הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

ההדמיה PET / MRI בו זמנית בעכבר מוחין היפוקסיה-איסכמיה

11.8K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/52728

⸱

20 בספטמבר 2015

 ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Biomedical Engineering, University of California, Davis, 2Nuclear Magnetic Resonance Facility, University of California, Davis, 3Biomedical Imaging, Genentech, Inc, 4Department of Radiology, University of California, Davis

במאמר זה

סיכום

השיטה המוצגת כאן משתמשת בטומוגרפיה פליטת פוזיטרונים בו זמנית והדמיה בתהודה מגנטית. במודל היפוקסיה-איסכמיה מוחית, שינויים דינמיים בחילוף חומרי דיפוזיה וגלוקוז להתרחש במהלך ולאחר פציעה. הנזק מתפתח וirreproducible במודל זה מחייב רכישה בו זמנית אם נתוני הדמיה רבי מודלי משמעותיים הם שיירכשו.

תקציר

שינויים דינמיים בדיפוזיה מים רקמות וחילוף חומרים של הגלוקוז להתרחש במהלך ולאחר היפוקסיה בהיפוקסיה-איסכמיה מוחית המשקפת הפרעת bioenergetics בתאים חולים. ההדמיה דיפוזיה משוקללת תהודה מגנטית (MRI) מזהה אזורים שניזוקו, שעלול להיות בלתי הפיך, על ידי היפוקסיה-איסכמיה. שינויים בניצול סוכר ברקמה הפגועה עשויים להיות לזיהוי על ידי פליטת פוזיטרונים טומוגרפיה הדמיה (PET) של 2-deoxy-2- ספיגה (18 F) fluoro-ᴅ-גלוקוז ([18 F] FDG). בשל האופי המהיר ומשתנה של פגיעה במודל חיה זו, רכישה של שני המצבים של נתונים חייבת להתבצע בו זמנית על מנת לתאם משמעותי נתונים PET ו- MRI. בנוסף, שונות הבין-חיה בפציעת חוסר חמצן-איסכמי בשל הבדלי כלי דם מגבילה את היכולת לנתח נתונים רבי מודלי ולבחון שינויים בגישת קבוצה-חכמה אם הנתונים לא רכשו בו זמנית בנושאים אישיים. עמ 'השיטההתרעם כאן מאפשר לרכוש שני MRI משוקלל דיפוזיה ו[ 18 F] נתוני ספיגת FDG באותו בעלי החיים לפני, במהלך, ואחרי אתגר חוסר חמצן כדי לחקור את השינויים פיסיולוגיים מיידיים.

מבוא

ברחבי העולם, שבץ הוא הגורם השני המוביל למוות ואחד גורמים עיקריים לנכות 1. המפל של אירועים ביוכימיים ופיסיולוגיים המתרחשים בזמן וחריפות בעקבות אירוע שבץ מתרחש במהירות ועם השלכות על כדאיות רקמות וסופו של דבר תוצאה 2. היפוקסיה-איסכמיה מוחית (HI), מה שמוביל לחוסר החמצן אנצפלופתיה-איסכמי (hie), הערכה היא להשפיע על עד 0.3% ו -4% מלידות בטווח מלא ופגים, בהתאמה 3,4. שיעור התמותה בתינוקות עם hie הוא כ 15% עד 20%. ב -25% מניצולי hie, סיבוכים קבועים להיווצר כתוצאה מהפגיעה, כולל פיגור שכלי, ליקויים מוטוריים, שיתוק מוחין, אפילפסיה ו3,4. התערבויות טיפוליות בעבר לא הוכיחו ראויות לאימוץ כטיפול סטנדרטי, וטרם הגיעה להסכמה כי השיטות המתקדמות ביותר, המבוססות על היפותרמיה, הם מפחיתות ביעילות תחלואה 3.5. נושאים אחרים oטענה ו כוללת שיטת הממשל של היפותרמיה ומטופל בחירת 6. לפיכך, אסטרטגיות לneuroprotection וneurorestoration עדיין אזור פורה למחקר 7.

מודלים של עכברים של HI המוחי היו זמינים מאז 1960, ולאחר מכן הותאמו לעכברי 8,9. בשל האופי של המודל והמיקום של קשירה, יש שונות הגלומות בתוצאה בשל הבדל בזרימה בטחונות בין בעלי החיים 10. כתוצאה מכך, מודלים אלה נוטים להיות משתנים יותר בהשוואה לדגמים דומים כגון עורקים התיכון ספיגה המוחין (MCAo). מדידה של שינויים פיסיולוגיים בזמן אמת הודגמה עם Flowmetry דופלר הלייזר, כמו גם 11 MRI המשוקלל דיפוזיה. שונות התוך-החיה נצפו בזרימת דם במוח במהלך ומייד לאחר היפוקסיה, כמו גם בתוצאות אקוטיות כגון אוטם נפח ונוירולוגיותגירעון, מצביע על כך שרכישה ומתאם בו זמנית של נתונים multimodal תהיה מועילות.

התקדמות שחלה באחרונה בטומוגרפיה בו זמנית פליטת פוזיטרונים (PET) והדמיה בתהודה מגנטית (MRI) אפשרה לאפשרויות חדשות בתחום ההדמיה פרה-קלינית 12-14. היתרונות הפוטנציאליים של מערכות אלה היברידיים, בשילוב יישומים פרה-קליניים שתוארו בספרות 15,16. בעוד שניתן התייחסו שאלות רבות פרה-קלינית על ידי הדמיה ברצף חיה בודדת או על ידי הדמיה קבוצות בעלי חיים נפרדות, מצבים מסוימים - למשל, כאשר כל מופע של אירוע כגון שבץ בא לידי ביטוי באופן ייחודי, המתפתח במהירות עם הפתופיזיולוגיה - לעשות את זה רצוי ואף הכרחי להשתמש מדידה בו זמנית. הדמיה תפקודית מספקת דוגמא אחת כזו, שבו 2-deoxy-2- (18 F) fluoro-ᴅ-גלוקוז ([18 F] FDG) PET בו זמנית וblooחמצן ברמה ד לאחרונה תלוי MRI (BOLD) הודגם בגירוי זיף חולדה לומדת 14.

הנה, אנחנו מדגימים הדמיה PET / MRI בו זמנית בתחילת שבץ איסכמי חוסר חמצן שבפיזיולוגיה של המוח היא לא במצב יציב, אך במקום זאת היא במהירות ובלתי הפיך שינוי במהלך אתגר חוסר חמצן. שינויים בדיפוזיה מים, כפי שנמדד על ידי בדיקת MRI ולכמת במקדם לכאורה דיפוזיה (ADC) נגזר מההדמיה משוקללת דיפוזיה (DWI), התאפיינו גם לשבץ בנתונים קליניים ופרה-קליניים 17,18. במודלים של בעלי חיים כגון MCAo, דיפוזיה של מים ברקמת המוח הפגוע טיפות במהירות בשל מפל bioenergetic המוביל לבצקת ציטוטוקסיות 18. שינויים חריפים אלה בADC גם הם נצפו במודלים של מכרסמים של היפוקסיה-איסכמיה מוחית 11,19. [18 F] הדמיה FDG PET נעשתה שימוש בחולי שבץ מוחי להעריך שינויים בGL המקומיגם חילוף חומרים ucose 20, ומספר קטן של מחקרים בבעלי החיים in vivo השתמשו [18 F] FDG 21, כוללים במודל היפוקסיה-איסכמיה המוחי 22. באופן כללי, מחקרים אלה מראים ירידת ניצול הגלוקוז באזורי איסכמי, למרות שמחקר תוך שימוש במודל עם reperfusion לא נמצא קשר של שינויים מטבוליים אלה עם התפתחות אוטם מאוחר יותר 23. זאת בניגוד לשינויי דיפוזיה שנקשרו עם הליבה הפגומה באופן בלתי הפיך 21. לכן, חשוב להיות מסוגל להשיג את המידע המשלים נובע מ[ 18 F] FDG PET וDWI באופן סימולטני במהלך האבולוציה של שבץ, כמו זה עשוי להניב מידע משמעותי על ההתקדמות של פגיעה ואת ההשפעה של התערבויות טיפוליות. השיטה שאנו מתארים כאן היא נוחה בקלות להשתמש במגוון של קליעים נותבים PET ורצפי ה- MRI. לדוגמא, PET 2 O H [15 O]הדמיה יחד עם DWI ותמונות משוקללים זלוף (PWI) מMRI יכול לשמש כדי לחקור את ההתפתחות של הצללים איסכמי ולאמת טכניקות הנוכחיות בתחום ההדמיה שבץ.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

כל הטיפול בבעלי החיים וההליכים המתוארים במסמך זה, ובהתאם למחקר בבעלי חיים: דיווח בניסויי הנחיות Vivo (להגיע), בוצעו בהתאם לפרוטוקולים שאושרו על ידי האגודה להערכת ההסמכה של מעבדה טיפול בבעלי חיים (AAALAC) בינלאומי מוכר מוסדי טיפול בבעלי חיים הוועדה השתמש באוניברסיטת קליפורניה, דיוויס. ניתוח נכון לא צריך לגרום לסימנים של כאב או אי נוחות בבעלי החיים, אך יש לנקוט צעדים נכונים אם סימנים אלה הם נצפו, כוללים ניהול של משככי כאבים או במקרים מסוימים, המתת חסד. בצד הימין של בעלי החיים היה נבחר באופן שרירותי להליך חד צדדי שתואר.

1. עורק התרדמה המשותפת חד צדדית קשירת (CCA)

  1. הכן שדה סטרילי עם כלים מעוקרים כירורגית וחומרים ממוקמים בנוחות. כרית חימום להבטיח מחומם ל -37 מעלות צלזיוס עם בדיקה טמפרטורה ממוקמת באופן מאובטח על משטח. & #160; הקפד להשתמש וילון סטרילי כדי לכסות את האתר כירורגית.
  2. להרדים בעלי חיים (isoflurane, 1-3% באוויר ב0.5-1 ליטר / דקה), ומניח את החיה במצב שכיבה עם הזנב מול משם. בדקו הרדמה על ידי צובט את הבוהן - זה צריך לעורר שום תגובה אם בעל החיים הוא בהרדמה כראוי. החל משחה העיניים לעיניים.
  3. החל הסרת שיער קרם לצוואר נמוך לאזור חזה העליון באמצעות 1-2 צמר גפן. חכה 1-3 דקות, ולאחר מכן להסיר את השיער וקרם באמצעות מטליות גזה או אלכוהול רטובות. אזור ספוגית חתך עם פולידין באופן מעגלי מבפנים החוצה, ואז לשנות לכפפות מנתחים סטרילית.
  4. בעזרת מספריים כירורגיות, עושה חתך של כ 1 סנטימטר לאורך קו האמצע של הצוואר התחתון. זהירות להפריד עור חיצוני מסביב fascia באמצעות מספריים כירורגיות.
  5. שימוש בשני מלקחיים תפירת איריס מיקרו מקפרסון, להפריד את עורק תרדמה המשותף תקין מfascia, לטפל כדי למנוע ורידים או distur מזיקיםבינג העצב התועה.
  6. שימוש במלקחיים בצד הימין, exteriorize המרכז לאמנות העכשווית הנכונה במצב יציב. יישומם של מספר טיפות של תמיסת מלח כדי למנוע התייבשות. עובר אורך מתאים (2-3 סנטימטר) של 6-0 תפר משי מתחת למרכז לאמנות העכשווי הנכון, ולקשור באמצעות קשר זוגי מרובע. לחלופין, לקשור שוב באמצעות אורך שני של 6-0 תפר משי.
  7. למקם תקין המרכז לאמנות עכשווית ולנקות נוזלים עודפים מהפתיחה באמצעות ספוג סטרילי הטה ספוגית. סגירת החתך עם תפר 6-0 משי. החל ידוקאין מריחה עד 7 מ"ג / קילוגרם.
  8. לאפשר לבעלי החיים להתאושש מהרדמה עד (כ -30 דקות) אמבולטורי ולבצע ניטור לאחר ניתוח עד בעלי החיים מוכנים להדמיה.

2. הכנה להדמיה: בדיקות מערכת וחומרה

  1. הגדר את החומרה ותוכנה למערכות MRI וPET ולבדוק את הפונקציונליות שלהם כדלקמן. ודא כי כל החיבורים הפיזיים הם מאובטחים והגדרות תוכנה כראוי נבחרות.
    1. ודא מערכת PET היא בטמפרטורת ההפעלה הקבועה של 5 מעלות צלזיוס באמצעות מערכת קירור האוויר.
    2. מערכת ההר PET בתוך נשא MRI, יישור שדה PET ו- MRI של מרכזי תצוגה (FOV) באמצעות קיזוז צירי ידוע. הר סליל MRI בתוך נשא של מערכת PET ולמרכז את הסליל עם מערכת PET ומרכזי מגנט MRI.
    3. הפעל אלקטרוניקה PET לכוח ומתח הטיה (הערה: צעדים ישתנו על ידי מכשיר). בצע סריקה מהירה (5 דקות) באמצעות גליל גה 68 ולבדוק sinogram וכתוצאה מכך על מנת להבטיח את כל הגלאים הם מבצעיים.
    4. לחלופין לרכוש נתונים שישמשו למטריצת שינוי PET / MRI למטרות שיתוף רישום: מלא פנטום תלת ממדים (למשל, שלושה התחומים מלאים) עם 200 μCi של תמיסה מימית F 18 ולרכוש עבור 15 דקות עם PET. רוכשים את נתוני MRI אנטומיים: בסריקת השליטה החלון, בחר רב-פרוסה רצף רב-הד (MSME) (ראה לוח 1 ). חזור על פעולה עבור כל שלוש האוריינטציות העיקריות: צירי, sagittal, ועטרה.
  2. בדוק את הגדרות משאבת עירוי ותפעול. הגדר את המשאבה ל4.44 μl לדקה, אשר ב -45 דקות של עירוי קבוע מספק בהיקף כולל של 200 μl, המגבלה המומלצת האופיינית להזרקת IV בבעלי חי 20 גרם.
  3. בדוק את פעולת התנור ולאשר כי פלט הטמפרטורה מספיק כדי לשמור על בעלי החיים החמים (37 מעלות צלזיוס). בדוק שהטמפרטורה וניטור נשימה היא מבצעית בהכנה למיקום בעלי חיים על המיטה בבעלי החיים.
  4. בדוק את הפעולה של מדידת תצרוכת O 2 ו- N 2 (0.5 ליטר / דקה: O 2 ב57.2 מ"ג / דקה ו- N 2 ב.575 גר '/ דק') על ידי הפעלת שני עם מקור האוויר הדחוס ומO 2 ו- N 2 מקורות ב. כדי למנוע את הסיכון של הפגיעה מדידת הזרימה, לא הופך אותם ללא לחץ על קלט מספיק.
  5. ודא שנ isofluraneaporizer מלא מספיק. לפני ההדמיה, להתחיל זרימת ההרדמה isoflurane ב1-2% ו0.5-1 ליטר / דקה.
  6. הכן מיטת בעלי חיים על ידי הבטחה כי ההרדמה, כרית נשימה, ומערכות החימום ממוקמות באופן מאובטח ופונקציונלי. לדיוק שיתוף רישום נוסף PET / MRI, סמני fiducial (למשל, צינורות נימים מלאים radiotracer בריכוז דומה למוזרק להדמיה) יכולים להיות מחוברים למיטה בבעלי החיים בשדה הראייה.

עבודה 3. הדמיה

לאחר כל בדיקות הציוד הדרושות הושלמו, להמשיך להדמיה כדלקמן:

  1. להרדים את החיה עם isoflurane ולהכניס קטטר וריד זנב (28 מחט G, PE-10 צינורות פחות מ -5 סנטימטרים) מלא מלוח heparinized (0.5 מיליליטר הפרין, 1,000 USP / מיליליטר, 10 מיליליטר מי מלח). מחמם את בעלי החיים ו / או זנב עשוי לשפר את דיוק החדרת קטטר. לחלופין מקום טיפה של דבק cyanoacrylate באתר של הכנסהכדי לאבטח את הקו הרביעי.
  2. מעבירים את החיה למיטת החיה מוכנה. ודא שהראש של החיה הוא מאובטח, עם שיניים חותכות העליונות מובטחות בברים בר ואוזן השן במקום אם בשימוש.
  3. החל משחת עיניים לעיניים כדי למנוע התייבשות. הכנס מדחום בדיקה רקטלית. ודא שטמפרטורה וקריאות נשימה הן פונקציונליות.
  4. צייר את מינון radiotracer (כ -600 μCi ב200 μl) להיות מוזרק לתוך heparinized PE-10 צינורות באורך מתאים - 3 מ 'כ לPE-10 צינורות ונפח של 200 μl. חבר קצה אחד של צינור זה למזרק משאבת עירוי, והשני לקו קטטר וריד זנב, נזהר שלא ליצור חורים בצינור.
  5. חלק את מיטת החיה קדימה לשעמם של המגנט, כדי לוודא שלא להפריע את המיקום של סליל MRI וכל קווים או כבלים, במיוחד צינורות ההרדמה. ודא שמרכז המוח מיושר עם המרכזים של Mסליל RI, מערכת PET, ומגנט MRI.
  6. לבצע כוונון והתאמה של סליל MRI על ידי סיבוב כפתורי התאמה על הסליל, מזעור עכבה (לבדוק מפרטי סליל) ותדירות (300 MHz לH 1 ב -7 טסלה) חוסר התאמה על ידי התבוננות בתצוגה של מגבר קדם מתח הגבוה.
  7. (MRI) לאחר כוונון והתאמה, לרכוש תמונת הסקאוט: בחר רצף tripilot נדיר ולהפעיל את הרצף מסריקת השליטה החלון. בדוק מיצוב של בעלי החיים, חזרה על שלבים 3.5 ו -3.6 במידת צורך. איפוס shims לאפס ערך.
  8. (MRI) לרכוש, סריקה מקומית נפתרה נקודה ספקטרוסקופיות (PRESS) בנפח בתוך המוח: הפעל רצף עיתונות (ראה טבלה 1) בנפח מלבני עם ממדים 3.9 מ"מ × 6 מ"מ × 9 מ"מ. בדוק רוחב קו מים באמצעות פקודת מאקרו CalcLineWidth. אם הרוחב המלא בחץ מקסימום הערך (FWHM) הוא מקובל (למשל, 0.2 עמודים לדקה), המשך לשלב 3.10. אם לא, המשיכו לשלב 3.9.
  9. (MRI) מפת שדה לרכוש: הפעל רצף FieldMap (ראה טבלה 1). השתמש בנתונים לפחית הקרנה רבת זווית (MAPSHIM) וכתוצאה מכך על ידי הפעלת פקודת מאקרו MAPSHIM ובחירה ליניארי וסדר שני (z 2) התאמות מקומיות. חזור על שלב 3.8.
  10. (MRI) מקם את התכנית הפרוסה לסריקת DWI (ראה טבלה 1): באמצעות עורך הגיאומטריה, להבטיח כי הרכישה FOV ממוקמת לרכוש הנפח הרצוי של ריבית במוח. אם התכנית הפרוסה וכתוצאה מכך מיושרת כרצוי, להעתיק תכנית פרוסה זה בסריקת השליטה החלון לכל סריקות DWI שלאחר מכן. בגין רכישה.
  11. (PET) עם רכישת PET ערוך ומוכן להתחיל, להתחיל את משאבת העירוי. לאחר העיכוב שנקבע מראש שבמלח מקטטר כבר הזריק, להתחיל רכישת PET (ראה טבלה 1) כדי ללכוד את הכניסה של radiotracer. צג שיעור הספירה ולחפש עלייה הדרגתיתבספירת מעידה על זריקה מוצלחת.
  12. לאחר 10-15 דקות, ליזום במקביל אתגר חוסר חמצן בשלב 3.12. ליזום אתגר חוסר חמצן, לכבות את זרימת אוויר רפואית ומייד כוח על O 2 ו- N 2 תזרים מטרים עם ההגדרות שנקבעו מראש כדי לספק חמצן 8% ו -92% חנקן, ולהפחית isoflurane ל -0.8%. האם לא כוח על תזרים מטרים בלי לחץ קלט.
  13. (MRI) באותו הזמן כצעד 3.12, להתחיל רכישת DWI מוכנה בשלב 3.10 (סריקה "H1").
  14. (MRI) בגין רכישת DWI (סריקה "H2"), מוכן בשלב 3.10, מייד לאחר H1 הסריקה הושלם. בסופו של אתגר חוסר חמצן על ידי כיבוי מדידת זרימה, שחזור זרימת אוויר רפואי, וחוזר ריכוז isoflurane לערך מתאים המבוסס על ניטור פיסיולוגי.
  15. (MRI) רוכשים DWI הודעה היפוקסיה הסריקה מוכן בשלב 3.10. כבה את משאבת העירוי לאחר סריקה זה השלימה.
  16. ענת (MRI) לרכושתמונות omical בצירית ומטוסי sagittal. בסריקת השליטה החלון - בחר את רצף MSME (ראה טבלה 1). באמצעות עורך הגיאומטריה, להבטיח כי רכישת FOV מכסה את המוח.
  17. הסר בעלי חיים, לחזור לכלוב כאשר אמבולטורי ולעקוב אחר סימנים לתחלואה, אם יש צורך בהרדמת החסד עם ממשל של CO 2 ואחריו נקע בצוואר הרחם כשיטת משנית.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

איור 1 מדגים את התוצאה של קשירה נכונה של עורק התרדמה המשותף, לפני סגירת הפצע עם תפר 6-0 משי.

בשיטה זו, הנתונים המתקבלים מהדמיה תלוי מאוד על ההסדר הזמני של הניסוי, אשר בתורו מכתיב וגם מוכתב על ידי מגבלות ניסוי כוללים תוכניות רכישת תמונה והתקנת ציוד. אלה ושיקולים אחרים יטופלו בהרחבה בסעיף הדיון. עם הפרוטוקול המתואר במסמך זה, ההתקנה הפיסית של הציוד (איור 2 א) מאפשרת לרכישת תמונה רבת...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

MRI סימולטני אנטומיים, והדינמי DWI-MRI ו[ 18 F] נתונים FDG PET נרכשו בהצלחה מחיות ניסוי באתגר חוסר חמצן הבא קשירת עורק תרדמה משותפת. זה מייצג פרדיגמה ניסויית רבת עוצמה להדמיה multimodal של הפתופיזיולוגיה המתפתחת במהירות קשורה לעלבונות איסכמי במוח ויכול בקלות להיות מורחב כדי ללמוד radiotracers האחר PET (לדוגמא סמנים של neuroinflammation) ורצפי ה- MRI, כמו גם את ההשפעה של אסטרטגיות התערבותית במהלך או זמן קצר לאחר אתגר איסכמי.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

JM וSW הם עובדי ג'ננטק.

תודות

המחברים מבקשים להודות למרכז מולקולרי וגנטית הדמיה באוניברסיטת קליפורניה בדיוויס ויו-הרפואית ההדמיה המחלקה בחברת ג'ננטק. עבודה זו נתמכה על ידי המכונים לאומי לבריאות מענק מספר ביו-הנדסת שותפות מחקר R01 EB00993.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
מספריים כירורגיים לניתוח
RobozRS-5852
מלקחייםRobozRS-5237
מלקחיים נגד יתושים הרטמןMiltex7-26
2x מלקחיים לתפירת מקפרסון, 8.5 ס"ממדויק כירורגי & מכשירים מדעיים4473כדאי להקטין את רוחב הפתח עם רצועה על המלקחיים המשמשים להחזקת עורק הצוואר
6-0 תפר משי קלוע מצופה סיליקון עם מחט 3/8 C-1Covidien SofsilkS-1172
מערכת שמיכות הומותרמיותמכשיר הרווארד507220F
דבק סופר(גנרי)
היפוקסיה
מד זרימה עבור O2Alicat ScientificMC-500SCCM-D
מד זרימה עבור N2Alicat ScientificMC-5SLPM-D
O2 meterMSAAltair Pro
Imaging
7.05 טסלה מערכת MRIBrukerBioSpecקוטר קדח פנימי 20 ס"מ עם סט שיפוע. תוכנת Paravision 5.1.
נפח Tx/Rx 1H סליל, 35 מ"מ IDBrukerT8100
מערכת PET(פנימית)4x24 גלאי LSO-PSAPD, מערך
10x10 LSO לכל גלאי,
גובה גביש 1.2 מ"מ ועומק 14 מ"מ. 14 x 14 מ"מ PSAPD. FOV: 60x35 מ"מ. חלון אנרגיה של 350-650 קילוואט. חלון תזמון של 16 nsec.
קנולציה של כלי דם מלקחיים DumontRobozRS-4991
PE-10 צינורות פוליאתילןBD משאבת עירוי 427401
BraintreeScientificBS-300
ציוד ניטור ושער בעלי חייםAnimal Instruments Inc.דגם 1025נעשה שימוש רק בניטור נשימה
מיטת בעלי חיים עם ויסות טמפרטורה(בבית)
אינטרמדיקית Small

מקורות

  1. Donnan, G. A., et al. The Lancet. 371, 1614-1623 (2008).
  2. Turner, R. C., et al. The science of cerebral ischemia and the quest for neuroprotection navigating past failure to future success A review. Journal of Neurosurgery. 118, 1072-1085 (2013).
  3. Vannucci, R. C., Perlman, J. M. Interventions for perinatal hypoxic ischemic encephalopathy. Pediatrics. 100, 1004-1014 (1997).
  4. Chicha, L., et al. Stem cells for brain repair in neonatal hypoxia–ischemia. Childs Nervous System. 30, 37-46 (2014).
  5. Barks, J. D. Current controversies in hypothermic neuroprotection. Seminars in Fetal and Neonatal. 13 (1), 30-34 (2008).
  6. Jantzie, L. L., et al. Neonatal ischemic stroke a hypoxic ischemic injury to the developing brain. Future Neurology. 3, 99-102 (2008).
  7. James, A., Patel, V. Hypoxic ischaemic encephalopathy. Paediatrics and Child Health. 24 (9), (2014).
  8. Levine, S. Anoxic ischemic encephalopathy in rats. The American Journal of Pathology. 36 (1), (1960).
  9. Vannucci, S. J., et al. Experimental stroke in the female diabetic db db mouse. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 21, 52-60 (2001).
  10. Sheldon, R., et al. Strain related brain injury in neonatal mice subjected to hypoxia ischemia. Brain Research. 810, 114-122 (1998).
  11. Adhami, F., et al. Cerebral ischemia hypoxia induces intravascular coagulation and autophagy. American Journal of Pathology. 169 (2), 566-583 (2006).
  12. Catana, C., et al. Simultaneous in vivo positron emission tomography and magnetic resonance imaging. Proceedings of the National Academy of Sciences. 105, 3705-3710 (2008).
  13. Judenhofer, M. S., et al. Simultaneous PET MRI a new approach for functional and morphological imaging. Nature Medicine. 14, 459-465 (2008).
  14. Wehrl, H. F., et al. Simultaneous PET MRI reveals brain function in activated and resting state on metabolic hemodynamic and multiple temporal scales. Nature Medicine. 19, 1184-1189 (2013).
  15. Judenhofer, M. S., Cherry, S. R. Applications for preclinical PET MRI. Seminars in Nuclear Medicine. 43 (1), 19-29 (2013).
  16. Wehrl, H. F., et al. Preclinical and Translational PET/MR Imaging. Journal of Nuclear Medicine. 55, Suppl 2. 11S-18S (2014).
  17. Heiland, S. Diffusion and Perfusion Weighted MR Imaging in Acute Stroke Principles Methods and Applications. Imaging Decisions MRI. 7, 4-12 (2003).
  18. Loubinoux, I., et al. Spreading of vasogenic edema and cytotoxic edema assessed by quantitative diffusion and T2 magnetic resonance imaging. Stroke. 28, 419-427 (1997).
  19. Ouyang, Y., et al. Evaluation of 2 [18F]fluoroacetate kinetics in rodent models of cerebral hypoxia–ischemia. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 34 (5), 836-844 (2014).
  20. Kuhl, D. E., et al. Effects of stroke on local cerebral metabolism and perfusion mapping by emission computed tomography of 18FDG and 13NH3. Annals of Neurology. 8, 47-60 (1980).
  21. Planas, A. M. Noninvasive Brain Imaging in Small Animal Stroke Models MRI and PET. Neuromethods. 47, 139-165 (2010).
  22. Marik, J., et al. PET of glial metabolism using 2-18F-fluoroacetate. Journal of Nuclear Medicine. 50 (6), 982-990 (2009).
  23. Martín, A., et al. Depressed glucose consumption at reperfusion following brain ischemia does not correlate with mitochondrial dysfunction and development of infarction: an in vivo positron emission tomography study. Current Neurovascular Research. 6, 82-88 (2009).
  24. Carson, R. E. PET physiological measurements using constant infusion. Nuclear Medicine and Biology. 27, 657-660 (2000).
  25. Greve, J. M. The BOLD effect. Methods in Molecular Biology. 771, 153-159 (2011).
  26. Flores, J. E., et al. The effects of anesthetic agent and carrier gas on blood glucose and tissue uptake in mice undergoing dynamic FDG-PET imaging sevoflurane and isoflurane compared in air and in oxygen. Molecular Imaging and Biology. 10, 192-200 (2008).
  27. Delso, G., Ziegler, S. PET MRI system design. European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 36, 86-92 (2009).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

FDGMRI
ההדמיה PET / MRI בו זמנית בעכבר מוחין היפוקסיה-איסכמיה
צור קשר
המלצה לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

2026 © זכויות יוצרים MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.