הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

בידוד של myofibroblasts מעכבר והוושט אדם

11K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/52215

⸱

18 בינואר 2015

במאמר זה

סיכום

אנו מציגים פרוטוקול ליצירת תרביות ראשוניות של תאי סטרומה בוושט עכבריים ואנושיים עם פנוטיפ מיופיברובלסטים. לתאים מתורבתים יש מורפולוגיה בצורת ציר, מבטאים α-SMA ווימנטין, וחסרים סמני פני תא אפיתל, המטופויאטי ואנדותל. ניתן להשתמש בתאי סטרומה מאופיינים במחקרים פונקציונליים של אינטראקציות אפיתל-סטרומליות.

תקציר

myofibroblasts העכברי והוושט אנושי נוצרים באמצעות עיכול אנזימטי. ילוד הוושט עכברי (ישן 8-12 יום) שנקטפו, טחון, שטף, ונתונים לעיכול אנזימטי עם collagenase וdispase במשך 25 דקות. דגימות כריתת הוושט אדם ניטלו ממנו propria muscularis וadventitia והרירית הנותרת טחונות, ונתונים לעיכול אנזימטי עם collagenase וdispase עד 6 שעות. תאים בתרבית להביע α-SMA וvimentin וdesmin המפורש חלש או בכלל לא. תנאי תרבות הם לא תורמים לצמיחה של אפיתל, דם, או תאי האנדותל. טוהר תרבות הוא אישר עוד יותר על ידי הערכת cytometric זרימה של ביטוי סמן תא שטח של hematopoietic המזהם הפוטנציאלי ותאי האנדותל. הטכניקה המתוארת היא פשוטה ותוצאות בדור של אי-hematopoieitc, תאי סטרומה שאינם עולה בקנה אחד אנדותל. מגבלות של שיטה זו הן אינהרנטי לשימוש בתרבויות עיקריות בלימודי ביולוגיה מולקולריים, כלומר, השתנות בלתי נמנעות נתקלו בין תרבויות הוקמו על פני עכברים או בני אדם שונים. תרבויות עיקריות עם זאת הן השתקפות נציג יותר של מדינת in vivo בהשוואה לשורות תאים. שיטות אלה מספקים גם חוקרים היכולת לבודד ותאי סטרומה התרבות ממצבים קליניים וניסויים שונים, המאפשר השוואה בין קבוצות. גם תאי סטרומה הוושט מאופיינים ניתן להשתמש במחקרים תפקודיים חוקרים אינטראקציות אפיתל-סטרומה בהפרעות בושט.

מבוא

אינטראקציות אפיתל-סטרומה מעורבות ברגולציה של מגוון רחב של פונקציות במערכת עיכול כוללים התחדשות רירית, תיקון, סיסטיק, והיווצרות סרטן 1,2. אינטראקציות אלה נחקרו הטובים ביותר במעי הדק ובמעי הגס ועלולות דומה משחקות תפקיד בהפרעות ברירית הוושט 3. תת-אוכלוסייה של myofibroblasts תאי סטרומה מעי הגס וכינה הודגמה להשתתף בתיווך פגיעה ברקמות, דלקת ולתקן 4,5. במערכת עיכול דיסטלי, תאי ציר בצורה הבאות נמצאים בסמוך לקרום במרתף בממשק שבין propria האפיתל וlamina ומוגדרים כα-SMA וvimentin חיובי, פאן-cytokeratin השלילי, וחולשה חיובית או שלילי desmin 5.

סטרומה הוושט לא התאפיינה בקפדנות ברמה תאית או מולקולרית. העבודה שלנו בוושט העכברי עוברת דהα-SMA monstrated תאים וvimentin בסטרומה הוושט, לעתים subjacent לאפיתל קשקש 6. אינטראקציות אפיתל-סטרומה היו מעורבות בהפרעות ברירית הוושט כגון פגיעת גסטרו-הוושט תיווך 6 ושט אאוזינופילית 3. הגבלות fibrotic גם סיבוך ידוע של תאי פציעה וסטרומה הוושט היה מעורבת בפתוגנזה של סיסטיק עיכול. בידוד של תאים אלה יסייע להשיג את המחקרים הדרושים כדי לחקור מסלולי איתות מופרעים.

הגשה זו מספקת את הטכניקות הדרושות כדי להקים תרבויות עיקריות של myofibroblasts α-SMA החיובי, vimentin החיובי כך פערים קיימים בידע לגבי מסלולי איתות תיווך אינטראקציות אלה ניתן לטפל. הטכניקה המתוארת שמשה בהצלחה על ידי מהחברים להקים myofibroblasts העיקרי עכברי המעי הגס 7 וfurther מותאם להקמת עכברית 6 ותאי סטרומה אדם כמו myofibroblast-הוושט.

במסמך זה אנו מתארים תנאים הנדרשים כדי להקים ולאפיין תרבויות אלה הוקמו מעכבר או וושט אדם לפני השימוש במחקרים תפקודיים עתיד. ניתן לגדל תרבויות ומנוצלות עד ליום 15 במעברים. בידוד והקמת התרבויות העיקריות באמצעות השיטות מפורטות להלן מייצר תאי סטרומה עם פנוטיפ myofibroblast; α-SMA, vimentin חיובי, וחולשה חיובי או שלילי לdesmin, וcytokeratin שלילי. פנוטיפ זו שונה מהפנוטיפ של פיברובלסטים הוושט שהיא בעיקר vimentin חיובי, α-SMA השלילי 3 או הפנוטיפ השלילי החיובי, vimentin α-SMA של muscularis mucosae 6.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

הפרוטוקול לביצוע ניסויים בבעלי חיים, את הרציונל ומטרות של המחקר, הוגשו ואושר על ידי אוניברסיטת קליפורניה המוסדית הטיפול בבעלי חיים בדרום וועדת שימוש.

הפרוטוקול להקמת תרבויות עיקריות מדגימות esophagectomy אדם דה-מזוהים אושר על ידי האוניברסיטה של ​​דרום קליפורניה Institutional Review Board.

1. השג עכבר או וושט אדם

  1. להשיג עכבר וושט:
    1. להרדים את העכבר ישן 8-12 יום עם 2% ממנת יתר נשימתית isoflurane ואחריו נקע בצוואר הרחם.
    2. הצמד את החיה למטה עם בטן כלפי מעלה ולהרטיב את פני השטח הגחון עם אתנול 70%. עם מלקחיים, לתפוס ולהרים את העור הקדמי לפתיחת השופכה עם מלקחיים. השתמש במספריים כירורגית ישר סטנדרטיים לחתוך לאורך קו האמצע הגחון מפתיחת השופכה לסנטר. היזהר לחתוך רק את העור.
    3. עושה חתך משופכת פתיחה כלפי מטה עד הברך בשני הצדדים של החיה, ויצר במהופך "Y". לעשות חתך נוסף בשני הצדדים של החיה לאורך כלוב הצלעות.
    4. לקלף בזהירות את העור בשני הצדדים, את של הצפק הבסיס והצלעות, ולהניח לצדדים. לבחון את כלוב הצלעות מעל חלל בית החזה ואת הצפק שמעל חלל הבטן.
      1. הרם את הצפק עם מלקחיים ולחתוך אותו לכלוב צלעות והסרעפת, מצביע כלפי מעלה מספריים כדי למנוע נזק לתכולת בטן. בעדינות להרים את האונה השמאלית של הכבד, לחשוף את הבטן הבסיסית, צומת הוושט-קיבה וחלק הבטן של הוושט.
    5. השתמש במספריים כירורגית autoclaved לחתוך את עצם החזה וצלעות לאורך קו האמצע עד חגורת צוואר הרחם. מספריים נקודה כלפי מעלה כדי למנוע נזק לתכולת בית החזה. באופן מלא לחשוף את התוכןחלל בית חזה על ידי משיכת כלוב הצלעות לצדדים.
    6. הוצא בעדינות את הלב ושני האונות של הריאות. ספוג בדם עודף עם Q-טיפים. הוושט החזי אחורי צר, גמיש צינור משקר לקנה הנשימה והקדמי לחולית בית החזה.
      הערה: הוושט יכול להיות קשה לזהות בילודים עכבריים. לוקליזציה של צומת הוושט-קיבה גורמת זיהוי הוושט פשוט.
    7. בצע בזהירות את הוושט מהקיבה, לנתח כלי דם, השומן מסביב ולפדר עד מוצא הוושט בחלל צוואר הרחם כל הדרך. מספריים כירורגיות עם קצה קהה עבודה הטובה ביותר למטרה זו.
    8. לכרות כל אורכו של הוושט והמקום בפתרון 'הנקס המאוזן מלח (HBSS) לעיבוד נוסף שיפורט להלן. הסר חלק מהקיבה למטרות נטייה אם תרצה בכך.
      הערה: בשל גודל רקמה קטן, הפרדת propria muscularis מהשריריםהוא הרירית אינה ברת השגה בושט ילוד עכברי וכל הוושט הוא נתון לעיבוד מתואר להלן.
  2. להשיג וושט אדם:
    1. לשטוף דגימות כריתת הוושט (בדרך כלל 5 סנטימטר או פחות) עם HBSS ולהסיר את כל רקמה, שומן, כלי דם או חיבור מצורפים.
    2. לכרות חלק של הדגימה ומניח בפורמלין לבדיקה היסטולוגית עתיד אם תרצה בכך.
    3. הפרד את הרירית שנותרה מpropria muscularis הבסיסי על ידי נתיחה חדה.
    4. חותך רירית לרסיסי סנטימטר משנה ובכפוף לפרוטוקול המתואר להלן.
      הערה: כריתות וושט אדם יכולה להיות מאוחסנת בPBS עד 6 שעות לפני העיבוד המתואר להלן. המקור של דגימות esophagectomy יכתיב גודל דגימה ויהיה תלוי במעבדה.

2. תאים בודד Murine ואדם הוושט סטרומה

  1. בודד תאי סטרומה הוושט fעכברי rom ורקמה אנושית על ידי שילוב של מערכת עיכול מכאנית והאנזימטית.
    1. באופן מכאני על ידי לעכל קוצץ את הרקמה עם מספריים ושטיפות מרובות עם HBSS. אנזימי עיכול על ידי דוגרים הרקמה עם 300 U / ml XI collagenase ו 0.1 מ"ג / מיליליטר dispase במשך 25 דקות (רקמה עכברית) או לתקופה של עד 6 שעות (רקמה אנושית). ודא שמכשירים המשמשים למתייפייף כבר autoclaved ומעוקר.
      הערה: Collagenases הם אנזימים המפרקים את הקולגן, חלבון מטריצה ​​תאי אחראי על החזקת רקמות בעלי חיים יחד. יש Collagenase XI פעילות collagenase גבוה וזכה להצלחה בפרוטוקול בידוד זה. Dispase היא אנזים חיידקים עם פעילות ניתוק proteolytic קלה ששומר פעילות קרום תא, והוא משמש בשילוב עם collagenase כאנזים המשני.
    2. הנח שברי רירית המתקבלים מעכבר או רקמה אנושית ב1.7 מיליליטר מיקרו צנטריפוגות או 5 צינורות מיליליטר בהתאמה, המכילים HBSS. רקמת בשר טחון נוסףל2-3 חתיכות מ"מ באמצעות מספריים עם רוחב קצה פתוח שיתאים לתוך צינורות המתאימים. לאפשר מספיק זמן כדי לאפשר לברים ברירית הוושט למשקעים התחתון של הצינור.
    3. לאט למזוג HBSS, נזהר שלא לבטל את הרקמה בטעות. החלף עם HBSS הטרי הבא על ידי טלטול עדין. לחלופין, להסיר את HBSS עם טפטפת מיליליטר 1.
    4. לשטוף רקמות באופן זה בסך הכל 8 פעמים עם רעד עדין בין שוטף מאפשר זמן לברי הוושט למשקעים בין כל שטיפה.
      הערה: רקמה אנושית תדרוש יותר מיותרת שרקמת עכבר ילוד.
  2. דגירה רקמה עכברית עם 300 XI collagenase ו 0.1 מ"ג / מיליליטר dispase במשך 25 דקות על שייקר נדנדה להגדיר במהירות איטית בטמפרטורת חדר U / ml.
    1. דגירה רקמה אנושית עם 300 collagenase U / ml XI ו 0.1 מ"ג / מיליליטר dispase עד 6 שעות, על שייקר נדנדה להגדיר במהירות איטית בטמפרטורת חדר.
      הערה: זמינות של esopha אדםגאס הוא משתנה. רירית הוושט אדם הודגרו עם אנזימים לתקופה של עד 6 שעות בתוצאות דור מוצלח של תרבויות עיקריות.
  3. לאחר עיכול אנזימטי, רקמת בשר טחון נוסף עם מספריים וצנטריפוגות ב XG 200 עבור 10 דקות.
  4. בטל supernatant. העבר את הכדור, בהיקף של השעיה תא מעורבת לצינור 5 מ"ל ולשטוף 5 פעמים בנשר בינוני השתנה Dulbecco (DMEM) בתוספת 2% סורביטול לחסל תאים ופסולת nonviable.
  5. תאי זרע ב6-גם צלחות ותרבות בDMEM עם סרום 10% שור עוברי (FBS), 10 מ"ג / מיליליטר אינסולין, 10 מיקרוגרם / מיליליטר transferrin, 10 מיקרוגרם / מיליליטר גנטמיצין, ו -2 ng / ml גורם הגדילה באפידרמיס (EGF) . מסנן אבק (0.22 מיקרומטר) את כל המרכיבים מלבד EGF אשר ניתן להוסיף לאחר סינון. להפיץ תאים המתקבלים מדגימות כריתה אנושיות בין 6 צלחות היטב מרובות, תלוי בגודל הכריתה.
  6. ברגע בארות הן 80% ומחוברות, תאים חסיד מעבר לT25 צנצנותינו0.05% טריפסין / חומצת ing ethylenediaminetetraacetic (EDTA). לנטרל עם תקשורת וספין ב 400 x גרם.
    1. למעבר 6 גם בבקבוק T25, תאי מעבר בביחס 1: 1. ניתן passaged צלוחיות ומחוברות T25 של 1: 2 או 1: 3 יחס. למעבר מבקבוק T25 לבקבוק T75, להשתמש ביחס של 1: 1. תקשורת שינוי כל 2-3 ימים, ללא קשר לספינה.
    2. לגדל תאים ב 37 מעלות צלזיוס בחממת 5% humidified CO 2 ותרבות בתקשורת myofibroblast שתוארה לעיל.
      הערה: תאי אפיתל אינם שורדים בתנאי התרבות או מעבר הללו. תאים המשמשים לאפיון ובמחקרים שתוארו להלן בין הקטעים 5 ו -15.
    3. קריו לשמר תאים בנוזל N 2 על ידי הוספת 10% sulfoxide דימתיל לתקשורת myofibroblast.

3. תאים מאפיינים Murine ואדם הוושט סטרומה

  1. בדוק את המורפולוגיה של תאים עם מיקרוסקופ הפוכה. שים לב לכישור-הצורהמורפולוגיה של תאים חסיד (איור 1).
  2. לאפיין תאים בתרבית על ידי הערכה של סמני cytoskeletal הבאים: α-SMA, vimentin, desmin, וcytokeratin. תאי סטרומה עם פנוטיפ כמו myofibroblast-להביע סמני myofibroblast cytoskeletal α-SMA וvimentin (איור 2).
    1. להבחין נוסף תאי סטרומה בתרבית מתאי שריר, immunostain לdesmin. כדי לבצע immunostaining על תאים בתרבית, צלחת 1.5 x 10 4 תאים בשקופיות קאמריות 4 היטב ולגדול בתקשורת myofibroblast למשך 24 שעות. תאי סטרומה עם פנוטיפ כמו myofibroblast-יהיו ביטוי desmin חלש או לא קיימים. תאי סטרומה חסרי ביטוי של הפאן-cytokeratin סמן אפיתל (מידע לא מוצג).
      הערה: הערכה של תרבויות כוללת הערכה של סמני cytoskeletal על ידי סמני immunocytochemistry ופני תא על ידי הזרימה cytometry. Immunocytochemistry משמש כשיטת העיקרית של אפיון כלשעברפרופיל pression של חלבוני cytoskeletal הוא ייחודי לפיברובלסטים, myofibroblast או תא שריר. Cytometry זרימה קובעת טוהר תרבות על ידי הערכת ביטוי פני תא של אפיתל, אנדותל, וסמני תאי hematopoietic. CD90 הוא מועיל כשיטת משלים של זיהוי תאי סטרומה אדם כפי שהוא בא לידי ביטוי בשני fibroblasts וmyofibroblasts האנושיים. CD90 הוא לא מועיל באפיון של תאי סטרומה עכבריים כפי שבאו לידי ביטוי גם על ידי תאי T עכבריים.
  3. לאחר תאים מגיעים 60% מפגש, לשטוף שקופיות עם פוספט שנאגרו מלוח (PBS) ולתקן עם מתנול. דגירה תאים במתנול במשך 10 דקות ב -20 מעלות צלזיוס, ולאחר מכן לאחסן בPBS על 4 מעלות צלזיוס עד לשימוש.
  4. עקוב פרוטוקול immunostaining סטנדרטי.
  5. בקצרה, לפני החלת הנוגדן הראשוני, לחסום את התאים הקבועים עם goatserum 5% ב- PBS. לדלל נוגדנים ראשוניים ומשניים ב -5% בסרום עז גם כן.
    1. לצורך זיהוי של α-SMA וvimentin, השתמש בהנוגדנים הבאים וריכוזים: עכבר מאב לα-SMA ב 1: 250 דילול והארנב PAB לvimentin ב 1: 500 דילול.
    2. דגירה עם נוגדן ראשוני בטמפרטורת חדר למשך הלילה ב 4 ° C, לשטוף 3 פעמים עם PBS ולהוסיף נוגדנים משני עכבר אנטי עיזים מצומדות Rhodamine בדילול של 1: 200 וCy2 ארנב אנטי עיזים מצומדת בדילול של 1: 1,000 לשעה 1 בטמפרטורת חדר.
    3. גרעיני Counterstain עם 4 ', 6-Diamidino-2Phenylindole (DAPI) בריכוז של 1 מיקרוגרם / מיליליטר 1 דקות ולאחר מכן לשטוף עם PBS. לנתח שקופיות עם מיקרוסקופ הפוכה.
  6. להקים טוהר תרבויות על ידי בדיקה של תאי הוושט עכבריים ואנושיים לhematopoietic (CD45) והאנדותל (CD31) סמנים פני תא על ידי הזרימה cytometry (איור 3). לאפיין תאים אנושיים עוד יותר על ידי ביטוי של CD90 הסמן פני תא סטרומה.
    הערה: CD90 לא יכול לשמש לזיהוי תאי סטרומה עכבריים כcel T העכבריls גם להביע CD90.
    1. ניתוק תאי סטרומה הוושט עכבר בתרבית מתרבות צלוחיות על ידי טיפול בתא אינו אנזימטית דיסוציאציה פתרון על 37 מעלות צלזיוס למשך 10 דקות, לשטוף עם חיץ FACS פעמיים, נספר ומוכתם עם FITC-CD45 וAPC-CD31 עם פקדי isotype רלוונטיים, על פי לנהלי צביעה סטנדרטיים.
    2. איסוף תאים באמצעות Calibur FACS ולנתח נתונים עם תוכנת FlowJo. לפני תאים מכתימים, לייעל נוגדנים ולכייל ריכוזים באמצעות פקדי isotype, טחול עכבר רגיל, ותאי מח עצם.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

תאי סטרומה הוושט המבודדים באמצעות עיכול מכאני והאנזימטית לראשונה מצופים ותרבותי ב6 צלחות גם. בדיקה של תאים עם מיקרוסקופ הפוך בתוך שעות של ציפוי מדגימה השעיה תא מעורבת חסיד רופף לתחתית הצלחת (איור 1 א). במהלך שעות הבאות 24, תאים דמויי כישור בתקיפות חסיד לתחתית הצלחת הם נצפו ירי מההשעיה המעורב התא (איור 1) .These תאי הנבטה מכסים את כל השטח של באר בתוך 5 ימים וניתן passaged בהצלחה, שמירה על מורפולוגיה לפחות 15 קטעים. תאים חסיד דמוי כישור הם נצפו בצפי...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

הטכניקות לדור התרבות העיקרית הן בדרך כלל דומות בעת שימוש ברקמה עכברית או אדם עם זמנים וגנדרניים ועיכול מותאם לגודל רקמה. הניסיון שלנו עם רקמה עכברית מצביע על כך ששימוש בשיטות שתוארו לעיל לגרום באופן עקבי בהקמה מוצלחת של תרבויות עיקריות. צעדים קריטיים בפרוטוקול כוללים עיקור של ציוד כירורגי ולאחר טכניקות סטרילי סטנדרטיים של תרבית רקמה. הגיל של העכברים הוא גם שלב קריטי. 8 - ישנים ילודים יום 12 בעקביות להניב תרבויות עיקריות מוצלחות. תאי סטרומה המבודדים מילודים צעירים לא היו לא נוצרו ב...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

עבודה זו נתמכת על ידי NIH / NCI K08CA153036-01A1 (AS), AGA-ג'נרל מילס בל מכון לבריאות ותזונה מחקר Scholar פרס בפיזיולוגית גוט ובריאות (AS) וקרן פיילוט פרס רייט (AS).

תודות

למחברים אין מה לחשוף.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
ריאגנטים לתרבית רקמות
HBSSSigma AldrichH6648
DispaseGIBCO, Invitrogen17105-041
קולגנאז XIסיגמא-אולדריץ'C9407
DMEMGIBCO, Invitrogen11965-092
סורביטולסיגמא-אולדריץ'S1876
FBSסיגמא-אולדריץ'F42442
טרנספריןרוש10-652-202-001
טריפסין/EDTAקורנינג25-052-Cl
גורם גדילה אפידרמיססיגמא-אולדריץ'E9644
ריאגנטים לצביעה חיסונית
סרום עיזיםסיגמא אולדריץ'G9023
עכבר mAB ל α-SMA abcamab7817
ארנב pAB לווימנטיןabcamab45939
Cy2 מצומד עז אנטי ארנבג'קסון ImmunoResearch111-225-144
DAPIסיגמא-אולדריץ'D8417
CD31 מצומד ל-eFluor 450eBioscience48-0319-41
CD90 מצומד ל-APCeBioscience17-0909-41
Annexin V ו- 7AADBD Pharmigen559763
עכבר Fc בלוק עבור CD16 / CD32BD Pharmigen2136662
ציוד
צינור 5 מ"לEppendorf30108310
מיקרוסקופ הפוךMoticAE31
Biosafety ארון וחממותNuairehttp://www.nuaire.com/products/
4-well מגלשות תאThermo Scientific177437
צנטריפוגה מקוררתEppendorf5810R
מערכת סינון מונעת ואקום אולימפוסGenesee Scientific25-227
מיקרוסקופ פלואורסצנטיניקוןEclipse TE300
צלחות 6 בארותקורנינג3516
T25 צלוחיותTRP90026
T75 צלוחיותקורנינג43064
מספריים
מלקחיים
Q-Tips חד טיפיםקנדל540500
תוכנה
תוכנת Metamorph (התקנים מולקולריים)מולקולריים
FACSCAliburBD Bioscience
FACSverseBD Bioscience
לדיסקציהלדיסקציההתקנים

מקורות

  1. Stappenbeck, T. S., Miyoshi, H. The role of stromal stem cells in tissue regeneration and wound repair. Science. 324 (5935), 1666-1669 (2009).
  2. Powell, D. W., Pinchuk, I. V., Saada, J. I., Chen, X., Mifflin, R. C. Mesenchymal cells of the intestinal lamina propria. Annu Rev Physiol. 73, 213-237 (2011).
  3. Rieder, F., et al. T-Helper 2 Cytokines, Transforming Growth Factor beta1, and Eosinophil Products Induce Fibrogenesis and Alter Muscle Motility in Patients With Eosinophilic Esophagitis. Gastroenterology. 146 (5), 1266-1277 (2014).
  4. Powell, D. W., et al. Paracrine cells important in health and disease. The American Journal of Physiology. 277 (1 Pt. 1), C1-9 (1999).
  5. Powell, D. W., et al. Intestinal subepithelial myofibroblasts. The American Journal of Physiology. 277 (2 Pt. 1), C183-201 (1999).
  6. Shaker, A., et al. Stromal cells participate in the murine esophageal mucosal injury response. American Journal of Physiology Gastrointestinal and Liver Physiology. 304 (7), 662-672 (2013).
  7. Shaker, A., et al. Epimorphin deletion protects mice from inflammation-induced colon carcinogenesis and alters stem cell niche myofibroblast secretion. The Journal of Clinical Investigation. 120 (6), 2081-2093 (2010).
  8. Kalabis, J., et al. Isolation and characterization of mouse and human esophageal epithelial cells in 3D organotypic culture. Nature Protocols. 7 (2), 235-246 (2012).
  9. Khalil, H., Nie, W., Edwards, R. A., Yoo, J. Isolation of primary myofibroblasts from mouse and human colon tissue. Journal of Visualized Experiments. (80), (2013).
  10. Rieder, F., et al. Gastroesophageal reflux disease-associated esophagitis induces endogenous cytokine production leading to motor abnormalities. Gastroenterology. 132 (1), 154-165 (2007).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

בידוד מיופיברובלסטיםתאי סטרומה של הוושטעיכול אנזימטיקולגנז קולגנזציטומטריה זרימתיתאימונוהיסטוכימיהתרבית תאים ראשוניתסממני שטח תאתאים בעלי צורת כישכורעיכול רקמה