הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

בידוד RNA מן העכבר לבלב: רקמות ribonuclease עשיר

27.5K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/51779

⸱

2 באוגוסט 2014

במאמר זה

סיכום

אנו מדווחים על הליך לבידוד RNA עם שלמות גבוהה מלבלב העכבר העשיר בריבונוקלאז.

תקציר

בידוד של RNA איכותי מרקמה עשירה בריבונוקלאז כמו לבלב עכבר מהווה אתגר. מכיוון שתפקידו העיקרי של הלבלב הוא לסייע בעיכול, לבלב עכבר עשוי להכיל 75 מ"ג ריבונוקלאז. אנו מדווחים על שינויים בפרוטוקולי ריאגנט ליזה סטנדרטיים של פנול/גואנידין תיוציאנט כדי לבודד RNA מלבלב העכבר. גואנידין תיוציאנט הוא דנטורנט חלבון חזק וישבש ביעילות את פעילות הריבונוקלאז ברוב התנאים. עם זאת, יש צורך בשינויים קריטיים בפרוטוקולים סטנדרטיים כדי לבודד בהצלחה RNA מרקמות עשירות בריבונוקלאז. השלבים העיקריים כוללים יחס גבוה של מגיב ליזה לרקמה, הסרת רקמה לא מעוכלת לפני הפרדת הפאזה והכללת מעכב ריבונוקלאז לתמיסת ה-RNA. באמצעות שינויים אלה ואחרים, אנו מבודדים באופן שגרתי RNA עם מספר שלמות RNA (RIN) גדול מ-7. ה-RNA המבודד הוא באיכות מתאימה לניתוח ביטוי גנים שגרתי. התאמה של פרוטוקול זה לבידוד RNA מרקמות עשירות בריבונוקלאז מלבד הלבלב אמורה להיות ניתנת להשגה בקלות.

מבוא

בידוד של RNA עם יושרה גבוהה נדרש לניסויים בביולוגיה מולקולריים שיגרתי כגון סופג צפוני 9, qRT-PCR 1 או ביטוי פרופיל גנטי 5. רוב השיטות עכשוויות של בידוד RNA מבוססות על שינויים של פרוטוקולי thiocyanate guanidine 2, 3. Thiocyanate guanidine הוא denaturant חלבון חזק ויהיה יעיל לשבש את הפעילות של ribonuclease תחת רוב התנאים. השיטה הפופולרית של Chomczynski וסאקי 3 בשילוב פנול לפתרון תמוגה thiocyanate guanidine, צמצום זמן הבידוד לכ -4 שעות. ריאגנטים מיצוי RNA, זמינים מסחרי רבים מבוססים על Chomczynski וסאקי שיטת 3.

רקמות ribonuclease עשירות כגון לבלב אנושי או עכבר מציגה אתגר נוסף לבידוד RNA. לבלב של עכבר עשוי להכיל עד 75 מ"ג ribonuclease 6 שחלקם ישוחרר דוריןשיבוש גרם של רקמת הלבלב וכתוצאה מכך autolysis רקמות. שינויים של פרוטוקולי thiocyanate guanidine שימשו בהצלחה לבודד RNA מלבלב עם רמה גבוהה של יושרה 2, 4, 7, 10. עירוי של מגיב ייצוב RNA לבידוד בהנחייתם לבלב של עכברים של RNA עם רמה גבוהה של יושרה 4, 7, 10, לעומת זאת עירוי של פתרונות ללבלב דורש מיומנות רבה, עשוי לדרוש מכשירים מיוחדים כגון מיקרוסקופ לנתח ושיבוש ארכיטקטורת רקמה במהלך ההליך עלול לגרום לתמוגה תא. מרוססים רקמות עם מגיב ייצוב RNA עשוי להפריע ליישומים אחרים, כולל בידוד חלבון וצביעה היסטולוגית. יתר על כן, טכניקה זו אינה מתאימה לבידוד RNA מן הלבלב אנושי. פרוטוקולים אחרים דורשים ההכנה של פתרונות ספציפיים על ידי החוקר 2.

אנו מדווחים על פרוטוקול לבודד RNA עם יושרה גבוהה מלבלב עכבר. הפרוטוקול דואר משתמש באלמנטים של שיטות שפורסמו בעבר, והוא מבוסס במידה רבה על הפרוטוקולים סטנדרטי פנול / guanidine מבוסס thiocyanate תמוגה מגיב. היא אינה דורשת ההכנה של פתרונות מיוחדים ואינו דורש עירוי של חומרים כימיים ללבלב. שלבים קריטיים עבור בידוד RNA מוצלח כוללים פנול / מבוסס guanidine מגיב תמוגה גבוהה יחס רקמות, הסרת הרקמה מעוכלת מראש לשלב הפרדה והכללת מעכב ribonuclease לפתרון RNA וכתוצאה מכך. באמצעות אלה ושינויים אחרים, אנחנו בדרך כלל לבודד RNA עם רין יותר מ 7 שישמשו לניתוח ביטוי גנים שבשגרה.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

1. הכנה

השיטות הבאות לדבוק במדיניות שנקבעה על ידי הוועדה של המוסד לטיפול בבעלי חיים ושימוש (IACUC).

  1. מומלץ לבודד לא יותר מ -6 לבלב של עכבר בכל יום נתון. יש את כל מכשירי הניתוח נקיים וautoclaved, סט אחד לכל בעל חיים.
  2. לייבל כל microcentrifuge הצינורות. ארבעה 2 צינורות מיליליטר לכל בעל חיים.
  3. הנח 8 מיליליטר של מגיב תמוגה ב50 צינורות צנטריפוגה מיליליטר על קרח. הערה: בעוד שערכת הטיהור מגיעה עם מגיב פנול thiocyanate guanidine כי הוא מתאים לבידוד לבלב, מגיב תמוגה משמש בשל הכמויות הגדולות הנדרשות לבידוד.
  4. לוותר על 10 מיליליטר מהפתרונים הבאים ל15 צינורות צנטריפוגה מיליליטר לניקוי הלהבים של homogenizer. אתנול, 70% (2 צינורות), מים כיתה HPLC (צינור 1) ומים HPLC כיתה מכילים כ 200 μl של RNase משם או inactivator ribonuclease המקביל.

2. כירורגיה, Dissection לבלב ולתפעול

  1. הנח 1-2 מיליליטר של isoflurane לתוך צנצנת המכילה מגבות גזה כותנה או נייר. עכברים מונחים על פלטפורמה המונעת מהם להגיע למקור של isoflurane. הוספת isoflurane הטרי לצנצנת לפני הרדמת כל עכבר.
  2. מניח בעדינות את העכבר לתוך הצנצנת המכילה את isoflurane. מכסה את הצנצנת ולנטר את ההשפעות של ההרדמה על ידי בעדינות לסובב את הצנצנת קדימה ואחורה. בעל החיים הוא מורדם פעם אחת זה באינו מסוגל לעמוד ב'משלו.
  3. לאישור של הרדמה, להסיר את החיה מהצנצנת ולהחיל קמצוץ הבוהן משרד. אם העכבר אינו מגיב לקמצוץ הבוהן, המשך לשלב 2.5.
  4. אם העכבר מגיב לקמצוץ הבוהן, ולאחר מכן לחזור על השלבים 2.2-2.3.
  5. מניחים את החיה מורדמת על גבי הספסל במצב המועדים. לנקוע את צוואר הרחם של העכבר על ידי הצבת בחוזקה עם יד שמאל על צוואר הרחם של העכבר. לנוing יד ימין לתפוס את זנבו של העכבר ובמהירות למשוך כלפי מעלה בזווית של כ 45 ° ללנקוע את צוואר הרחם.
  6. לאבטח את הפגר למשטח (חתיכת רמה של קלקר מכוסה במגבות נייר) על ידי פירסינג כל אחת מארבע כפות רגליו של בעל החיים למשטח השטוח באמצעות מחטים תת עורי 25 מד.
  7. שימוש במכשירי ניתוח סטרילי, לחתוך את הבטן של העכבר פתוח ובמהירות להסיר את הלבלב של העכבר. השתמש במלקחיים כדי להחזיק את הלבלב ולחתוך אותו מהטחול והמעי הדק באמצעות מספריים האביב. היזהר לא למתוח את הלבלב במהלך ההסרה מהעכבר. שיבוש של הרקמה יכול לשחרר ribonuclease. הערה: הזמן שנדרש כדי להסיר את הלבלב של העכבר הוא קריטי. אדם מיומן אמור להיות מסוגל לנתח את הלבלב בכ -1 דקות או פחות.
  8. הנח את הלבלב כולו לתוך צינור 50 מיליליטר המכיל 8 מיליליטר של מגיב תמוגה קר כקרח. שווי הצינור ובקצרה לנער לטבול tissue למגיב ולהמשיך לשלב הבא ללא דיחוי. היחס של מגיב תמוגה לרקמה הוא קריטי. ראה סעיף תוצאות עבור השוואה של שלמות RNA מבודדת באמצעות כרכים שונים של מגיב תמוגה.
  9. Homogenize במשך 5 שניות. חשוב ללחוץ על להבי homogenizer לחלק התחתון של צינור צנטריפוגות כדי לאפשר לרקמות להיות מורמות אל תוך הלהבים להומוגניזציה יעילה.

3. הסרת רקמות מעוכלת

שים לב: בעקבות הומוגניזציה, פיסות קטנות של רקמה תישאר במגיבה תמוגה. זה יותר חשוב לי lyse הרקמה להשאיר כמה רקמות מעוכלות ולא מעל homogenizing והשפלה סיכון של RNA במהירות.

  1. העברה 2 מיליליטר של מגיב תמוגה מכיל לבלב lysed לצינור microcentrifuge 2 מיליליטר. לאסוף שני צינורות microcentrifuge של homogenate לבידוד. מחק את homogenate שנותר או בחנות ב -80 מעלות צלזיוס למחקרים עתידיים.
  2. סנטrifuge ב 4 ° C, G 12,000 × למשך 5 דקות עד גלולה הרקמות מעוכלת. זהו צעד קריטי כמו שריד של רקמה מעוכלת לפתרונות הבאים של RNA צפוי לזהם את המדגם עם ribonuclease (שלב 5.13).
  3. העברה 1 מיליליטר של supernatant לתוך צינור microcentrifuge 2 מיליליטר. להמשיך בבידוד באופן מיידי ולאחסן את הצינור לשכפל ב -80 ° C לשימוש עתידי. מניחים את כל הצינורות המכילים homogenate על קרח רטוב תוך שתמשיך לשלב הבא.
  4. השלך את מגיב תמוגה נותר לתוך כלי קיבול פסולת כימית מתאים.

4. ניקוי של להבי Homogenizer

  1. לפני שתמשיך לבידוד הבא, לנקות את להבי homogenizer ידי הצבת אותם ב10 מיליליטר של 70% אתנול. הפעל את homogenizer במשך לכ20 שניות כדי להסיר כל גושים של רקמה שעלולה להיתפס בלהבים.
  2. השתמש קצה 200 pipet μl כדי להסיר כל חתיכות שתישארנה בלהבי homogenizer.
  3. חזור על שלב 4.1 במים, inactivator RNase הכללי ו70% אתנול. ייבש את פיר homogenizer עם קים נקייה לנגב.
  4. חזור על שלב 2.1 לבידוד הלבלב של בעלי החיים שנותרו, RNA שמירה מבודד מכל חיה נפרדת ולא איגום RNA.

5. בידוד RNA

הסעיף הבא הוא זהה לפרוטוקול ערכת הטיהור. היתרון של ערכת הטיהור הוא שזה יבודד רנ"א הכל כולל RNA הקטן.

  1. אם אתם משתמשים בפתרון homogenate קפוא, להפשיר על קרח רטוב ולתת לעמוד על RT במשך 5 דקות.
  2. הוסף 200 μl של כלורופורם, מכסה את הצינור ולנער במרץ ביד ל15 שניות. בואו הצינור עומד על RT במשך 2-3 דקות.
  3. צנטריפוגה במשך 15 דקות ב 12,000 XG, 4 ° C.
  4. מעביר את השכבה העליונה המימית לתוך צינור microcentrifuge. הוסף 1.5 כרכים של isopropanol ומערבבים היטב על ידי pipetting מעלה ומטה מספר פעמים.
  5. העבר עד 700 μl של המדגם לעמודת ספין שממוקם בצינור אוסף 2 מיליליטר. סגור את המכסה וצנטריפוגות ב 8,000 XG במשך 15 שניות ב RT.
  6. מחק את הזרימה דרכו.
  7. חזור על שלבים 5.5-5.6, תוך שימוש בשאר המדגם.
  8. הוסף 700 μl הצפת RWT לעמודת הספין. צנטריפוגה במשך 15 שניות ב8,000 x גרם. מחק את הזרימה דרכו.
  9. Pipet 500 μl הצפת הרשתית לעמודת הספין. צנטריפוגה במשך 15 שניות ב8,000 XG לשטוף את העמודה. מחק את הזרימה דרכו.
  10. הוסף 500 μl הצפת הרשתית לעמודת הספין. צנטריפוגה למשך 2 דקות ב 8,000 XG לייבש את העמודה.
  11. העבר את טור הספין לצינור microcentrifuge 1.5 מיליליטר. Pipet 80 ללא מים ribonuclease μl ישירות על גבי קרום טור ספין. צנטריפוגה 1 דקות ב8,000 XG לelute RNA.
  12. הוספת מעכב RNase μl 1 לפתרון RNA. אחסן ב-80 ° C או להמשיך ל5.13.
  13. כדי לאמת את השלמות של RNA, לחשב את conce RNA הראשוןיחס ntration ו260/280 באמצעות ספקטרופוטומטר.
  14. לדלל חלק מפתרון RNA כ 500 ng / μl עם מים כיתה ביולוגיה מולקולרית.
  15. לקבוע את Integrity RNA (כלומר, רין) באמצעות ניתוח אלקטרופורזה נימים. כ 5 μl של פתרון RNA הוא מספיק לניתוח.
  16. Aliquot פתרון RNA (ראה איור 2) ולאחסן ב -80 ° C.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

תשואת רנ"א הכל מ1 מיליליטר של homogenate תמוגה היא 20-40 מיקרוגרם. יחסי 260/280 OD הם בדרך כלל סביב 2.0 ורין הם גדול יותר באופן עקבי מאשר 7.0. אם רין הוא ≤ 6, הבידוד צריך להיות חוזר ונשנה. לפעמים, רין שהוא גבוה יותר מאשר 8.0 מושגת.

שתי שיטות הנפוצות ביותר של הרדמת חסד עכברים לפני ההסרה של הלבלב הן חנק CO 2 או שאיפה של isoflurane. שני טכניקות ואחריו נקע בצוואר הרחם. כיוון שניתן כי זמן הסוכן הכימי ו / או...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

בידוד RNA מן הרקמות הribonuclease עשירים מהווה אתגר גדול לניסויים בביולוגיה מולקולריים. ריאגנטים וערכות שונים זמינים באופן מסחרי המבוססים בעיקר על שיטת thiocyanate guanidine פנול של מיצוי RNA. thiocyanate guanidine denatures חלבון ובכך מפחית את הפעילות של ribonuclease. עם זאת, הגודל העצום של ribonuclease בלבלב דורש שינויים נוספים לפרוטוקולים סטנדרטיים של בידוד RNA. פרוטוקול הוא דיווח כאן, המבוסס על שיטת thiocyanate guanidine הסטנדרטי עדיין מכיל כמה שינויים קריטיים כמו גם טיפים לבי...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

למחברים אין מה לחשוף.

תודות

אנו מודים Jianhua לינג, ריימונד מקדונלד, גאלווין סוויפט, מישל גריפין, פול Grippo וSatyanarayana Rachagani להערות, הצעותיהם מועילות ושיתוף של הפרוטוקולים שלהם. עבודה זו נתמכה על ידי U01CA111294 מענק ופרס פיתוח רעיון מהביצוע העצמי תכנית המחקר של אוניברסיטת מדינת אוהיו.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
הספק Gen 500 פישר סיינטיפיק14-261-03 הומוגנייזר
5424REppendorfמיקרוצנטיפוגה מקוררת
טריזול מגיבInvitrogen15596018מגיב ליזה
סטודנט ואנאס מספריים אביבפישר91500-09 השתמש לחיתוך לבלב מרקמות מחוברות
מספריים כירורגיים, 6 אינץ'פישר08-951-20השתמש לחיתוך מלקחיים קהים של עכבר
פישר1381239השתמש להחזקת הלבלב בזמן ניתוח
איזופלורן USPAbbott Labs4/8/5210הרדמה
החוצה (40 U/µ l)Invitrogen10777-019Rnase inhbitor
Rnase AwayAmbion10328-011כללי Rnase inactivator
HPLC כיתהמים פישרW5-4לשטיפת להבי הומוגנייזר
ביולוגיה מולקולרית כיתה מיםHycloneSH30538.03Elution of RNA
miRNeasy Mini kitQiagen217004Purification Kit
2 מ"ל צינורות מיקרוצנטריפוגה, מוסמכים ללא Rnase Dnaseארה"ב פלסטיק מדעי1620-2700
15 מ"ל צינורות צנטריפוגהפלקון352099
70% אתנולפישר
100% אתנולפישר
200 ומיקרו; l קצות פיפטRaininGPL200Fלניקוי להבי הומוגנייזר
כלורופורםפישר BP1145-1
NanodropThermoND-1000ספקטרופוטומטר
ביואנלייזרמנתח אלקטרופורזה נימי זריזי
RNA RNAlaterAmbionRNA מגיב ייצוב 
RNeasy  עמודות ספין QiagenSpin  כחלק מערכת miRNeasy Mini
עכבריםChales RiverStrain C57BL/6גילם נע בין 4 ל-12 חודשים.  
עכברים זן מעבדת ג'קסון129גילם נע בין 4 ל-12 חודשים.  
רנז למדידת שלמותטורים של

מקורות

  1. Chen, C., Ridzon, D. A., Broomer, A. J., Zhou, Z., Lee, D. H., Nguyen, J. T., Barbisin, M., Xu, N. L., Mahuvakar, V. R., Andersen, M. R., et al. Real-time quantification of microRNAs by stem-loop RT-PCR. Nucleic Acids Res. 33, e179(2005).
  2. Chirgwin, J. M., Przybyla, A. E., MacDonald, R. J., Rutter, W. J. Isolation of biologically active ribonucleic acid from sources enriched in ribonuclease. Biochemistry. 18, 5294-5299 (1979).
  3. Chomczynski, P., Sacchi, N. Single-step method of RNA isolation by acid guanidinium thiocyanate-phenol-chloroform extraction. Anal Biochem. 162, 156-159 (1987).
  4. Griffin, M., Abu-El-Haija, M., Abu-El-Haija, M., Rokhlina, T., Uc, A. Simplified and versatile method for isolation of high-quality RNA from pancreas. Biotechniques. 52, 332-334 (2012).
  5. Iyer, V. R., Eisen, M. B., Ross, D. T., Schuler, G., Moore, T., Lee, J. C., Trent, J. M., Staudt, L. M., Hudson Jr, J., Boguski, M. S., et al. The transcriptional program in the response of human fibroblasts to serum. Science. 283, 83-87 (1999).
  6. Lenstra, J. A., Beintema, J. J. The amino acid sequence of mouse pancreatic ribonuclease. Extremely rapid evolutionary rates of the myomorph rodent ribonucleases. European journal of biochemistry FEBS. 98, 399-408 (1979).
  7. Mullin, A. E., Soukatcheva, G., Verchere, C. B., Chantler, J. K. Application of in situ ductal perfusion to facilitate isolation of high-quality RNA from mouse pancreas. Biotechniques. 40, 617-621 (2006).
  8. Rio, D. C., Ares, M., Hannon, G. J., Nilsen, T. W. RNA A Laboratory Manual. , Cold Springs Harbor Laboratory Press. Cold Springs Harbor, NY. (2011).
  9. Streit, S., Michalski, C. W., Erkan, M., Kleeff, J., Friess, H. Northern blot analysis for detection and quantification of RNA in pancreatic cancer cells and tissues. Nat Protoc. 4, 37-43 (2009).
  10. Zmuda, E. J., Powell, C. A., Hai, T. A method for murine islet isolation and subcapsular kidney transplantation. Journal of Visualized Experiments JoVE. , (2011).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

גואנידין תיוציאנטריאגנט ליזיסמספר שלמות ה-RNAפרוטוקול פנול גואנידיןמעכב ריבונוקלאזהומוגניזציה של רקמהפרוטוקול סנטריפוגציה