce vidéo montre un protocole d'immunoprécipitation de l'ADN méthylé, ou MeDIP, une méthode utilisée pour isoler spécifiquement l'ADN méthylé de manière impartiale. La méthylation de l'ADN chez les mammifères est caractérisée par l'ajout d'un groupe méthyle en position C5 de la cytosine.Lorsqu'elle est présente dans un dinucléotide CPG, il s'agit d'une marque épigénétique réversible qui joue un rôle important dans le développement normal, ainsi que dans plusieurs processus pathologiques. Les fonctions normales de la méthylation de l'ADN incluent l'inactivation du chromosome X chez les femmes, le silence des éléments répétitifs, l'empreinte génomique et le maintien de la stabilité génomique. La méthylation de l'ADN a également été mise en évidence dans de nombreuses maladies telles que le cancer, le syndrome de Prader-Willi, le syndrome de ICF (immunodéficience, instabilité centromérique et anomalies faciales) et d'autres syndromes.Dans les cancers, par exemple, une hyperméthylation anormale des promoteurs peut entraîner la suppression de gènes essentiels de suppression tumorale. Tandis qu'une hypométhylation inappropriée provoque une instabilité chromosomique et l'activation des onc

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L'étalon-or pour l'analyse de la méthylation de l'ADN est le séquençage génomique de l'ADN au bisulfite convertis. Cette méthode tire parti de la sensibilité accrue de la cytosine par rapport à 5-méthylcytosine (5-MeC) au bisulfite désamination dans des conditions acides. Cytosines non méthylées peuvent être distingués des cytosines méthylées après amplification par PCR de l'ADN génomique cible.

Méthylation de l&#39;ADN: bisulfite de modification et d&#39;analyse

Cette vidéo décrit la technique du dot-blot pour déterminer le niveau de méthylation de l’ADN dans les chondrocytes humains in vitro via le transfert d’échantillons d’ADN sur une membrane en nylon et la visualisation ultérieure à l’aide d’anticorps monoclonaux. Cela permet de déterminer le phénotype des chondrocytes à différents stades de la culture.

5-Methylcytosine dot Blot pour déterminer l’étendue de la méthylation de l’ADN

Le séquençage au bisulfite amélioré est une méthode de préparation de banques de séquençage pour l’analyse de la méthylation de l’ADN basée sur la digestion enzymatique de restriction combinée à la conversion de la cytosine au bisulfite. Ce protocole nécessite 50 ng de matériel de départ et fournit des données de résolution de paires de bases dans des régions génomiques riches en GC.

Enhanced réduit Représentation bisulfite séquençage pour l&#39;évaluation de méthylation de l&#39;ADN à la résolution de paires de base

La méthylation de l’ADN est capable de maintenir des niveaux stables d’expression génique et de permettre des changements dynamiques dans l’expression des gènes en réponse à une variété de stimuli. Nous détaillons les techniques qui permettent d’étudier les changements spécifiques aux gènes dans la méthylation de l’ADN et l’effet de ces changements sur l’expression des gènes.

Corréler spécifique du gène ADN changements méthylation avec l&#39;expression et l&#39;activité transcriptionnelle des astrocytes<em&gt; KCNJ10</em&gt; (Kir4.1)

Nous présentons ici un protocole pour enquêter sur génome large méthylation de l'ADN dans les études de patients cliniques à grande échelle de dépistage en utilisant le séquençage de l'ADN méthyl-Binding Capture (MBDCap-seq ou MBD-seq) la technologie et de la bioinformatique ultérieures analyse pipeline.

Méthyl-liaison par capture d&#39;ADN de séquençage pour les tissus du patient

Ce travail décrit un protocole de séquençage optimisé du domaine de liaison au méthyl-CpG (MBD) et une canalisation de calcul pour identifier des régions riches en CpG différentiellement méthylées chez les patients atteints de leucémie lymphocytaire chronique (CLL).

Analyse approfondie de la méthylation d&#39;ADN en utilisant un procédé de capture de domaine de liaison au méthyl-CpG dans les patients atteints de leucémie lymphocytaire chronique

Ce travail décrit un protocole pour l'immunoprécipitation de la chromatine (ChIP) en utilisant une ligne de cellules T mûres de souris. Ce protocole est approprié pour étudier la répartition des marques d'histones spécifiques sur des sites promoteurs spécifiques ou génométriques.

Immunoprécipitation à la chromatine (ChIP) dans les lignes de cellules T de souris

Nous présentons une méthode efficace et reproductible pour isoler et de la culture des cellules progénitrices neurales de tissus du cerveau embryonnaire et postnatale pour l’immunoprécipitation de la chromatine (ChIP) de l’histone 3 lysine 79 MBD (H3K79me2) - une marque d’histone agrave la domaine globulaire de l’histone 3.

Isolement et culture des progéniteurs neurones suivie par immunoprécipitation de la chromatine de marque d’Histone 3 Lysine 79 MBD

L'immunoprécipitation de chromatine (ChIP) est un outil puissant pour comprendre les mécanismes moléculaires de la régulation génique. Cependant, la méthode implique des difficultés dans l'obtention de la fragmentation de chromatine reproductible par tonte mécanique. Ici, nous fournissons un protocole amélioré pour un jeu d'enfant en utilisant la digestion enzymatique.

Chromatin Immunoprecipitation Assay Utilisation de nucléases micrococciques dans les cellules de mammifères

L’essai méthylé d’immunoprécipitation d’ARN est une méthode anticorps-basée employée pour enrichir pour des fragments méthylés d’ARN. Couplé à un séquençage profond, il conduit à l’identification des transcriptions portant la modification m5C.

Essai méthylé d’immunoprécipation d’ARN pour étudier la modification m5C dans Arabidopsis

Apprenez l'immunoprécipitation de l'ADN méthylé (MeDIP) pour isoler spécifiquement l'ADN méthylé de manière non biaisée. Cette technique épigénétique permet d'étudier le méthylome dans le développement normal et les maladies comme le cancer.

Immunoprécipitation ADN méthylé

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