הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

Murine אבי העורקים למחוץ פגיעה: יעיל

8.1K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/55201

⸱

11 ביוני 2017

 ,  ,  ,  , 

במאמר זה

סיכום

Restenosis לאחר הליכים Cardiovascular (ניתוח מעקף, אנגיופלסטיקה, או stenting) היא בעיה משמעותית להפחית את עמידות של נהלים אלה. טיפול אידיאלי יהיה לעכב תפוצת שריר חלקה (VSMC) תוך קידום התחדשות האנדותל. אנו מתארים מודל להערכה סימולטנית של התפשטות VSMC ותפקוד האנדותל in vivo.

תקציר

שחזור עורקי, בין אם ניתוח אנגיופלסטי או ניתוח מעקף, כולל טראומה יאטרוגנית הגורמת לשיבוש אנדותל ותפוצת תאי שריר חלקה (VSMC). מודלים מורין משותף ללמוד כלי קטן כגון עורקי הראש ואת עורקי הירך. להלן אנו מתארים מערכת vivo שבו שתי התפשטות VSMC ו פונקציה מחסום האנדותל ניתן להעריך בו זמנית בכלי גדול. למדנו את התגובה העורקים infrarenal לפציעה C57BL / 6 עכברים. אבי העורקים נפגעו מהוריד הכליתי השמאלי עד לשתי ההתהוות של אבי העורקים על ידי 30 ריסקות טרנסמומיות של משך 5 שניות עם מוליך כותנה. שינויים מורפולוגיים הוערכו עם היסטולוגיה קונבנציונלית. עובי דופן העורקים נמדד מן המשטח לומינליטיה. שילוב EDU וכתמים נגד עם DAPI ואלפא אקטין שימש להדגים התפשטות VSMC. הפעלת ERK1 / 2, מנחה ידוע של היווצרות היפרפלזיה אינטימית, הרתיעהממוקש על ידי ניתוח כתם המערבי. ההשפעה של דלקת נקבע על ידי אימונוהיסטוכימיה עבור תאים B, T- תאים, ומקרופאגים . En פנים קטעים של האנדותל היו דמיינו עם מיקרוסקופ אלקטרונים סריקה (SEM). פונקציה אנדותל המכשול נקבע עם מכתים Evans כחול. פגיעה בחצי הדם גרמה לעיבוי קיר העורקים. פגיעה זו גרמה להתפשטות VSMC, הבולט ביותר ב 3 ימים לאחר הפציעה, ואת ההפעלה המוקדמת של ERK1 / 2 ו ירד p27 ביטוי kip1. פגיעה לא הביאה לגידול בתאי B, תאי T, או חדירת מקרופאגים בקיר הספינה. פציעה גרמה למחלות תא אנדותליות חלקיות ולאובדן מגע של תאים תאיים. פגיעה גרמה לאובדן משמעותי של תפקוד מחסום האנדותל, אשר חזר לקו הבסיס לאחר שבעה ימים. Murine transmural בוטה אב העורקים מודל הפציעה מספקת מערכת יעילה כדי ללמוד בו זמנית הן התפשטות VSMC ו מחסום אנדותל פונקציה בכלי גדול.

מבוא

רסטנוזה ניתוח מעקפים (ניתוח מעקפים, אנגיופלסטיקה או סטנט) הוא בעיה משמעותית בהפחתת עמידותם של תהליכים אלה. כל ההליכים רה-וסקולריזציה הם מנוגע על ידי restenosis. האסטרטגיות הנוכחיות למניעת רסטנוזיס (סטנטים משחררים תרופה ובלונים מצופים בסמים) מעכבים את תאי השריר החלקים של כלי הדם (VSMC) ואת התפשטות תאי האנדותל (EC). כתוצאה מכך, התערבויות אלה למנוע restenosis מתווך VSMC, אלא גם למנוע את התחדשות האנדותל. ללא אנדותל שלם, החולים נדרשים להיות על סוכנים נוגדי טסיות חזק כדי להקטין את הסיכון של פקקת באתרו בסיכון של דימום סיבוכים. טיפול אידיאלי יהיה לעכב התפשטות VSMC תוך קידום התחדשות האנדותל. לכן, יש צורך בו זמנית מחקר התפשטות VSMC ו מחסום אנדותל פונקציה אני vivo .

נכון להיום, יש לנתקמודלים העכבר של restenosis 1 . מודלים אלה כוללים קשירת עורקים ופציעה עורק הירך חוט 2 . מודלים אבי העורקים כוללים מיקום סטנט 3 , פגיעה בלון 4 , ו alortraft אבי העורקים 5 . כל המודלים הנוכחיים מוגבלים. Carutid קשירת מייצר זורם בתיווך neointimal הנגע ואין פגיעה אנדותל. בנוסף, הן עורקי הראש ואת הירך יש הרבה פחות שכבות תאים פחות מאשר כלי אדם, הגבלת הערך translational שלהם. אבי העורקים של העכבר הוא כ 1.3 מ"מ קוטר, הוא כלי שיט רק הקרובה לעורק אנושי קליני (רלוונטי) קלינית (3).

למרות פוטנציאל translational של מודלים אבי העורקים של Murine, מודלים הנוכחי יש מגבלות. מודלים אלה דורשים מיומנויות מתקדמות microsurgical וציוד מיוחדים כגון בלונים אנגיופלסטי ו stents. כאן אנו מציגיםרומן, טכניקה לשחזור בו זמנית לעורר התפשטות VSMC ולשבש את תפקוד מחסום האנדותל.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

הצהרת האתיקה: הפרוטוקולים לטיפול בבעלי חיים אושרו על ידי הוועדה המוסדית לטיפול בבעלי חיים ושימוש (IACUC) של אוניברסיטת מרילנד (פרוטוקול מס '0416009) ונערכו על פי תקני AAALAC-International.

1. הליך כירורגי

  1. טכניקת הרדמה
    1. לעקר את כל המכשירים המשמשים ניתוח הישרדות עם קיטור עיקור ב 121 מעלות צלזיוס למשך 30 דקות.
    2. להשרות הרדמה באמצעות מיכל אינדוקציה עם 100% O 2 ו 2.5% isoflurane נמסר באמצעות מאדה דיוק. לאחר אינדוקציה, להפסיק את isoflurane ולשטוף את החדר עם O 2 . לשמור על הרדמה עם isoflurane 1.5-2% באמצעות מסכת פנים 1 L / min O 2 על ידי שאיפה.
    3. צרף הן את החדר אינדוקציה ומסכה בפני נזלת פחם עבור ספיגת גז פסולת כדי להגן על כוח אדם. ודא מטוס הרדמה נאותה על ידי הדגמהכי אין תגובה לגירויים מזיקים (קמצוץ הבוהן).
    4. יצירת שדה אופרטיבי המורכב מגש כירורגי עם כרית איזותרמית לספק תמיכה תרמית במהלך הניתוח. כרית איזותרמית נוספת תספק תמיכה תרמית לבעלי חיים כלוב ההתאוששות שלהם.
  2. הכנת בעלי חיים
    1. בצע את החקירה הבאה על 10-12 שבועות זכר C57BL זכר / 6 עכברים.
    2. הסר את השיער על פני הבטן הגחון של החיה מן עצם החזה לאזור המפשעה עם סוכן דפילציה או קליפר חשמל עם להב מספר 40.
      1. במקרה של סוכן דפילציה, להחיל מתחם זה לאזור כירורגי במשך 2-3 דקות ולאחר מכן להסיר אותו עם כותנה. אנו משתמשים במתחם זמין מסחרית של סידן הידרוקסיד ו hydroxide נתרן.
    3. הכן את האזור על הכתף עם אלכוהול 70% ו subcutaneous להזריק carprofen (5 מ"ג / ק"ג) עם 25 מד או מחט קטן יותר נשא. זֶההטיפול יספק כאבים לאחר הניתוח עבור החיה.
    4. מעבירים את החיה לשדה הניתוח וממקמים שכיבה הגב.
    5. הכן את האתר כירורגית על ידי מקרצף 8-12% providone- יוד עם applicator כותנה נקי או גזה כותנה. לאחר מכן לשטוף את העור פעמיים עם אלכוהול 70%.
    6. מניחים חומר סיכה עיניים בשתי העיניים כדי להפחית את השכיחות של יובש הקרנית. לכסות את האתר כירורגי עם וילון סטרילי.
  3. טכניקה אופרטיבית
    1. הפוך חציון בטן laparotomy בטן כ 2-2.5 ס"מ אורך עם אזמל מתחיל מיד הזנב את תהליך xiphoid ומתרחב לכיוון האגן.
    2. מוסיפים את המעי הדק ואת התריסריון ומשקפים לרוחב ימינה. מגלגלים רצועה של כותנה סטרילית גזה ספוג עם תמיסת מלח סטרילית להזרקת כדי לאפשר אריזה של viscera כדי לשפר את החשיפה.
    3. עם המעי הדק מגויס בצד ימין שלהבטן, לחשוף את retroperitoneum לחשוף את אבי העורקים הבטן מן הווריד הכליתי השמאלי כדי bifurcation אבי העורקים ( איור 1 ).
    4. עם המוליך סטרילי צמר גפן, לספק 30 רצופים רצופים, כל חמש שניות משך.
    5. הסר את האריזה ולאפשר viscera לחזור למקום הילידים שלהם.
    6. סגור fascia עם ריצה תפר חד פעמיות 4-0 absorbable (polydioxanone). העור הוא סגור עם ריצה 6-0 non-absorbable תפר monofilament (ניילון).
  4. שחזור וטיפול לאחר הטיפול
    1. לאחר ההליך, במקום החיה בכלוב התאוששות עם מצעים נקיים על כרית isothermal להמשיך תמיכה תרמית עד בעל החיים הוא מסוגל אמבולט בדרך כלל. אל תעזוב את החיה ללא השגחה עד שהדבר יוכיח את היכולת לשמור על שכיבה.
    2. לפקח על החיה בכל שעה במשך 4 שעות לאחר הניתוח הראשון. לאחר החיה אמבולטינג בדרך כלל לחזור אני לא לחדר ההקצאה שהוקצה. החיה לא תשכן בחברה של חיה אחרת עד שתחלים לגמרי.
    3. לפקח על החיה פעמיים ביום עבור הראשון 72 שעות לאחר הניתוח לפחות 3 פעמים בשבוע לאחר מכן. הניטור כולל שקילת החיה שלוש פעמים בשבוע.
    4. ניהול carpofen (5 מ"ג / ק"ג) תת עורית פעמיים ביום עבור הראשון 72 שעות לאחר הניתוח.

2. רכש של רקמות

  1. שיטת המתת חסד
    1. להרדים את החיות בנקודות זמן קבועות מראש.
    2. להשרות הרדמה באמצעות מיכל אינדוקציה עם 100% O 2 ו 2.5% isoflurane נמסר באמצעות מאדה דיוק.
      1. כדי ללמוד את השלמות של האנדותל, Admin Evans כחול לצבוע את החיה.
        הערה: אוואנס כחול הוא צבע Azo טעונה שלילית עם זיקה מחייב גבוהה עבור אלבומין והוא יכול רק כלי דם כתם בהיעדר אנדותל שלםS = "xref"> 6.
      2. עבור מחקרים שלמות האנדותל, בזמן המתת חסד, perfuse החיות עם 5 מ"ל של 0.3% אוונס צבע כחול ואחריו 5 מ"ל PBS בלחץ פיזיולוגי במשך 5 דקות. החיה נשמרת במישור כירורגי של הרדמה במהלך הליך זלוף.
    3. לאחר השגת מטוס הרדמה עמוק, לפתוח את החזה עם סטרנוטומי. לעשות חתך באטריום הנכון כדי לאפשר ניקוז של דם מן החיה וגישה החדר השמאלי הוא ניגש עם מחט 21 G להזריק פוספט שנאגרו מלוחים (PBS) עד השפכים מן אטריום ימין ברור.
    4. לאחר זלוף עם PBS, הזן את הבטן דרך חתך קו האמצע.
    5. שוב, לגייס את המעי הדק בצד הימני של הבטן לחשוף את אבי העורקים infrenal, בחדות לנתח את אבי העורקים הסמוכים לרקמות ובלו אותו מן הווריד הכליתי השמאלי כדי bifurcation אבי העורקים.
    6. חנות אבי העורקים הוסר ב paraformald 4%פתרון ehyde עד עיבוד רקמות מתרחשת.
      1. עבור מחקרים שלמות האנדותל, לפתוח את אבי העורקים longitudinally ולהצמיד אותו גיליון שעווה לחשוף את כולו של משטח luminal 6 . ביצוע הערכה איכותית של שלמות האנדותל על ידי מידת מכתים עם צבע כחול אוואנס 6 .
      2. עבור מבחני היסטולוגיה אחרים, סעיף אבי העורקים באופן רוחבי להטביע אותו אופטימלית טמפרטורת חיתוך (OCT) תרכובות כפי שהוכתב על ידי השיטה היסטולוגית לשמש 7 .

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

סעיפים אביזר רוחבי מוטבע OCT היו מחולקים, ומוכתמים hematoxylin ו eosin לאחר מכן מוכתמות עם כתם Verhoeff- ואן Gieson (VVG) לזהות את lamina אלסטית פנימיים וחיצוניים 7 . פציעה מוחצת גרמה לעיבוי קיר אבי העורקים בהשוואה לאורטאס של בעלי חיים שטופלו בהליך דמה (laparotomy וגירוי מעיים קטן בלבד). עובי דופן, כפי שהוערך על ידי המרחק מ adventitia לומן, היה הגדול ביותר שלושה ימים לאחר הפציעה (42.2 ± 1.7 מיקרומטר לעומת 22.1 ± 1.1 מיקרומטר...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

יש לנו מאופיין את ההשפעות של מודל פגיעה אבץ Murine שמביא hyperplasia המדיאלי תפקוד לקוי של האנדותל. ניתוק EC חלקי לאורך האינטימה של אבי העורקים מלווה באובדן מגע של תאים סלולריים ושיפור של בליטות התא. במקביל, תפקוד מחסום האנדותל היה לקוי באופן משמעותי, אשר גירוי נתיבי איתות המיטוגניים רגישים, מה שמוביל לשגשוג של VSMCs ועיבוי של קיר כלי השיט. נקודות החוזק של מודל זה הן כי קל יותר מבחינה טכנית ללמוד ולבצע מאשר מודלים אחרים של אבי העורקים של המחלה ומאפשר הערכה סימולטנית הן של התגובה ל...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

עבודה זו מומנה על ידי המחלקה לענייני וותיקים לענייני פיתוח קריירה פרס (1IK2BX001553-01) (TSM) ואת התרופות וסקולרי EJ Wylie מלגות (TSM).

תודות

אנו מודים Hsia Ru-ching דוקטורט, מן אלקטרונית מיקרוסקופית הליבה מתקן של אוניברסיטת מרילנד בית הספר לרפואה, על התמיכה הטכנית שלה בעיבוד סריקה דגימות מיקרוסקופיה אלקטרונית.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
חומר סיכה לעינייםDechra17033-211-38חומרים פרמצבטיים
IsofluraneVetOne502017חומרים פרמצבטיים
קרפרופןZoetis26357חומרים פרמצבטיים
וופורייזר מדויקSummit Medical10675אספקה כירורגית
נבלות פחםביקפורד בע"מ80120ציוד כירורגי
כרית איזותרמיתמכשיר הרווארד50-7053-Rציוד כירורגי
מוליך כותנה סטריליפישר סיינטיפיק23-400-124ציוד כירורגי
4-0 תפר מונופילמנט נספג Ethicon, IncJ310אספקה כירורגית
5-0 תפר מונופילמנט שאינו נספגEthicon, Inc1666אספקה כירורגית
21 מד x 1 אינץ' מחטBD Biosciences305165אספקה כירורגית
25 מד x 1 אינץ'  מחטBD Biosciences305125אספקה כירורגית
מעקר יבשCellpoint 7770ציוד כירורגי
מספריים עדיניםכלי מדע עדינים14058-09מכשירים כירורגיים
מלקחיים אדסוןכלי מדע עדינים11006-12מכשירים כירורגיים
Dumont #5 מלקחיים עדיניםכלי מדע עדינים11254-20מכשירים כירורגיים
Vannas מספריים קפיצים 3 מ"מ קצה חיתוךכלי מדע עדינים15000-00מכשירים כירורגיים
נהג מחטכלי מדע עדינים91201-13מכשירים כירורגיים
ידית אזמל #4כלי מדע עדינים10004-13מכשירים כירורגיים
להבי אזמל #10כלי מדע עדינים10010-00מכשירים כירורגיים
PBS Lonza17-516Fריאגנטים לעיבוד רקמות
Evans BlueSigma-AldrichE2129ריאגנטים לעיבוד רקמות
ParaformaldehydeSigma-AldrichP6148ריאגנטים לעיבוד רקמות
דוגמנות שעווהBego40001ריאגנטים לעיבוד רקמות
תרכובת OCTTissue-Tek Sakura4583ריאגנטים עבור עיבוד רקמות
תמיסת המטוקסילין של מאיירסיגמא-אולדריץ'MHS16ריאגנטים לניתוח אימונוהיסטולוגי
תמיסת Eosin Y אלכוהולית Sigma-AldrichHT110316ריאגנטים לניתוח אימונוהיסטולוגי
ערכת כתמי אלסטיןSigma-AldrichHT25Aריאגנטים לניתוח אימונוהיסטולוגי
Click-it Edu Alexa-488 ערכת הדמיהInvitrogenC10337ריאגנטים לניתוח אימונוהיסטולוגי
Anti-Erk1/2 נוגדניםטכנולוגיית איתות תאים4695ריאגנטים לאימונוהיסטולוגי ניתוח
אנטי-פוספו-Erk1/2 נוגדניםטכנולוגיית איתות תאים4370ריאגנטים לניתוח אימונוהיסטולוגי
אנטי-p27kip1נוגדנים טכנולוגיית איתות תאים3698ריאגנטים לניתוח אימונו-היסטולוגי
חומצה טריכלורואצטיתסיגמא-אולדריץ'T9159ריאגנטים לניתוח אימונוהיסטולוגי

מקורות

  1. Carmeliet, P. Mechanisms of angiogenesis and arteriogenesis. Nat Med. 6 (4), 389-395 (2000).
  2. Carmeliet, P., Moons, L., Collen, D. Mouse models of angiogenesis, arterial stenosis, atherosclerosis and hemostasis. Cardiovasc Res. 39 (1), 8-33 (1998).
  3. Baker, A. B., et al. Heparanase Alters Arterial Structure, Mechanics, and Repair Following Endovascular Stenting in Mice. Circ Res. 104 (3), 380-387 (2009).
  4. Petrov, L., Laurila, H., Hayry, P., Vamvakopoulos, J. E. A mouse model of aortic angioplasty for genomic studies of neointimal hyperplasia. J Vasc Res. 42 (4), 292-300 (2005).
  5. Li, J., et al. Vascular smooth muscle cells of recipient origin mediate intimal expansion after aortic allotransplantation in mice. Am J Path. 158 (6), 1943-1947 (2001).
  6. Radu, M., Chernoff, J. An in vivo assay to test blood vessel permeability. J Vis Exp. (73), e50062(2013).
  7. Turbett, G. R., Sellner, L. N. The use of optimal cutting temperature compound can inhibit amplification by polymerase chain reaction. Diagn Mol Pathol. 6 (5), 298-303 (1997).
  8. Puchtler, H., Waldrop, F. S. On the mechanism of Verhoeff's elastica stain: a convenient stain for myelin sheaths. Histochem. 62 (3), 233-247 (1979).
  9. Salic, A., Mitchison, T. J. A chemical method for fast and sensitive detection of DNA synthesis in vivo. Proc Natl Acad Sci U S A. 105 (7), 2415-2420 (2008).
  10. Nelson, P. R., Yamamura, S., Mureebe, L., Itoh, H., Kent, K. C. Smooth muscle cell migration and proliferation are mediated by distinct phases of activation of the intracellular messenger mitogen-activated protein kinase. J Vasc Surg. 27 (1), 117-125 (1998).
  11. Rzucidlo, E. M. Signaling pathways regulating vascular smooth muscle cell differentiation. Vascular. 17, Suppl 1. S15-S20 (2009).
  12. Aoki, T., Sumii, T., Mori, T., Wang, X., Lo, E. H. Blood-brain barrier disruption and matrix metalloproteinase-9 expression during reperfusion injury: mechanical versus embolic focal ischemia in spontaneously hypertensive rats. Stroke. 33 (11), 2711-2717 (2002).
  13. Yu, D., et al. MARCKS Signaling Differentially Regulates Vascular Smooth Muscle and Endothelial Cell Proliferation through a KIS-, p27kip1- Dependent Mechanism. PLoS One. 10 (11), e0141397(2015).
  14. Banai, S., et al. Rabbit ear model of injury-induced arterial smooth-muscle cell-proliferation - kinetics, reproducibility, and implications. Circ Res. 69 (3), 748-756 (1991).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

גלה מאמרים נוספים

שגשוג תאי שריר חלק וכולייםתפקוד מחסום אנדותליאליצביעת Evans Blueמיקרוסקופיה אלקטרונית סורקתאנליזת Western Blotשילוב EdUעכברי C57BL/6אביון תת-כלייתיפגיעה טרנסמוראלית