Method Article

Microinjection מתא בודד לניתוח תקשורת נייד

DOI:

10.3791/50836

February 26th, 2017

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

אנו מתארים כאן כיצד לבצע microinjection מתחיל מתא בודד הצהוב לוציפר לדמיין תקשורת סלולרית באמצעות-צומת פער בתאים חיים, ולספק כמה עצות שימושיות. אנו מצפים כי מסמך זה יעזור לכולם להעריך את מידת צימוד הסלולר בשל צומת פער פונקציונליים. הכל המתואר כאן יכול להיות, באופן עקרוני, מותאמי צבעי ניאון אחרים עם משקל מולקולרי להלן 1,000 Daltons.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

צמתים של פער הם ערוצים בין-תאיים המאפשרים תקשורת של תאים שכנים. תקשורת זו תלויה בתרומה של חצי ערוץ על ידי כל תא שכן ליצירת צומת הפער. בתאי יונקים, תעלת החצי נוצרת על ידי שישה קונקסינים, מונומרים עם ארבעה תחומים טרנסממברניים ומסוף C ו- N בתוך הציטופלזמה. צמתים מרווחים מאפשרים החלפת יונים, שליחים שניים ומטבוליטים קטנים. בנוסף, יש להם תפקידים חשובים בצורות רבות של תקשורת תאית בתהליכים פיזיולוגיים כגון העברה סינפטית, התכווצות לב, צמיחת תאים והתמיינות. אנו מפרטים כיצד לבצע מיקרו-הזרקה של תא בודד של לוציפר צהוב כדי לדמיין תקשורת תאית באמצעות צמתים מרווחים בתאים חיים. צפוי כי בצמתים של פערים פונקציונליים, הצבע יתפזר מהתא הטעון לתאים המחוברים. זוהי טכניקה שימושית מאוד לחקר צמתים מרווחים מכיוון שאתה יכול להעריך את דיפוזיה של הקרינה בזמן אמת. אנו דנים כיצד להכין את התאים ואת המיקרופיפטה, כיצד להשתמש במיקרומניפולטור ולהזריק צבע פלואורסצנטי בעל משקל מולקולרי נמוך בקו תאי אפיתל.

Introduction

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

צמתים הפער הם ערוצי אינטר המאפשרים אינטרקום בין תאים שכנים 1. תקשורת זו המחברת בין שני תאים או יותר השכנות, שבהן כל אחד תורם עם connexon או hemichannel כדי ליצור את ערוץ אינטר. בתאי יונקים, את connexon נוצר על ידי שישה connexins, מונומרים עם ארבעה תחומים הטרנסממברני ו- C ו- N מסוף בתוך הציטופלסמה 2. צמתים הפער לא רק לאפשר מעבר של יונים, שליחים משניים מטבוליטים קטנים, אלא גם לתרום הרבה צורות של תקשורת סלולרית בתהליכים פיזיולוגיים רבים, כגון העברה סינפטית, התכווצות הלב, צמיחת תאים ו -3 בידול, 4, 5, 6, 7, 8. בנוסף צומת פער נקשרומחלות רבות כולל סרטן 9, 10, ניוון שרירים 11, כמה מחלות גנטיות demyelinating 12 מחלות.

סוג זה של crosstalk בין תאית יכול להיות מוערך על ידי מספר שיטות 13, 14, 15, 16. במאמר זה, אנו מראים כיצד לבצע microinjection מתחיל מתא בודד הצהוב לוציפר לדמיין תקשורת סלולרית באמצעות-צומת פער בתאים חיים. אנו דנים כיצד להכין את התאים ואת micropipette, את השימוש של micromanipulator והזרמת לצבוע צהוב לוציפר בקו תא אפיתל הרתי. בדרך כלל, הליך ניסיוני זה יכול להיות מנותח על ידי הממוצע של תאי מחוברי התא טעון עם צבע. בנוסף, שיטה זו יכולה לשמש עם צבעי ניאון אחרים עם משקל מולקולרי מתחת הפערצומת חתוכים המהווה כ -1,000 Daltons.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. הכנת תאים

  1. יש לשמור על תרבות של קו תא אפיתל הרתי (IT76M1) או תא להיבדק באינקובטור (37 ° C / 5% CO 2).
  2. שוטפים את התאים עם PBS 1x (לחזור פריט זה 3x).
  3. להוסיף טריפסין על התאים למשך 5 דקות.
  4. הוסף בינוני (פעמים מהיקף טריפסין הוסיף בסעיף 1.3) עם 10% FBS (בסרום שור עוברי) אל התאים עם טריפסין ו צנטריפוגות (800 XG במשך 5 דקות).
  5. ספירת התאים ב hemocytometer.
  6. התאם את הצפיפות של תאים בהתאם לסוג התא כמו התאים צריכים להיות בקשר הדוק עם שני כדי לאפשר צימוד. הערה: במקרה שלנו, השתמשנו 3 x 10 5 תאים לכל 35 מ"מ צלחת פטרי.

2. הכנת Micropipette

  1. משוך את micropipette כמפורט מתוך micropipette נימי זכוכית (1.5 מ"מ קוטר) על סופי 0.2 מיקרומטר של קוטר כדי להשיג התנגדות סופית של כ -30 MΩf "> 17, 18.
    הערה: לחלופין, טפטפות הזרקה ניתן לרכוש. ההתנגדות תלוי בגודל התא, כמו למשל microelectrode עמידות גבוהה יותר יהיה צורך עבור תאי acinar הלבלב, למשל (100-150 MΩ) 19. בעיה נפוצה שעלולה להתרחש היא ממטרים של פתרון צהוב לוציפר אז מה שיכול להכשיל את micropipette והן עשויות לחייב סינון או צנטריפוגה מוקדמת. לפני ההזרקה, micropipette יש לנתח תחת מיקרוסקופ כדי לזהות אם קיימת חסימה או כל סוג של הפרעה 13. את micropipette יכול להיבדק על ידי הזרקת LY עם קצה micropipette בתוך תמיסת מלח.

3. בדיקת Micropipette

  1. הכן את הפתרון צהוב לוציפר (5%) ב -150 mmol / L LiCI ולטעון את micropipette באמצעות מזרק או למלא את משבצות (מכניס אותו פתרון LY).
  2. מניחים את micropipeטטי על צלחת פטרי 35 מ"מ עם תאי IT76M1 בתחנת עבודת microinjection ו להטביע את קצה micropipette הזכוכית לתוך המדיום הסלולרי. דגש על micropipette ולבצע בדיקה זורם לצבוע ידי החלת דופק.

4. תא בודד לוציפר צהוב Microinjection

  1. פוקוס מיקרוסקופ ממש מעל שכבת התאים באמצעות קטיון fi Magni גבוהה (40X), ואז להנמיך את פיפטה לאט אל התאים באמצעות micromanipulator.
  2. לנקב את תא המטרה כאשר הקצה הוא קרוב עד כדי נגיעת קרום התא, ולהחיל דופק hyperpolarizing קטן להציג את LY לתוך התא. המתח להחיל יהיה תלוי מטען נטו של צבע כדי להיות מוזרק. לחילופין, ישנם צבעים אחרים יכולים לשמש עם הטכניקה הזו כפי שמוצג בטבלה 1.
    הערה: באופן עקרוני כל צבע הידרופילי עם MW פחות 1KDa יוכל לשמש. עם זאת, את קצב ההעברה יכול להשתנות על פי המשקל hydrophilicity. בנוסף, uהעברת Nspecific של צבע המשמש חייבת להיות מוערכת.
  3. צלמו תמונות תא 3 דקות לאחר הזרקת צבע או לעשות סרט קטן עם מיקרוסקופיה זמן לשגות (30 fps).
    הערה: גישה דומה ניתן היה לראות היטומי ואח '(2015) 20. כדי למנוע תקשורת באמצעות גשרים בין תאית (מיטוזה שלמה) חברת dextran שיתוף הזרקת rhodamin (מ 2 עד 10 KDA), אשר אינו עוברת דרך צומת פער אבל עוברת דרך גשרים בין תאית וסוגים מסוימים של nanotubules המומלץ כפי שמוצג באיור 2 .

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

תא אפיתל הרתי קו IT-76MI שמש להעריך צימוד לצבוע ידי צומת פער כמו תאים אלה תוארו להביע צומת פער פונקציונליים נוצרו על ידי connexin 43 21. איור 1 מציג את הזריקה של לוציפר צהוב כשהם מיושמים בתא אחד מתחת קצה פיפטה. לאחר כמה דקות, תאים המחוברים להיות ניאון (כוכביות) המציין את הדיפוזיה של צבע פלואורסצנטי דרך צמתים הפער. מספר התאים והזמן הפך פלורסנט מזוהה ישירות עם מידת תקשורת סלולרית בין תאים אלה. איור 2 מציג את ה...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

כדי לאמת את הנוכחות של צומת הפער בין תאית פונקציונלי, להשתמש באמצעים, אשר קרום חדיר, למרות חדיר ידי ערוצי אינטר נדרשים 16. והעמסה, צבע פלואורסצנטי הראשון להבחין תא אל תא צימוד 22, הוא חדיר בין ממברנות הלא junctional 3 ו הוחלפה ולכן על ידי צבע צהוב לוציפר 15. בשלב זה, כדי למצוא את הבחירה הטובה ביותר בין הסוגים השונים של קליעים נותבים ניאון תלוי בהיקף ותנאי הניסוי. ההליך של טעינת תא עם צב...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

למחברים אין ניגודי אינטרסים.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

המחברים מקדישים מאמר זה לכבודו של פרופ' ז'ילברטו אוליביירה-קסטרו שהציג מחקר בתקשורת בין-תאית על ידי צמתים מרווחים בברזיל. עבודה זו מומנה על ידי Capes, CNPQ ו-Faperj.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
לוציפר צהובSigmaL0259
ליתיום כלורידSigmaL4408
PBS טבליותסיגמא P4417
RPMISigmaR4130
סרום עוברי בקרCultilab
TrypsinSigmaT4799
שולחן מבודד רעידות ניופורטVH3036W-OPTיש צורך בשולחן מבודד רטט כדי להגן על הניסויים מפני רעידות ולמנוע נזק לתאים
מיקרומניפולטורNarishigeMMO-203ציוד זה מאפשר התאמות מדויקות של המיקרופיפטה, הדרושה להזרקת מיקרו תאים.
מחולל נוכחי DigitimerDS2כדי לייצר את זרימת הצבע דרך המיקרופיפטה, ניתן זרם מתחת לננו אמפר אחד באמצעות מחולל זרם עם אלקטרודה בתוך המיקרופיפטה או מגבר בעל מעגל פיצוי קיבול (אלקטרומטר ישן) או פונקציות הזרקת זרם של מגברי מהדק תיקון חדשים, וחוט ההארקה שקוע בצלחת הצלחת. לחלופין, ניתן להזריק את הצבע על ידי מיקרו-מזרק פנאומטי, בהתאם להמלצות המפעל.    

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Bennett, M. V., et al. Gap junctions: new tools, new answers, new questions. Neuron. 6 (3), 305-320 (1991).
  2. Orellana, J. A., Martinez, A. D., Retamal, M. A. Gap junction channels and hemichannels in the CNS: Regulation by signaling molecules. Neuropharmacology. , (2013).
  3. Peracchia, C. Structural correlates of gap junction permeation. Int Rev Cytol. 66, 81-146 (1980).
  4. Loewenstein, W. R. Junctional intercellular communication and the control of growth. Biochim Biophys Acta. 560 (1), 1-65 (1979).
  5. Alves, L. A., et al. Functional gap junctions in thymic epithelial cells are formed by connexin 43. Eur.J Immunol. 25 (2), 431-437 (1995).
  6. Alves, L. A., et al. Are there functional gap junctions or junctional hemichannels in macrophages? Blood. 88 (1), 328-334 (1996).
  7. Fonseca, P. C., et al. Characterization of connexin 30.3 and 43 in thymocytes. Immunology letters. 94 (1-2), 65-75 (2004).
  8. Nihei, O. K., et al. Modulatory effects of cAMP and PKC activation on gap junctional intercellular communication among thymic epithelial cells. BMC Cell Biol. 11, 3(2010).
  9. Czyz, J., Szpak, K., Madeja, Z. The role of connexins in prostate cancer promotion and progression. Nat Rev Urol. 9 (5), 274-282 (2012).
  10. El-Saghir, J. A., El-Habre, E. T., El-Sabban, M. E., Talhouk, R. S. Connexins: a junctional crossroad to breast cancer. Int J Dev Biol. 55 (7-9), 773-780 (2011).
  11. Cea, L. A., et al. Connexin- and pannexin-based channels in normal skeletal muscles and their possible role in muscle atrophy. J Membr Biol. 245 (8), 423-436 (2012).
  12. Cotrina, M. L., Nedergaard, M. Brain connexins in demyelinating diseases: therapeutic potential of glial targets. Brain Res. 1487, 61-68 (2012).
  13. Park, H. an-A., R, S., Khanna, S. avita, Sen, C. handan K. Current Technologies in Single-Cell Microinjection and Application to Study Signal Transduction. Methods in Redox Signaling. , Chapter 10 (2010).
  14. Abbaci, M., Barberi-Heyob, M., Blondel, W., Guillemin, F., Didelon, J. Advantages and limitations of commonly used methods to assay the molecular permeability of gap junctional intercellular communication. Biotechniques. 45 (1), 33-52 (2008).
  15. Stewart, W. W. Functional connections between cells as revealed by dye-coupling with a highly fluorescent naphthalimide tracer. Cell. 14 (3), 741-759 (1978).
  16. Meda, P. Probing the function of connexin channels in primary tissues. Methods. 20 (2), 232-244 (2000).
  17. Klaunig, J. E., Shi, Y. Assessment of gap junctional intercellular communication. Curr Protoc Toxicol. , Chapter 2 Unit2 17 (2009).
  18. Hanani, M. Lucifer yellow - an angel rather than the devil. J Cell Mol Med. 16 (1), 22-31 (2012).
  19. Orci, L., Biochemistry, C. Blockage of Cell-to-Cell Communication within Pancreatic Acini Is Associated with Increased Basal Release of Amylase Materials and Methods Preparation of Acini. Cell. 103 (August), 475-483 (1986).
  20. Hitomi, M., et al. Differential connexin function enhances self-renewal in glioblastoma. Cell Rep. 11 (7), 1031-1042 (2015).
  21. Nihei, O. K., Campos de Carvalho,, C, A., Spray, D. C., Savino, W., Alves, L. A. A novel form of cellular communication among thymic epithelial cells: intercellular calcium wave propagation. Am J Physiol Cell Physiol. 285 (5), C1304-C1313 (2003).
  22. Kanno, Y., Loewenstein, W. R. Intercellular Diffusion. Science. 143 (3609), 959-960 (1964).
  23. Alves, L. A., Nihei, O. K., Fonseca, P. C., Carvalho, A. C., Savino, W. Gap junction modulation by extracellular signaling molecules: the thymus model. Braz J Med Biol Res. 33 (4), 457-465 (2000).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Single cell MicroinjectionGap Junction AnalysisLucifer Yellow DyeFluorescence MicroscopyMicromanipulator TechniqueCellular Communication StudyEpithelial Cell LineGap Junction FunctionDye Diffusion AssayThymic Epithelial Cells

Related Articles