חלוקת תאים

מושגיםהכנת מדריךפרוטוקול סטודנט
0 צפיות05:44 דק'
Print Procedure Steps
Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. התבוננות במחזור התא בקצה שורש
    • השערות: השערת הניסוי היא שבפרוסות קצות שורש שטופלו בנוקודזול, כימיקל המפריע לפילמור מיקרוטובולרי, כל התאים ייעצרו באותו שלב של מחזור התא וכי בפרוסות קצה בצל לא מטופלות יודגמו כל השלבים השונים של מחזור התא. השערת האפס היא שלא יהיו הבדלים במיטוזה בין שתי הקבוצות וכי שלבים שונים של מחזור התא יודגמו.
    • כדי להתכונן לניסוי זה תשתמשו בבצל שהונח במים במשך מספר ימים עד שקצות שורשים לבנים חדשים יתחילו לנבוט. השתמש בסכין גילוח כדי לחתוך חתיכה של 1 ס"מ מקצה אחד מקצות השורש.
    • מניחים את פרוסת הבצל לתוך צינור מיקרוצנטריפוגה המסומן "N" עבור מצב nocodazole.
    • לאחר מכן, חותכים חתיכה שנייה של 1 ס"מ של קצה שורש בצל ומניחים בצינור מיקרוצנטריפוגה המסומן "C" עבור מצב הבקרה.
    • הוסף 2 μL של 5 mg/mL nocodazole ל 1 מ"ל מים בצינור microcentrifuge המסומן N ו 1 מ"ל של מים רק לצינור המסומן C.
    • השאירו את הצינורות המכילים את קצות השורש לדגור במשך 12 שעות ונגבו את סביבת העבודה עם 70% אתנול.
    • כאשר הדגירה הושלמה, הגדר בלוק חום ל 60 מעלות צלזיוס.
    • לשטוף את הטיפים המטופלים nocodazole עם מים ולאחר מכן לשאוף את הנוזל.
    • חזור על כביסה זו פעמיים נוספות, בסך הכל שלוש כביסות.
    • מלאו את שתי הצינורות ב-1 מ"ל של חומצה הידרוכלורית רגילה אחת. לדגור את הצינורות בלוק חום 60 מעלות צלזיוס במשך 12 - 15 דקות, ולאחר מכן להשליך את החומצה לתוך בקבוק פסולת.
    • כעת, הוסף 1 מ"ל של טיפת מים מזוקקים חכמה לצינורות לפחות שלוש פעמים כדי לשטוף את הדגימות.
    • כעת הוסף מיקרוליטר אחד של כתם DAPI ל- 10 מ"ל של מלח חוצץ פוספט (PBS).
    • לאחר מכן הכניסו 50 μL של כתם DAPI מדולל זה לכל צינור, והשאירו אותם בטמפרטורת החדר כדי לדגור במשך 12 דקות.
    • לאחר מכן, בצעו שלוש שטיפות מים מזוקקות כמו בשלב 10.
    • תייג שקופית מיקרוסקופ אחת כ'שליטה' ואחרת כ'Nocodazole'.
    • העבר את השורשים המוכתמים לשקופיות המיקרוסקופ המתאימות שלהם והוסף טיפת מים לשקופית הבקרה וטיפת nocodazole למגלשת nocodazole.
    • השתמש בסכין הגילוח כדי להסיר את החלקים הלא מוכתמים של כל קצה שורש והנח כיסוי זכוכית על כל דגימה.
    • לחץ בזהירות כלפי מטה על כל פתק כיסוי עם קצה אצבע בכפפה, ולאחר מכן תן לשקופיות לשבת במשך 10 דקות.
    • לבסוף, הצג את השקופיות תחת המטרה 40X של מיקרוסקופ פלואורסצנטי וצלם תמונות של תכשירי תאי קצה השורש שלך.
  2. הבנת אובדן בקרת מחזור התא
    • הערה: לפני שתאים יכולים לעבור את כל שלבי מחזור התא ישנם מספר מחסומים שעליהם לעבור. נקודות ביקורת אלה מווסתות על ידי חלבוני ציקלין וקינאז תלויי ציקלין, או CDKs. אם הציקלינים וה-CDK קובעים שאירועים תאיים קודמים לא הושלמו כראוי, הם יעצרו את התאים בשלב זה וימנעו מהם להתרבות. בתאי סרטן אחד או כמה מהריסונים המולקולריים הללו לוויסות חלוקת התא אובדים, וזה מאפשר לתאים הפגומים לברוח מבקרת התפשטות התא. תאים חריגים אלה מתפתחים לגידולים שהם המוני תאים מתרבים בלתי מבוקרים המפריעים לתפקודים הרגילים של הגוף. שימו לב איך לפני שהוא מתחלק התא הסרטני הזה מתעגל ושובר אור חזק מאוד מתחת למיקרוסקופ האור. הסיבה לכך היא שלא כל התאים הסרטניים מתחלקים בהצלחה לתאי בת לאחר כל סבב של מיטוזה. משמעות הדבר היא שלעתים קרובות הם מכילים עודף של אברונים ודנ"א, ועלייה זו בתכולת התאים פירושה שהם ישברו אור בעוצמה רבה יותר מאשר תאים רגילים.
  3. Results
    • בחנו את התמונות שאספתם ותיעדו בטבלה 1 את מבני התאים והשלבים השונים שניתן לזהות בפרוסת קצה הבצל שטופלה בנוקודזול. לחץ כאן להורדת טבלה 1
    • אם יש תאים שעוברים מיטוזה, שימו לב אילו שלבים של חלוקת התא אתם רואים.
    • רשום את אחוז התאים בכל שלב של מיטוזה בטבלה 1.
    • לאחר מכן, בחנו את התמונות של פרוסת קצה הבצל שלא טופלה, ותיעדו אילו מבני תאים אתם יכולים לזהות.
    • אם יש תאים שעוברים מיטוזה, שקול אילו שלבים של חלוקת התא אתה רואה, ורשום את אחוזי התאים בכל שלב של מיטוזה בטבלה 1.

Browse More Videos

Cyclin CDK