מאמר שיטה

פרוטוקול מעוקב מדמיין ביטוי החלבון ברזולוציה תא יחיד תכשירים לעור הר שלם

11.3K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/54401

⸱

4 באוגוסט 2016

 ,  ,  ,  ,  , 
1The School of Medical Sciences, University of New South Wales Australia, 2Neuroscience Research Australia, 3Biomedical Imaging Facility, University of New South Wales Australia

* These authors contributed equally

במאמר זה

סיכום

דו"ח זה מתאר פרוטוקול מעוקב להבהיר ביופסיות עור עכבר בעובי מלאות, ולדמיין דפוסי ביטוי חלבון, תאים מתרבים, ו sebocytes ברזולוצית התא הבודדה ב 3D. שיטה זו מאפשרת הערכה מדויקת של האנטומיה העור והפתולוגיה, ושל פנוטיפים אפידרמיס החריגים קווי עכבר מהונדסים גנטי.

תקציר

העור הוא חיוני להישרדות שלנו. השכבה החיצונית באפידרמיס מורכב האפידרמיס interfollicular, שהנה אפיתל קשקשיים מרובדת המכסה את רוב הגוף שלנו, ואת הנספחים אפידרמיס כגון זקיקי השיער ובלוטות זיעה. האפידרמיס עובר התחדשות לאורך כל החיים בתגובה לפציעה. זו מופעלת כברירת K14 להביע אוכלוסיות תאי גזע / אב אפידרמיס הבזליים כי מוסדרים באופן הדוק על ידי מנגנוני ויסות מספר פעילים בתוך האפידרמיס בין האפידרמיס הדרמיס. מאמר זה מתאר שיטה פשוטה לברר ביופסיות עור בעובי עכבר מלאות, ולדמיין דפוסי ביטוי חלבון K14, Ki67 שכותרתו מתרבה תאים, הנילוס האדום שכותרתו sebocytes, ו DAPI תיוג גרעיני ברזולוצית תא בודדת ב 3D. שיטה זו מאפשרת הערכה מדויקת וכימות של האנטומיה העור והפתולוגיה, ושל פנוטיפים אפידרמיס החריגים קווי עכבר מהונדסים גנטי. הפרוטוקול מעוקב הוא הדואר טוב ביותר השיטה זמינה עד כה כדי לחקור אינטראקציות מולקולריות תאיות ב ביופסיות עור בעובי מלאות ברזולוצית תא בודדת.

מבוא

העור הוא חיוני להישרדות שלנו. הוא מורכב משלושה רבדים עיקריים האפידרמיס החיצוני, בדרמיס ובהיפודרמיס. האפידרמיס היא רקם משובים מאוד. זהו אפיתל מרובדת קשקש, המורכב בעיקר של קרטינוציטים. קרטינוציטים נולדים בשכבת הבסיס, ולעבור כלפי מעלה דרך שכבות suprabasal תוך הבחנה, ובסופו של דבר הם שופכים בשכבת cornified החיצונית כחודש לאחר הלידה שלהם. האפידרמיס מפתחת מספר נספחים כולל זקיקי השיער ובלוטות חלב. זקיקי השיער גם להתחדש באופן מחזורי לאורך כל החיים 1. קיבולת ההתחדשות של האפידרמיס מופעלת על ידי נוכחות של תאי גזע ובתאים נמצאים בשכבת הבסיס של האפידרמיס interfollicular ושיער זקיק 2.

מסלולי איתות רבים היו מעורבים בפיתוח אפידרמיס והתחדשות. חלקם מתרחשים בתוךהאפידרמיס בלבד, כגון מסלול הקיפוד. אירועי איתות אחרים מתקיימים בין הדרמיס לאפידרמיס 3. לדוגמא, אותות Wnt מן הדרמיס נחשבים חשוב להתפתחות זקיק שיער, והם מופרשים על ידי פטמית עורי בתחילת anagen להפעיל התפשטות תאי זקיק שיער בליטת גזע / ובתאים וצמיחת זקיק שיער 4. חשוב להבין את המנגנונים התאיים ומולקולריים השולטים בהתפתחות אפידרמיס והתחדשות כדי להבין טוב יותר כיצד הם עשויים להיות מוטרדים במחלת עור משובים כגון סרטן העור.

מאמר זה מתאר ליר C, U nobstructed קוקטיילי B גשם ואני maging ו- C ניתוח omputational (מעוקב) פרוטוקול 5-7 להבהיר הכנות עור הר שלמות, ולדמיין דפוסי ביטוי חלבון ב 3 ממדים ברזולוצית תא בודד על ידי מיקרוסקופיה confocal. השיטה מעוקב כרוכה טבילה של עוררקמות בשני בקבוקים כימיים מבוסס aminoalcohol. פתרונות אלה להתאים את המדדים השבירים במדגם העור, משאירים את הרקמה שקופה והחלבונים ללא פגע, המאפשר immunodetection ברזולוצית תא בודד.

שימוש בפרוטוקול מעוקב זה, הבסיס, מתרבים אוכלוסיות keratinocyte באפידרמיס interfollicular ובסופו של זקיק השיער הם צילמו ב ביופסיות עור בעובי מלא של עכברים wildtype באמצעות אנטי Keratin14 (K14) ונוגדנים אנטי Ki67. בלוטות החלב ב ביופסיות עור wildtype היו דמיינו גם באמצעות מכתים האדום הנילוס. לבסוף, אוכלוסיות keratinocyte הבסיס ב wildtype ו hyperplastic YAP2-5SA-ΔC ביופסיות עור הושוו 8.

פרוטוקול מעוקב זה מאפשר הערכה חזותית של ביטוי חלבון ביופסיות עור בעובי מלאה ברזולוצית תא בודדת, והוא מהווה כלי חשוב להעריך האנטומיה אפידרמיס ופגמים מורפולוגיים בעור מהונדס גנטיעכברים, וכדי לחקור את המנגנונים התאיים ומולקולריים שבבסיס התפתחות אפידרמיס והתחדשות.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

משפט ואתיקה: כל הנהלים הקשורים בנושאים בעלי חיים לעקוב אחר ההנחיות של טיפול בבעלי חיים ועדת האתיקה (ACEC) בשעה אוסטרליה UNSW תחת פרוטוקול שאושר ACEC 13 / 64B.

1. הכנה של רקמת עור העכבר השקופה

הערה: כל העכברים השתמשו במחקר זה היו על רקע גנטי C57BL / 6

  1. אוסף של רקמת עור עכבר.
    1. ברוב אנושיות להרדים את העכברים על ידי נקע בצוואר הרחם.
    2. מוציאים בזהירות שערות מאזור העור רלוונטי עם בלטפל גוזם לא לפצוע את העור.
    3. העור לשטוף כדי לטהר עם 70% אתנול בופר פוספט (PBS).
    4. רם עור צוואר גב עם מלקחיים ולעשות חתך במספריים.
    5. לנתח שטח גדול של עור עכבר הגבה (כ 1.5 x 4 סנטימטרים).
    6. שיטוח מטה הדרמיס-צד העור על נייר הסינון, ולעשות לעצמך את הכיוון הקדמי-אחורי של המדגם.
    7. תְלַתמ 'מסנן נייר סביב העור גזור, ומכניסים צינור 15 מ"ל מלא מוכן טרי 4% paraformaldehyde (PFA) פתרון PBS.
    8. תקן עבור 1 שעות בטמפרטורת החדר, או לילה במקרר ב 4 ° C..
    9. העור 2 לשטוף x 5 דקות ב PBS בצינור 15 מ"ל.
      הערה: להלן (1.1.10 - 1.1.12) הם שלבים אופציונליים עבור אחסון לטווח ארוך של רקמה.
    10. מייבשים את העור גזור ב PBS ככל שעלה ריכוז של אתנול (25%, 50% 70%) בצינור 15 מ"ל במהלך השלבים לשטוף 1-שעות בטמפרטורת החדר.
    11. אחסן העור מיובש באתנול 70% ב PBS בצינור 15 מ"ל ב 4 מעלות צלזיוס עד לשימוש נוסף.
    12. 4 שעות לפני סליקה, רעננותם רקמת העור ב- PBS עם ירידה בריכוז של אתנול (70%, 50%, 25%, 0%) בצינור 15 מ"ל במהלך השלבים לשטוף 1-שעות בטמפרטורת החדר.
  2. ניקוי ביופסיות עור העכבר
    1. הכן את פתרון סליקת CUBIC1 ידי המסת אוריאת 3.85 גרם ו 3.85 גרם N, N, N ', N'-tetrakis (2-Hydroxypropyl) ethylenediamine ב 5.38 מ"ל מים מזוקקים על תנור מוגדר 60 - 70 מעלות צלזיוס. השתמש בוחש חם.
    2. להוסיף פוליאתילן גליקול 2.31 גרם האתר מונו-p-isooctylphenyl / טריטון X-100 הפתרון פעם ברור ו התקרר לטמפרטורת החדר.
    3. חותכים את העור של העכבר עם סכין גילוח חד לתוך ביופסיות של ממדים המשוער 0.2 x 0.5 ס"מ, לצלול 5 מ"ל של תמיסת סליקה CUBIC1 בתוך שפופרת 15 מ"ל. כדי לייעל את להדמיה של זקיקי שיער, להבטיח כי הצד הארוך יותר של הביופסיה הוא חתך לאורך כיוון אנטרו-האחורי של המדגם.
    4. מניחים על במה מסתובבת בתנור הכלאה על 37 מעלות צלזיוס.
    5. שנה את פתרון הסליקה לאחר 7 ימים. כן פתרון CUBIC1 הטרי לפני השימוש.
    6. בדוק את השקיפות של הרקמות לאחר 7 ימים. במידת צורך, לעזוב ביופסיות בתמיסת סליקת CUBIC1 עד הרקמה שקופה לחלוטין.
    7. לאחר הביופסיה של העור היא שקופה,להסיר את הפתרון CUBIC1, ולהוסיף 4 מ"ל של 1 × PBS לשטוף את רקמת 4 פעמים במשך 6 שעות ב 37 מעלות צלזיוס.
    8. שטפו את רקמת העור ב -20% w / סוכרוז נ ב PBS בצינור 15 מ"ל במשך 4 שעות ב 37 מעלות צלזיוס.
    9. להקפיא את רקמות הרכבת טמפרטורת חיתוך בינוני אופטימלית (אוקטובר) מתחם בתוך שפופרת 15 מיליליטר הלילה במקפיא -80 מעלות צלזיוס.
      הערה: צעד זה יגביר את החדירות של הביופסיה לחדירת נוגדנים בשלבים הבאים.

2. Immunofluorescence מכתים

  1. להפשיר רקמה 1.2.9) לטמפרטורת החדר במשך 2 - 3 שעות.
  2. רקמות לשטוף בצינור 15 מ"ל עם 5 מ"ל של PBS עבור 8 שעות בטמפרטורת החדר כדי להסיר מתחם OCT.
  3. העברת ביופסיות לצינור 2 מ"ל, דגירה רקמות ארנב 1 מ"ל אנטי Keratin14 או ארנבת נוגדן אנטי Ki67, הן מדולל 1: 100 ב PBST (PBS + 0.1% Triton-X100) במשך 3 ימים על שייקר בתוך 37 ° בתנור C.
  4. ביופסיות מעבירים 15 מיליליטר צינור,nd לשטוף רקמות 4 פעמים במשך 6 שעות ב 5 מ"ל של PBST על שייקר בתנור 37 מעלות צלזיוס.
  5. העברת ביופסיות לצינור 2 מ"ל, להוסיף 1 מ"ל נגד ארנב Alexa594 נוגדנים משני בדילול 1: 100 ב PBST דגירה 3 ימים על שייקר בתנור 37 מעלות צלזיוס.
  6. העברת ביופסיות לצינור 15 מ"ל, ולשטוף רקמות 4 פעמים במשך 6 שעות ב 5 מ"ל של PBST על שייקר בתנור 37 מעלות צלזיוס.
  7. העברת ביופסיות לצינור 2 מ"ל, להוסיף 1 מ"ל 4 ', 6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) פתרון counterstain גרעיני (1: 1,000) ב PBST דגירה לילה על שייקר בתנור 37 מעלות צלזיוס.
  8. הסר פתרון counterstaining DAPI, ולהוסיף 1 מ"ל של PBST אל הצינור 2 מ"ל לשטוף רקמות 4 פעמים במשך 6 שעות על שייקר בתנור 37 מעלות צלזיוס.
    הערה: שלב אופציונלי: ביופסיות ניתן לאחסן בחושך ב 1x PBS עם אזיד הנתרן 0.02% למשך 3 שבועות לפחות.

3. האדום הנילוס מכתים

  1. ממיסים אבקת האדום הנילוס dimethylsulfoxide (DMSO) לריכוז סופי של 1 מ 'g / ml
  2. הוסף 1 μl פתרון האדום הנילוס עד 1 מ"ל PBS לריכוז סופי של 1 מיקרוגרם / מ"ל.
  3. רקמת ההפשרה מן 1.2.9) לטמפרטורת החדר במשך 2 - 3 שעות, ולשטוף עם 5 מ"ל PBS עבור 8 שעות בטמפרטורת החדר.
  4. העבר ביופסיות לצינור 2 מ"ל, לצלול רקמות 1 מ"ל פתרון מכתים האדום הנילוס עבור 2.5 שעות בטמפרטורת החדר.
  5. שטפו את ביופסיות עור בצינור 2 מ"ל עם 1 מ"ל PBST 4 פעמים למשך 30 דקות בטמפרטורת החדר.
  6. הסר פתרון PBST מהצינור 2 מ"ל, להוסיף 1 מ"ל של תמיסת counterstaining גרעיני DAPI (1: 1,000) ב PBST דגירה לילה בטמפרטורת החדר.
  7. הסר פתרון counterstaining DAPI, ולהוסיף 1ml של PBST בצינור 2 מ"ל לשטוף את רקמת העור 4 פעמים במשך 6 שעות בטמפרטורת החדר.
    הערה: שלב אופציונלי: ביופסיות ניתן לאחסן בחושך ב 1x PBS עם אזיד הנתרן 0.02% למשך 3 שבועות לפחות.

4. הדמיה

  1. הכן את פתרון סליקת CUBIC2, המכיל 50% (W / v) סוכרוז, 25% (w / v) אוריאה, 10% (w / v) 2,2 ', 2' '- nitrilotriethanol, ו -0.1% (v / v) טריטון X-100.
  2. דגירה רקמת העור בתמיסה 1 מ"ל CUBIC2 בתוך שפופרת 2 מ"ל על שייקר למשך 24 שעות בתנור על 37 מעלות צלזיוס. שלב זה יהיה אפילו מקדם השבירה של הרקמה.
  3. בדוק את הבהירות של הרקמה. לאחר ברור, מקם את ביופסיה של העור כולו (0.2 x 0.5 ס"מ) על הצד הארוך שלה על coverslip זכוכית, כך לכיוון אורך של זקיקי השיער מקביל פני השטח coverslip (# 1 24 x 60 מ"מ)
    הערה: שלב אופציונאלי: ביופסיות צבעוניות נוגדן ניתן לאחסן פתרון CUBIC2 כ -7 ימים. הנילוס מוכתם אדום ביופסיות ניתן לאחסן רק בתמיסה CUBIC2 עד 1 יום, וצריך להיות צילמו בהקדם האפשרי.
  4. הכן תא הדמיה (איור 1)
    הערה: מתכלים הנדרשים לעריכת לחדר ההדמיה הם: נקודת סימון כחול, לשחק בצק או דומה, ו -2 coverslips (24 x 50 מ"מ) (F1A igure).
    1. הכינו שתי רצועות דקות של נקודת סימון כחול (בקוטר כ 1 מ"מ X 2 ס"מ), ושני coverslips (איור 1B).
    2. מניחים רצועות כיוון כחול על פיסת כיסוי אחד, המאפשר מרחב מספיק עבור ביופסיה של העור (איור 1 ג). 4.4.3)
    3. מניחים ביופסיה של העור בין רצועות על coverslip בטיפת פתרון CUBIC2 (תרשים 1C).
    4. מכסים ביופסיה של העור עם coverslip השני (איור 1D).
  5. הנח את תא הדמיה עם ביופסיה של העור רכוב על הבמה של מיקרוסקופ confocal ולהעביר את הרקמה לתוך מסלול האור.
  6. סרוק את המדגם באמצעות מקור אור כספי או הלוגן ומסנני epifluorescence רגילים (למשל, DAPI / GFP / CY3 / Cy5) לזהות אזורים מוכתמים fluorescently של עניין.
  7. אזורי תמונה של עניין באמצעות מטרת 10X ו 20X (NA 0.75) וטכניקות דימות פלואורסצנטי confocal סטנדרטיות (למשל., עם DAPI מוכתם דגימות להאיר עם לייזר 405 ננומטר ולאסוף אותות הקרינה בין 425 - 475 ננומטר, ועם Alexa פלואוריד 594 או הנילוס דגימות האדום מוכתם להאיר עם לייזר 561 ננומטר ולאסוף אותות הקרינה בין 570 - 620 ננומטר).
  8. צור תמונת Z-ערימות של כל אזור של עניין באמצעות תוכנת רכישת תמונת מיקרוסקופ Z-מחסנית (למשל., באמצעות אלמנטי ש"ח הדמית תוכנת 4.13 כמתואר להלן).
    1. ודאו כוח ליזר אופטימלי PMT HV / הגדרות אופסט נבחרו לאסוף קרינה מדגמת.
    2. פתח את סרגל הכלים "ND הרכישה" מ "בקרות רכישה".
    3. בחר "סדרת הגדרת Z" כרטיסייה (להבטיח את כל הכרטיסיות האחרות הן לא מסומנות).
    4. בעוד סריקה בזמן אמת, להתמקד לחלק העליון של המדגם ולחץ על כפתור "למעלה".
    5. פוקוס על החלק התחתון של המדגם ולחץ על הכפתור "התחתי".
    6. גודל קלט צעד נדרש (או כפתור גודל צעד אופטימיזציה עיתונות).
    7. מִרֹאשׁss את "הפעל כעת" כפתור.
    8. שמור ערימות-Z כתוצאה כמו ערימות התמונה Tiff הפרט (1 fluorochrome לכל מחסנית Z תמונה).
  9. השתמש Z- ערימות תמונה לשחזר אזורי 3D נפח של עניין באמצעות תוכנת ניתוח 3D (למשל., באמצעות Imaris x64 7.2.3 כמפורט להלן).
    1. התחל תוכנת ניתוח.
    2. בחר "לעלות" כפתור בסרגל הכלים עבור מהיקף כושר הייצור 3D.
    3. להרחיב הראשונה תמונה צבעונית מחסנית Z (למשל., DAPI).
    4. השתמש בכלי 'הוסף ערוץ' כדי להוסיף ערוצי צבע נוספים, ערוץ אחד לכל fluorochrome. כך מדגם המכיל גם DAPI ו אלקסה פלואוריד 594 fluorochromes ידרוש שני ערוצים.
    5. השתמש באפשרות "מאפייני תמונה" כדי להגדיר פיקסל הנכון (voxel) ממדים (XYZ), כפי שנקבע 4.7 לעיל.
    6. השתמש "לכיוון תצוגה" כלי לשנות צבעים ערוץ לפי הצורך (למשל, להגדיר ערוץ DAPI לכחול, Alexa פלואוריד 594 ערוץ לאדום).
    7. לפוsition נפח 3D בחלון התמונה, להשתמש בעכבר המחשב ללחוץ ונפח גרור כנדרש.
    8. השתמש באפשרות "Snapshot" בסרגל הכלים כדי ליצור צילומי מסך של תמונת 3D.
    9. השתמש באפשרות "האנימציה" בסרגל הכלים כדי ליצור סרטי סיבוב מדגם 3D.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

ביופסיות עור גב עובי מלאות של עכברי wildtype מבוגרים הובהרו, מוכתמים נוגדן מחייב סמן keratinocyte הבזליים Keratin14 (K14), גרעינים היו counterstained עם פתרון המכתים DAPI (איור 2 ו סרט 1).

גרעיני DAPI החיוביים נראו ברחבי המדגם (איור 2 א, ג), והכתימו K14 היה גלוי אך ורק שכבת הבסיס חד תא העבה של האפידרמיס interfollicular, ומתאר את בלוטות חלב (הכוכבית שחור), מעטפת ה...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

המנגנונים הרגולטוריים שליטת פיתוח הומאוסטזיס עור נלמדים הנפוץ ביותר 2D באמצעות חתך רקמות מכתים היסטולוגית או תיוג עם נוגדנים, המאפשר רק הערכה מוגבלת של מורפולוגיה עור, אוכלוסיות תאים או ביטוי חלבון. מספר שיטות פותחו כדי לשפר את להדמיה של הארגון המרחבי של תאים וחלבונים ברזולוצית תא בודד ב 3 ממדים ב mounts כל אפידרמיס 10-13. חלקם עם זאת כרוך הפרדת האפידרמיס מן הדרמיס, אשר מבחינה טכנית מאתגרת במיוחד באמצעות העור השעיר, ולעתים קרובות גורם לנזק לרקמות קרע של זקיקי השיער. כמו...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

החוקרים אין לי מה לחשוף.

תודות

אנו מודים אוסטרליים ביו-משאבים (Garvan מכון, אוסטרליה), מרכז המשאבים הביולוגי (אוסטרליה UNSW) ואת הטיפול בבעלי החיים & ועדת אתיקה לתמיכה בניסויים בבעלי חיים. עבודה זו נתמכה על ידי המועצה הלאומית למחקר בריאות הרפואית של אוסטרליה (פרויקט גרנט APP1062720). ד"ר סזאר פ Canales הוא מקבלי מלגה צ'ילה CONICYT-Becas (# 72,101,076). מר באסם Akladios היא כלת פרס לתארים מתקדמים הבינלאומי של אוניברסיטת ידי UNSW אוסטרליה.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
פרפורמלדהידסיגמא-אולדריץ' P6418
אתנול 96% (לא מפורק)אספקת כימיהUN1170
נילוס אדוםסיגמא-אולדריץ' 72485-100 מ"ג
4',6-דיאמידינו-2-פנילינדול (DAPI)Roche10236276001
N,N,N',N' -tetrakis (2-הידרוקסיפרופיל) אתילנדיאמיןMerck Millipore821940
פוליאתילן גליקול מונו-p-איזואוקטילפניל אתרMerck Millipore648462
Triton X-100Merck Millipore648462
סוכרוזסיגמא-אולדריץ' S0389
טמפרטורת חיתוך אופטימלית (OCT) תרכובתרקמה-Tek4583
נוגדן נגד קרטין14CovancePRB-155P
נוגדן נגד Ki67 Abcamab16667
חמור נגד ארנב Alexa 594Life TechnologiesA21207
דימתיל-סולפוקסידסיגמא-אולדריץ' D2650
אוריאהMerck Millipore66612
2,2′,2′ '-ניטרילוטריאתנולMerck Millipore137002
מיקרוסקופ קונפוקליניקון אינסטרומנטס בע"מניקון A1 - מיקרוסקופ
cruZer6 גוזם פניםבראון בראון cruZer6 פנים
נתרן אזידסיגמא-אולדריץ' 
, קונפוקלי438456

מקורות

  1. Fuchs, E. Scratching the surface of skin development. Nature. 445 (7130), 834-842 (2007).
  2. Watt, F. M., Lo Celso, C., Silva-Vargas, V. Epidermal stem cells: an update. Curr Opin Genet Dev. 16 (5), 518-524 (2006).
  3. Hardy, M. H. The secret life of the hair follicle. Trends Genet. 8 (2), 55-61 (1992).
  4. Lim, X., Nusse, R. Wnt signaling in skin development, homeostasis, and disease. Cold Spring Harb Perspect Biol. 5 (2), (2013).
  5. Susaki, E. A., et al. Whole-brain imaging with single-cell resolution using chemical cocktails and computational analysis. Cell. 157 (3), 726-739 (2014).
  6. Susaki, E. A., Tainaka, K., Perrin, D., Yukinaga, H., Kuno, A., Ueda, H. R. Advanced CUBIC protocols for whole-brain and whole-body clearing and imaging. Nat Protoc. 10 (11), 1709-1727 (2015).
  7. Tainaka, K., et al. Whole-body imaging with single-cell resolution by tissue decolorization. Cell. 159 (4), 911-924 (2014).
  8. Beverdam, A., Claxton, C., Zhang, X., James, G., Harvey, K. F., Key, B. Yap controls stem/progenitor cell proliferation in the mouse postnatal epidermis. J Invest Dermatol. 133 (6), 1497-1505 (2013).
  9. Fuchs, E., Green, H. Changes in keratin gene expression during terminal differentiation of the keratinocyte. Cell. 19 (4), 1033-1042 (1980).
  10. Braun, K. M., Niemann, C., Jensen, U. B., Sundberg, J. P., Silva-Vargas, V., Watt, F. M. Manipulation of stem cell proliferation and lineage commitment: visualisation of label-retaining cells in wholemounts of mouse epidermis. Development. 130 (21), 5241-5255 (2003).
  11. Hamilton, E., Potten, C. S. Influence of hair plucking on the turnover time of the epidermal basal layer. Cell Tissue Kinet. 5 (6), 505-517 (1972).
  12. Morris, R. J., Fischer, S. M., Slaga, T. J. Evidence that a slowly cycling subpopulation of adult murine epidermal cells retains carcinogen. Cancer Res. 46 (6), 3061-3066 (1986).
  13. Schweizer, J., Marks, F. A developmental study of the distribution and frequency of Langerhans cells in relation to formation of patterning in mouse tail epidermis. J Invest Dermatol. 69 (2), 198-204 (1977).
  14. Chang, H., Wang, Y., Wu, H., Nathans, J. Flat mount imaging of mouse skin and its application to the analysis of hair follicle patterning and sensory axon morphology. J Vis Exp. (88), e51749(2014).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

K14Ki67ocytes Nile RedDAPI

מאמרים קשורים