מאמר שיטה

MitoCeption: העברת המיטוכונדריה MSC אדם מבודד בתאי גזע Glioblastoma

DOI:

10.3791/55245

⸱

22 בפברואר 2017

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Institute for Regenerative Medicine and Biotherapy (IRMB), INSERM U1183, Montpellier University, 2Institute of Neurosciences of Montpellier (INM), INSERM U1051, Montpellier University

במאמר זה

סיכום

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

כאן, פרוטוקול (MitoCeption) מוצג להעביר המיטוכונדריה, מבודדת מתאי גזע mesenchymal אדם (MSC), לתאי גזע גליובלסטומה (GSC), במטרה ללמוד ההשפעות הביולוגיות שלהם על מטבוליזם ופונקציות GSC. פרוטוקול דומה ניתן להתאים להעביר המיטוכונדריה בין סוגי תאים אחרים.

תקציר

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

המיטוכונדריה לשחק תפקיד מרכזי בחילוף החומרים בתא, ייצור אנרגיה ובקרה של אפופטוזיס. במיטוכונדריה הלקויה כבר נמצאה אחראי מחל מגוונות מאוד, החל פתולוגיות נוירולוגיות לסרטן. מעניין לציין, כי המיטוכונדריה הוכחה לאחרונה כדי להציג את היכולת שיועבר בין סוגי תאים, בעיקר מתאי גזע mesenchymal אדם (MSC) לתאים סרטניים בתנאי coculture, עם השלכות מטבוליות פונקציונליות תאי הנמען המיטוכונדריה, עוד שיפור הריבית הנוכחית עבור התכונות הביולוגיות של אברונים אלה.

הערכת ההשפעות של המיטוכונדריה הועבר MSC בתאי המטרה היא בעלת חשיבות מרכזית להבנת התוצאה הביולוגית של אינטראקציות תאים תאים כאלה. פרוטוקול MitoCeption המתואר כאן מאפשר העברת המיטוכונדריה מבודד מראש מתאי התורם לתאי היעד, באמצעות המיטוכונדריה MSCותאי גזע גליובלסטומה (GSC) כמערכת מודל. פרוטוקול זה נעשה שימוש בעבר להעביר המיטוכונדריה, מבודד MSCs, כדי חסיד תאים סרטניים מד"א- MB-231. פרוטוקול העברת המיטוכונדריה זה מותאם כאן GSCs המציג את הייחוד הספציפי של גדל כמו neurospheres במבחנה. העברת המיטוכונדריה המבודד ניתן ואחריו תא קרינת מיון מופעל (FACS) והדמית confocal באמצעות המיטוכונדריה צבעים חיוניים. השימוש בתאי תורם היעד המיטוכונדריה עם haplotypes הברור (SNPs) גם מאפשר זיהוי של המיטוכונדריה הועבר מבוסס על הריכוז של הדנ"א המיטוכונדרי חדרם (mtDNA) בתאי המטרה. לאחר הפרוטוקול יאומת עם קריטריונים אלה, התאים מחסת המיטוכונדריה הועברה ניתן לבצע עיבוד נוסף כדי לקבוע את ההשפעות של המיטוכונדריה אקסוגניים על תכונות ביולוגיות כגון חילוף חומרים בתא, פלסטיות, שגשוג ואת תגובה לטיפול.

מבוא

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

המיטוכונדריה הם אברונים המצוי בתאי איקריוטיים שבו הם משחקים תפקיד מרכזי ספיגת חומרים מזינים כמו גם בייצור אנרגיה המטבוליט. אברונים אלה מכילים DNA המיטוכונדרי עגול (mtDNA), ארוך 16.6 kb, המקודד חלבונים של מתחמי שרשרת העברת אלקטרונים, tRNAs ו rRNAs 1. הפונקציונליות של אברונים אלה חיונית הומאוסטזיס תא וכמה פתולוגיות קושרו עם המיטוכונדריה בתפקוד 1, 2, 3. מעמדו המיטוכונדריה יש למשל נקשר דלקת, מחלות זיהומיות וסרטן, במקרה זה האחרון שיש לו השלכות על גרורות והתנגדות לטיפול 4, 5, 6, 7.

המיטוכונדריה להציג את היכולת המדהימה של מקבל מועברים בין "תורם" ותאיים "יעד". זה מוביל לשינויים במטבוליזם האנרגטי של תאי היעד, כמו גם שינויים פונקציונליים אחרים כגון ריפוי רקמות ועמיד בפני תרופות כימותרפיות, כפי שמוצג לאחרונה על ידי מעבדות שונות 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15 , 16. תאי הגזע mesenchymal האדם (MSCs) להציג את היכולת הזו כדי להעביר המיטוכונדריה למגוון רחב של תאים היעד, כולל שריר הלב, תאי אנדותל, תאי אפיתל המכתשית ריאתי, תאים צינורי כליות ותאי סרטן, מה שמוביל שינויים של תכונות פעילות של תאים אלה 8,> 9, 10, 12, 17, 18.

המיטוכונדריה החליפין כעת נראה כמנגנון בשימוש נרחב המאפשר מספר תאים מסוגים שונים כדי לתקשר אחד עם השני ולשנות התכונות הביולוגיות שלהם. חילופי המיטוכונדריה זה יכול להתרחש דרך צינורות מנהור היווצרות (TNT), מעורבים צמתים הפער המכילים 43 connexin 8 או M-Sec / TNFaip2 ואת exocyst 19 מורכבים. לחילופין, העברת המיטוכונדריה הוצגה גם בתיווכה arrestin המכילים תחום חלבון microvesicles 1 בתיווך (ARMMs) 20. מעניין, את היעילות של העברת המיטוכונדריה היה צמוד לשער ביטוי של 1 GTPase Rho MIRO1 21, גורם מפתח להסברת ההבדלים efficacies העברת המיטוכונדריה בין iPSC-MSCs ומבוגר BM-MSCs 22.

למרות העושר הזה של נתונים בדבר תא אל תא חליפין המיטוכונדריה, מעט יחסית ידוע על מטבוליות התוצאה ביולוגית של העברת המיטוכונדריה זה. לכן, זה לגמרי מצדיק הקים את הכלים המתאימים על מנת להעריך את ההשפעות הביולוגיות מלא מההעברה. במהלך השנים, גישות טכנולוגיות כמה להעביר המיטוכונדריה מתורם תאי acceptor הוצע. זה כולל הזרקה ישירה של המיטוכונדריה לתוך ביציות 23, 24, 25, איחוי תאים כדי ליצור cybrids transmitochondrial 26, 27 ולאחרונה, העברת המיטוכונדריה מבודד באמצעות photothermal nanoblades 28.

אנחנו ואחרים בעבר הדגימו את היכולת של mitochond המבודדריה להפנים תאים חיים, כפי שנצפה הן במבחנה in vivo 29, 30, 31, דרך המנגנונים המוצעים לערב macropinocytosis 32. בנוסף, אנו פתחנו שיטה, בשם MitoCeption, להעביר כמותית המיטוכונדריה מבודד (מ MSCs) כדי למקד תאים, כפי שהודגמו עם (החסיד) מד"א- MB-231 תאי סרטן שד קו 31. פרוטוקול זה הותאם כאן להעברת המיטוכונדריה MSC אדם המבודדת תאי גזע גליובלסטומה (GSCs).

גליובלסטומה הן גידולים ממאירים אגרסיביים של המוח במהירות לפתח עמידות לטיפול, בעיקר בשל תאי גזע גליובלסטומה (GSC) נוכחים בתוך הגידול 33. GSCs אלה גדלים כמו neurospheres במבחנה וליצור גידולים במודלים xenograft. יש תאים סרטניים בתוך גליובלסטומהיכולת לעשות תא אל תא קשרים, כפי שמוצג לאחרונה עבור תאים סרטניים במוח astrocytic כי קישוריות באמצעות microtubes המורחבת, שדרכו המיטוכונדריה (וכן גרעיני סידן תא) יכולה להעביר, וכתוצאה מכך רשתות אסטרוציטומה עמידות הקרנות 34. גליובלסטומה יכול לגייס תאים שונים בתוך microenvironment הגידול, כולל MSCs 35, 36. הראינו כי MSCs יכול ליצור קשרים תאים תאים עם GSCs ב coculture ולהעביר המיטוכונדריה שלהם (מידע לא מוצג), אשר צפויה לשנות תכונות פעילות GSC. הפרוטוקול הנוכחי מתאר כיצד הטכניקה MitoCeption ניתן להשתמש כדי להעביר המיטוכונדריה, לפני כן מבודד MSCs האדם, כדי GSCs אדם עם לצורך קביעת התוצאה ביולוגי הפעילות שלהן. מולטיפוטנטיים ומאוד tumorigenic קו Gb4 GSC 37 נעשה שימוש במחקר זה.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

יום 1

1. תיוג של תא גזע mesenchymal (MSC) המיטוכונדריה (אופציונלי)

  1. יומיים לפני ההכנה המיטוכונדריה, זרע MSCs האדם בצלחת תרבות 100 מ"מ, 10 מ"ל αMEM / FBS 10%, כדי שיהיה 4 x 10 5 MSCs בתרבות ביום 1.
  2. לשטוף MSCs עם PBS (4 מ"ל) ולהוסיף 4 מ"ל αMEM / FBS 1% (prewarmed עד 37 ° C).
  3. להוסיף את הכמות הנדרשת של צבע המיטוכונדריה חיוני דגירת תאים למשך 30 דקות ב 37 מעלות צלזיוס החממה.
  4. הסר את הפתרון לצבוע המיטוכונדריה, לשטוף תאים פעמיים עם 4 מ"ל prewarmed (37 ° C) αMEM / FBS 1% ולהוסיף בחזרה 4 מ"ל αMEM / FBS 10%. דגירת תאים ב 37 מעלות צלזיוס.
  5. שנה את המדיום תרבות (10 מ"ל αMEM / FBS 10%) לאחר 30 דקות, זמן אחר, 2 שעות מאוחר יותר.

יום 1

2. תיוג של תאי גזע Glioblastoma (GSC) (אופציונלי, ראה סעיף דיון)

תרבית תאים בינוני הרכב
בינוני הבזליים GSC DMEM / F-12 השלימו עם
אינסולין 20 מ"ג / מ"ל
1x תוסף N2
גלוקוז 3 גר '/ ל
L- גלוטמין 2 מ"מ
בינוני התפשטות GSC הוסף מדיום הבסיס:
1x תוסף B27
EGF 10 ng / ml
bFGF 10 ng / ml
Fungine 10 מ"ג / מ"ל
Fungizone 0.25 מ"ג / מ"ל
הפרין 2 מ"ג / מ"ל
ציפרופלוקסאצין 2 מיקרוגרם / מ"ל
גנטמיצין 2 מיקרוגרם / מ"ל
בינוני התפשטות MSC & #945; MEM השלים עם
L- גלוטמין 2 מ"מ
10% FBS
bFGF 2 ng / ml
r.within-page = "1" FO: keep-עם-next.within-page = "תמיד">

טבלה 1: תרבות מדיה.

  1. לנתק GSCs (שורת תאים Gb4 32 (10 x 10 6 תאים) גדל כמו neurospheres על צלוחיות תרבית תאים מצופים פולי-המה (ראה צעדים 3.1 כדי 3.12).
  2. GSCs זרע בצלחת 48-גם ב 10 5 תאים / גם במדיום התפשטות GSC (500 μl) (ראו טבלה 1).
  3. צנטריפוגה את הצלחת ב 270 XG במשך 5 דקות ב 20 מעלות צלזיוס.
  4. להוסיף את הכמות הנדרשת של חיוני לצבוע תא דגירה למשך 30 דקות ב 37 מעלות צלזיוס.
  5. הוסף 500 μl של מדיום הבסיס GSC (טבלה 1) לכל טוב של צלחת 48-היטב.
  6. צנטריפוגה את הצלחת ב 270 XG ב 20 מעלות צלזיוס למשך 5 דקות. לשאוב supernatant.
  7. חזור על שלבים 2.5 כדי 2.6.
  8. הוסף 500 μl של מדיום בסיס GSC לדגור על 37 מעלות צלזיוס למשך 30 דקות.
  9. צנטריפוגה את הצלחת ב 270 XG ב 20 מעלות צלזיוס למשך 5 דקות. לשאוב supernatant.
  10. הוסף 500 μl של מדיום הפצת GSC לכל טוב של צלחת 48-היטב דגירה של 37 מעלות צלזיוס חממה.
    הערה: כמות GSCs מצוינת (10 x 10 6 תאים) מאפשר ביצוע ניסויי מנה-התגובה השונה ובקרות FACS. ברגע תנאי הניסוי הם לייתר דיוק מוגדר סכום זה יכול להיות scaled למטה.

יום 2

3. מתזמן של תאי גזע Glioblastoma

  1. אסוף את neurospheres GSC (10 x 10 6 תאים) על ידי צנטריפוגה ב 270 XG במשך 5 דקות, בטמפרטורה של 20 מעלות צלזיוס בתוך שפופרת 50 מ"ל.
  2. שטפו תאים עם 5 מ"ל של HBSS, צנטריפוגות ב 270 XG במשך 5 דקות ב 20 מעלות צלזיוס.
  3. לשאוב supernatant.
  4. בעדינות resuspend גלולה GSC ב 100 טריפסין-EDTA μl (0.25%) (מחיר 10 x 10 6 תאים)
  5. לדגור על 37 מעלות צלזיוס במשך 3 דקות.
  6. הוסף 10 μl 2 CaCl (20 מ"מ) ו -2 μl DNase אני (10 מ"ג / מ"ל).
  7. לנתק את neurospheres ידי pipetting בעדינות מעלה ומטה (30-50x) עם טפטפת P200. הימנע בועות. בדוק תחת מיקרוסקופ שכל GSCs הם ניתק.
  8. הוסף 10 μl מעכב טריפסין (5%) ו -10 מ"ל HBSS.
  9. צנטריפוגה GSCs ב 270 XG במשך 7 דקות ב 20 מעלות צלזיוס.
  10. בטל supernatant ולהוסיף 10 מ"ל בינוני הבזליים GSC (טבלה 1).
  11. רוזן GSCs עם תא ספירת תומה ואז צנטריפוגות התאים ב 270 XG במשך 7 דקות ב 20 מעלות צלזיוס.
  12. להוסיף נפח מתאים של המדיום התפשטות GSC (טבלה 1) כדי להגיע ריכוז הסלולר של 10 6 GSCs / מ"ל.
  13. GSCs Seed 10 5 (100 μl של השעיה התא) לכל גם צלחת 96-היטב.
  14. צנטריפוגה הצלחות ב 270 XG במשך 7 דקות ב 20 מעלות צלזיוס כדי לקבל GSCs על בוטטום של בארות.
  15. דגירת צלחת 96-היטב על 37 מעלות צלזיוס עד סעיף 5.

יום 2

4. בידוד המיטוכונדריה MSC

  1. כוונו את הטמפרטורה צנטריפוגות microtube עד 4 מעלות צלזיוס.
  2. כן שני צינורות 1.5 מיליליטר "A" ו- "C" המכיל חומרים כימיים עבור החילוץ המיטוכונדריה (ריאגנט 200 μl ו 400 μl מגיב C, הן המכילים מעכבי פרוטאז חינם-EDTA). כן 2 צינורות אחרים, שכותרתו "MSC" ו "מיטו". שמור את כל הצינורות על קרח. כמו כן להכין צינורות עבור דילולים סדרתי המיטוכונדריה.
  3. לשטוף MSCs עם 10 מ"ל prewarmed (37 ° C) PBS.
  4. לשטוף MSCs עם 2 מ"ל טריפסין (לא EDTA) במשך 10 שניות ולהוסיף 1 מ"ל טריפסין (לא EDTA). דגירת תאים עבור 5-10 דקות ב 37 מעלות צלזיוס.
  5. לשחזר את MSCs על ידי הוספת 10 מ"ל αMEM / FBS 10%, והעברת צינור 50 מ"ל.
  6. תאי צנטריפוגה ב 270 XG במשך 5 דקות ב 20 מעלות צלזיוס.
  7. בטל supernatant ולהוסיף10 מיליליטר αMEM / FBS 10% על גלולת התא.
  8. ספירת MSCs עם תא ספירת Malassez.
  9. צנטריפוגה MSCs (4-5 x 10 5) עמ '270 XG במשך 5 דקות ב 20 מעלות צלזיוס.
  10. בטל supernatant, להוסיף 1 מ 'קר כקרח αMEM / FBS 10% על גלולה התא ולהעביר את התאים אל הצינור "MSC" -labeled (מוכן בשלב 4.2). שמור את הצינור על הקרח.
  11. צנטריפוגה הצינור המכיל את MSCs ב 900 XG במשך 5 דקות, 4 ° C.
  12. הסר את כל בינוני שיורית מהצינור.
  13. הוסף 200 μl של בידוד המיטוכונדריה מגיב A (המכיל מעכבי פרוטאז חינם-EDTA). וורטקס במהירות בינונית במשך שניות 5 ולהשאיר צינורות על קרח דק 2 בדיוק.
  14. להוסיף 2.5 μl של בידוד המיטוכונדריה מגיב ב וורטקס במהירות מרבית למשך 10 שניות, ולאחר מכן לעזוב צינורות על קרח. חזור על כל 30 שניות למשך 5 דקות.
  15. הוסף 200 μl של בידוד המיטוכונדריה מגיב C (המכיל מעכבי פרוטאז חינם-EDTA). מערבבים על ידי הטיית הצינור (roughly 30 פעמים, לא מערבולת). צנטריפוגה התחתית XG 700 במשך 10 דקות ב 4 °.
  16. מעבירים את supernatant (המכיל את המיטוכונדריה MSC) אל הצינור "מיטו" (שהוכן בשלב 4.2).
  17. צנטריפוגה ב 3000 XG, 15 דקות ב 4 ° C, כדי לקבל גלולת המיטוכונדריה. בטל supernatant. הגלולה המכילה את המיטוכונדריה המבודד.
  18. יש לשטוף את גלולת המיטוכונדריה עם 200 μl של המגיב C. לאחר מכן, צנטריפוגה XG ב 12,000, 5 דקות ב 4 ° C, כדי לקבל גלולת המיטוכונדריה.

5. העברה של המיטוכונדריה MSC המבודדת GSCs (MitoCeption)

  1. הוסף 200 μl של מדיום ההתפשטות מראש מקורר (0 ° C) GSC על גלולת המיטוכונדריה המבודדת MSCs (4 x 10 5).
  2. לדלל את הכנת המיטוכונדריה (במדיום התפשטות GSC) להוסיף בעקביות 20 μl של ההשעיה המיטוכונדריה אל GSCs.
  3. מוסיף את הנפח של המיטוכונדריה מבודד לתוך הבארות של 96-well צלחת המכילה את GSCs (משלב 3.15), בריכוז הרצוי (0.1 כדי 10 מיקרוגרם). מוסיפים את המיטוכונדריה לאט, קרוב לתחתית הבאר, המכסה את כל פני השטח לפחות פעם אחת.
  4. לשליטת דליפה חיונית לצבוע המיטוכונדריה MSC, להוסיף אותן הכמויות של הכנת המיטוכונדריה (0.1 עד 10 מיקרוגרם) כדי בארות של צלחת 96-היטב המכילה בינוני התפשטות GSC בלבד (ללא GSCs) (ראה חלק 6.2 לגילוי דליפה חיוני לצבוע).
  5. צנטריפוגה את הצלחת 96-היטב המכילה את GSCs הנמען המיטוכונדריה עם המיטוכונדריה MSC (שלב 5.3) ואת הצלחת המלאה (שלב 5.4) ב 1500 XG במשך 15 דקות ב 4 ° C.
  6. מניחים את הצלחות התרבות בחממה C תא 37 ° מיד לאחר צנטריפוגה.
    הערה: פרוטוקול העברת המיטוכונדריה מסתמך על צנטריפוגה של ההשעיה המיטוכונדריה על התאים בתרבית לעבר כוח צנטריפוגה הנאות, עם מספר centrifugations כי יכול להיות מותאם תלוי system של תאי תורם / נמען המיטוכונדריה.

יום 3

6. ניתוח של העברת המיטוכונדריה ידי FACS והדמיה Confocal

  1. הכנת דגימות GSC לניתוח FACS
    הערה: אם המיטוכונדריה MSC תויגו עם חיוני לצבוע מראש (סעיף 1), ניתן לנטר את היעילות על ידי FACS, 24 שעות לאחר העברת המיטוכונדריה.
    1. צנטריפוגה את הצלחת 96-היטב עם GSCs MitoCepted ב 270 XG במשך 5 דקות ב 20 מעלות צלזיוס.
    2. בטל supernatant.
    3. הוספת 100 טריפסין μl (לא EDTA) בכל טוב. לדגור על 37 מעלות צלזיוס במשך 3 דקות. Pipet מעלה ומטה כדי לנתק את neurospheres נוצר ב -24 שעות זמן.
    4. הוספת 100 μl של מדיום בסיס GSC.
    5. צנטריפוגה את הצלחת ב 270 XG במשך 5 דקות ב 20 ° C ו להתעלמות supernatant.
    6. Resuspend GSCs ב 300 בינוני הבזליים μl GSC והעברת FACS מותאמים צינורות.
    7. בצעו את FACSalysis.
  2. בקרה לדליפת המיטוכונדריה חיוני לצבוע מהמיטוכונדריה המבודד (FACS)
    הערה: מטרת שלב זה היא לקבוע את אות רקע FACS שלא משתקפת העברת MSC המיטוכונדריה אמיתית, אלא זליגת העצם חיוני לצבוע מהמיטוכונדריה MSC שכותרתו המשמש MitoCeption (שלב 5.3).
    1. זרעים תאים GSC כמתואר בשלבים 3.1 כדי 3.15.
    2. דגירת התאים ב 37 מעלות צלזיוס במשך שעה 1.
    3. צנטריפוגה את הצלחת 96-היטב המכיל מיטוכונדריה בלבד (מ- בשלב 5.4 כדי 5.6) ב 1500 XG במשך 5 דקות ב 20 מעלות צלזיוס.
    4. לשאוב את המדיום תרבות מהצלחת 96-היטב GSC (שלב 6.2.2) ולהחליף אותו על ידי המדיום מודגרות עם המיטוכונדריה בלבד (supernatant משלב 6.2.3).
    5. דגירת צלחת 96-היטב המכילה את GSCs ב 37 מעלות צלזיוס למשך 2 שעות.
    6. פעל באופן בצעדים 6.1.1 כדי 6.1.7 לניתוח FACS.
  3. הכנת samp GSCles הדמיה confocal
    הערה: אם העברת המיטוכונדריה MSC כדי GSCs היא להיות מנותח על ידי דימות פלואורסצנטי, הן MSCs ו GSCs צריך להיות מתויג מראש, בהתאמה עם המיטוכונדריה (שלב 1) ותא (שלב 2) צבעים חיוניים.
    1. כן GSCs כמו צעדים 6.1.1 ל 6.1.5.
    2. Resuspend GSCs ב 2 מ"ל בינוני התפשטות GSC המכיל 2% FBS וזרעי במנות תרבות 35 מ"מ (תחתית זכוכית).
    3. בצע הדמיה confocal על GSCs עם המיטוכונדריה MSC פלורסנט העבירה 24 שעות מאוחר יותר.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

השלבים פרוצדורליים אשר מתווים את הבידוד של המיטוכונדריה מתאי גזע mesenchymal (MSC) והעברנו את תאי גזע גליובלסטומה הממוקדים (GSC) על ידי MitoCeption מוצגים באיור 1. GSCs הם תאי גזע סרטניים גדלו כמו neurospheres לשמר נכסי תאי גזע שלהם. בשביל הפרוטוקול, GSCs הם זורעים כמו תאים בודדים כמה שעות לפני העברת המיטוכונדריה (שלב 3) כדי לאפשר יעילות העברת המיטוכונדריה גבוהות יותר (ראה איור 3B נתוני FACS). בעקבות סעיף 5 (יום 3)...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

מספר גדל והולך של מחקרים מראה כי תא יכול להחליף מיטוכונדריה כי המיטוכונדריה אלה יש השפעה עמוקה על חילוף החומרים בתא המטרה ופונקציות. לכן, זה הכרחי כדי להשתלט על הכלי להעביר המיטוכונדריה כמותית מתאי התורם לתאי היעד הבאים כדי לאפשר מחקר מדויק של ההשפעות הביולוגיות שלהם.

הפרוטוקול המתואר כאן היה הסתדר במקור להעביר המיטוכונדריה מבודד אדם בתאי גזע mesenchymal לקו תאים סרטניים חסיד מד"א- MB-231 3...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

INSERM (Institut National de la Santé et de la משוכלל ונדיר Medicale), שבה CJ ו ML.V. מזוהים, הגישה בקשה לרישום פטנט על הטכניקה MitoCeption (EP14306154.7).

תודות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

אנו מודים אנדריאה Parmeggiani (L2C ו DIMNP, מונפלייה), בנואה שארלו (IES, מונפלייה) וכן אנשי המעבדה לדיונים מועילים, כריסטוף Duperray לעזרה עם ניתוח FACS, מתקן הדמיה RIO מונפלייה (MRI) למתן סביבה נאותה עבור FACS ו מיקרוסקופיה confocal. Bnm נתמכה על ידי מענק בוגר LabEx Numev (האמנה ANR-10-LABX-20). AB נתמכה על ידי עמיתי ראשון מאוניברסיטת ורשה והאיחוד האירופי (N ° POKL.04.01.02-00-221 / 12). MLV הוא מדען צוות מהמרכז הלאומי למחקר מדעי (CNRS).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
ערכת בידוד מיטוכונדריה לרקמות פישר סיינטיפיק תוסף
N-2 10579663 (פי 100)תוסף
עם ויטמין A (50x)Fisher Scientific 
HBSS עם Ca2+ w/o Mg2+  סיגמאH4385
פולי Heme סיגמא P3932
aMEM ללא גלוטמיןאוזיםBE12-169F
DMEM/F-12 ללא גלוטמיןפישר סיינטיפיק 
L-גלוטמין Invitrogen ברקוד 25030-024 
גלוקוז סיגמא G7021
אינסולין סיגמא I 1882 
אנושי  ב-FGF מו"פ D Systems233-FB-025
EGF אנושי פפרוטק AF-100-15 
הפריןסיגמאH3149 
CaCl2MERCK2382
מעכב טריפסיןסיגמא T9003
DNase ISIGMA 
טריפסין 0.25% / EDTA 1  mMInvitrogen 
טריפסיןגיבקו 15090-046
מעכבי פרוטאז, סיגמא נטול EDTA4693159001
ציפרופלוקסצין סיגמא17850-5G-F
פטריות Invivogenant-fn-1
Fungizone Thermofisher15290018
GentamycinEuromedexEU0410
MitoTracker ירוק FMבדיקות מולקולריותM7514
MitoTracker אדום CMXRosבדיקות מולקולריות  M7512
MitoTracker אדום עמוק FMבדיקות מולקולריות  M22426 
CellTracker ירוק CMFDAבדיקות מולקולריותC7025
CellTracker כחול CMF2HCבדיקות מולקולריותC12881
RIPAסנטה קרוזsc-24948
פלואורודיש צלחת תרבות סטריליתמכשירים מדויקים בעולםFD35-100
המציטומטרפישר מדעי267110
צינורות FACSבקמן קולטר2,523,749
מכשיר FACSגליוס   3L 10C
LC התחלה מהירה DNA מאסטר פלוס Roche3515885001
תזונה B-27 של Fisher Scientific 11520536 11500446115405661010415900125200056

מקורות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Vafai, S. B., Mootha, V. K. Mitochondrial disorders as windows into an ancient organelle. Nature. 491 (7424), 374-383 (2012).
  2. Nunnari, J., Suomalainen, A. Mitochondria: in sickness and in health. Cell. 148 (6), 1145-1159 (2012).
  3. Chandel, N. S. Mitochondria as signaling organelles. BMC Biol. 12 (1), 34(2014).
  4. Schulze, A., Harris, A. L. How cancer metabolism is tuned for proliferation and vulnerable to disruption. Nature. 491 (7424), 364-373 (2012).
  5. Peiris-Pages, M., Martinez-Outschoorn, U. E., Pestell, R. G., Sotgia, F., Lisanti, M. P. Cancer stem cell metabolism. Breast Cancer Res. 18 (1), 55(2016).
  6. LeBleu, V. S., et al. PGC-1alpha mediates mitochondrial biogenesis and oxidative phosphorylation in cancer cells to promote metastasis. Nat Cell Biol. 16 (10), 992-1003 (2014).
  7. Liu, S., Feng, M., Guan, W. Mitochondrial DNA sensing by STING signaling participates in inflammation, cancer and beyond. Int J Cancer. 139 (4), 736-741 (2016).
  8. Islam, M. N., et al. Mitochondrial transfer from bone-marrow-derived stromal cells to pulmonary alveoli protects against acute lung injury. Nat Med. 18 (5), 759-765 (2012).
  9. Pasquier, J., et al. Preferential transfer of mitochondria from endothelial to cancer cells through tunneling nanotubes modulates chemoresistance. J Transl Med. 11, 94(2013).
  10. Plotnikov, E. Y., Khryapenkova, T. G., Galkina, S. I., Sukhikh, G. T., Zorov, D. B. Cytoplasm and organelle transfer between mesenchymal multipotent stromal cells and renal tubular cells in co-culture. Exp Cell Res. 316 (15), 2447-2455 (2010).
  11. Spees, J. L., Olson, S. D., Whitney, M. J., Prockop, D. J. Mitochondrial transfer between cells can rescue aerobic respiration. Proc Natl Acad Sci U S A. 103 (5), 1283-1288 (2006).
  12. Liu, K., et al. Mesenchymal stem cells rescue injured endothelial cells in an in vitro ischemia-reperfusion model via tunneling nanotube like structure-mediated mitochondrial transfer. Microvasc Res. 92, 10-18 (2014).
  13. Bukoreshtliev, N. V., et al. Selective block of tunneling nanotube (TNT) formation inhibits intercellular organelle transfer between PC12 cells. FEBS Lett. 583 (9), 1481-1488 (2009).
  14. Gurke, S., et al. Tunneling nanotube (TNT)-like structures facilitate a constitutive, actomyosin-dependent exchange of endocytic organelles between normal rat kidney cells. Exp Cell Res. 314 (20), 3669-3683 (2008).
  15. Vallabhaneni, K. C., Haller, H., Dumler, I. Vascular smooth muscle cells initiate proliferation of mesenchymal stem cells by mitochondrial transfer via tunneling nanotubes. Stem Cells Dev. 21 (17), 3104-3113 (2012).
  16. Wang, X., Gerdes, H. H. Transfer of mitochondria via tunneling nanotubes rescues apoptotic PC12 cells. Cell Death Differ. 22 (7), 1181-1191 (2015).
  17. Plotnikov, E. Y., et al. Cell-to-cell cross-talk between mesenchymal stem cells and cardiomyocytes in co-culture. J Cell Mol Med. 12 (5A), 1622-1631 (2008).
  18. Acquistapace, A., et al. Human mesenchymal stem cells reprogram adult cardiomyocytes toward a progenitor-like state through partial cell fusion and mitochondria transfer. Stem Cells. 29 (5), 812-824 (2011).
  19. Hase, K., et al. M-Sec promotes membrane nanotube formation by interacting with Ral and the exocyst complex. Nat Cell Biol. 11 (12), 1427-1432 (2009).
  20. Phinney, D. G., et al. Mesenchymal stem cells use extracellular vesicles to outsource mitophagy and shuttle microRNAs. Nat Commun. 6, 8472(2015).
  21. Ahmad, T., et al. Miro1 regulates intercellular mitochondrial transport & enhances mesenchymal stem cell rescue efficacy. Embo J. 33 (9), 994-1010 (2014).
  22. Zhang, Y., et al. iPSC-MSCs with High Intrinsic MIRO1 and Sensitivity to TNF-a Yield Efficacious Mitochondrial Transfer to Rescue Anthracycline-Induced Cardiomyopathy. Stem Cell Reports. 7 (4), 749-763 (2016).
  23. Takeda, K., et al. Influence of intergeneric/interspecies mitochondrial injection; parthenogenetic development of bovine oocytes after injection of mitochondria derived from somatic cells. J Reprod Dev. 58 (3), 323-329 (2012).
  24. Takeda, K., et al. Microinjection of cytoplasm or mitochondria derived from somatic cells affects parthenogenetic development of murine oocytes. Biol Reprod. 72 (6), 1397-1404 (2005).
  25. Van Blerkom, J., Sinclair, J., Davis, P. Mitochondrial transfer between oocytes: potential applications of mitochondrial donation and the issue of heteroplasmy. Hum Reprod. 13 (10), 2857-2868 (1998).
  26. Ishikawa, K., et al. ROS-generating mitochondrial DNA mutations can regulate tumor cell metastasis. Science. 320 (5876), 661-664 (2008).
  27. Kaipparettu, B. A., Ma, Y., Wong, L. J. Functional effects of cancer mitochondria on energy metabolism and tumorigenesis: utility of transmitochondrial cybrids. Ann N Y Acad Sci. 1201, 137-146 (2010).
  28. Wu, T. H., et al. Mitochondrial Transfer by Photothermal Nanoblade Restores Metabolite Profile in Mammalian Cells. Cell Metab. 23 (5), 921-929 (2016).
  29. Masuzawa, A., et al. Transplantation of autologously derived mitochondria protects the heart from ischemia-reperfusion injury. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 304 (7), H966-H982 (2013).
  30. Kitani, T., et al. Direct human mitochondrial transfer: a novel concept based on the endosymbiotic theory. Transplant Proc. 46 (4), 1233-1236 (2014).
  31. Caicedo, A., et al. MitoCeption as a new tool to assess the effects of mesenchymal stem/stromal cell mitochondria on cancer cell metabolism and function. Sci Rep. 5, 9073(2015).
  32. Kesner, E. E., Saada-Reich, A., Lorberboum-Galski, H. Characteristics of Mitochondrial Transformation into Human Cells. Sci Rep. 6, 26057(2016).
  33. Lathia, J. D., Mack, S. C., Mulkearns-Hubert, E. E., Valentim, C. L., Rich, J. N. Cancer stem cells in glioblastoma. Genes Dev. 29 (12), 1203-1217 (2015).
  34. Osswald, M., et al. Brain tumour cells interconnect to a functional and resistant network. Nature. 528 (7580), 93-98 (2015).
  35. Shinojima, N., et al. TGF-beta mediates homing of bone marrow-derived human mesenchymal stem cells to glioma stem cells. Cancer Res. 73 (7), 2333-2344 (2013).
  36. Velpula, K. K., Dasari, V. R., Rao, J. S. The homing of human cord blood stem cells to sites of inflammation: unfolding mysteries of a novel therapeutic paradigm for glioblastoma multiforme. Cell Cycle. 11 (12), 2303-2313 (2012).
  37. Guichet, P. O., et al. Cell death and neuronal differentiation of glioblastoma stem-like cells induced by neurogenic transcription factors. Glia. 61 (2), 225-239 (2013).
  38. Lyons, E. A., Scheible, M. K., Sturk-Andreaggi, K., Irwin, J. A., Just, R. S. A high-throughput Sanger strategy for human mitochondrial genome sequencing. BMC Genomics. 14, 881(2013).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

FACSDNATunneling Nanotubes

מאמרים קשורים