הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

הרומן מזין ללא מערכת לייצור המוני של תאים רוצח טבעי מאתר במבחנה

6.9K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/56785

⸱

9 בינואר 2018

במאמר זה

סיכום

כאן, אנו מציגים פרוטוקול בייצור המוני של ג'ין להחרשת תאי NK מאתר באמצעות מערכת בידול נטולת מזין עבור המחקר מכניסטית חוץ גופית בתוך ו ויוו.

תקציר

תאים (NK) רוצח טבעי שייכת מערכת החיסון המולדת, השורה הראשונה נגד סרטן מערכת החיסון הגנה; עם זאת, הם מדוכאים ב microenvironment הגידול, המנגנון הבסיסי הוא עדיין אינו מודע לקיומם. העדר מקור עקבית ומהימנה של תאי NK מגביל את התקדמות המחקר של חסינות התא NK. כאן, אנחנו מדווחים במבחנה מערכת שיכול לספק איכות גבוהה, כמות הנגזרות מח עצם של תאי NK מאתר בתנאי נטולת מזין. יותר חשוב, אנחנו גם להוכיח כי בתיווך siRNA ג'ין להחרשת בהצלחה מעכב ההבשלה התא NK תלויי-E4bp4 באמצעות מערכת זו. לפיכך, הרומן במבחנה NK תא זה המבדילים המערכת היא פתרון biomaterial למחקר חסינות.

מבוא

התקדמות סרטן תלוי במידה רבה הגידול microenvironment1,2, כולל המארח, נגזר immunocytes, למשל, תאי NK. מספר מחקרים הראו כי תאי NK intratumoral נמצאים בקורלציה שלילית עם3,התקדמות הגידול4. בנוסף, מחקרים קליניים הראו כי טיפול המאמצת בתאי NK היא אסטרטגיה אפשרית עבור סרטן5,6,-7,-8,-9. חיסוני סרטן המבוסס על תאי NK לאחרונה הוצע כאופציה טיפולית עבור גידולים מוצקים, אך אתגרים קיים בשל ההפרשה של ציטוקינים לדיכוי המערכת החיסונית ואת downregulation של הפעלת ליגנדים ב- microenvironment של גידולים מוצקים 10,11. שינוי צורה של גורם גדילה-β (TGF-β) הוצע כדי לשחק תפקיד מדכאים carcinogenesis, אבל באופן פרדוקסלי תאים סרטניים גם לייצר TGF-β1 כדי לתמוך את הגידול פיתוח12,13,14 , 15. TGF-β איתות יכול לדכא את פעילות תאי NK באמצעות ויסות מטה תגובתיות אינטרפרון, בתיווך CD16 אינטרפרון-גמא (IFN-γ) ייצור במבחנה16,17, cytolytic 18.

למרות שיבוש TGF-β איתות ב microenvironment הגידול עשוי להיות דרך אפשרית עבור ביטול סרטן, חוסמת לחלוטין TGF-β איתות יגרום מחלות אוטואימוניות בשל תפקידה אנטי דלקתיות, כפי שמעידים על התפתחות תופעות לוואי כולל דלקת מערכתית, מומי לב וכלי דם, מחלת חיסון עצמי עכבר מודלים19. לפיכך, הבנת מנגנון העבודה של TGF-β-מתווכת החיסוני תוביל אל זיהוי מטרה טיפולית נגישים לטיפול בסרטן.

התירי את האירועים המולקולריים הדרושים להתפתחות תאי NK, וויליאמס. ואח הקימה מערכת במבחנה כי להבדיל מאתר מח עצם תאי גזע hematopoietic לתוך NK תאים20. מערכת זו מקלה במידה רבה בחקר התפתחות התא NK, כולל זיהוי אבות הרומן של תאי NK21מכניסטית. עם זאת, צריך להיות תרבותי המוצא לאגס מח עצם במערכת עם תמיכה OP9 סטרומה תאים כמו מזין שכבה20,21, ומגביל אוכלוסייה הטרוגנית תא זו במידה רבה יישום נוסף של שיבוש גנטי כלים (למשל, בתיווך siRNA ג'ין להחרשת) שימושית במיוחד לתאי NK המבדילים.

כאן נתאר מערכת נטולת מזין, שפותחו על-ידי המערכת במבחנה של וויליאמס ואח20שינוי נוסף. במערכת שלנו, תאי סטרומה מזין OP9 אינם נדרשים, ולהוביל במקום OP9 המדיום המותנה משמש מבלי להשפיע על הבידול של NK תאים במבחנה, ואת זה לאחרונה לנו לחשוף כי TGF-β הוא לקדם התקדמות סרטן באמצעות פיתוח המדכאים של התא NK תלויי-E4bp4 microenvironment גידול22. מערכת חדשנית זו מספקת בהצלחה שיטה ללא רקע שחקרתי את המנגנון המולקולרי התפתחות תאי NK תחת תנאים מסוימים (למשל, גבוהה TGF-β1, בתיווך siRNA ג'ין להחרשת, וכו.) במבחנה.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

הפרוטוקול עבור קבלת, המבדילים NK הנגזרות מח עצם תאים (מוניטור-NK) מבוסס על שיטות שפורסמו בעבר20,21,22. כל ההליכים עם עכברים אושרו על ידי החיה אתיקה ניסיוני הוועדה (AEEC) באוניברסיטה הסינית של הונג קונג.

1. הכנת המדיום המותנה OP9

  1. תרבות משתית מאתר תא בשורה OP9 אלפא-מ המכיל 20% FBS, U/mL 100 פניצילין G ו סטרפטומיצין µg 100/mL, ב 37 מעלות צלזיוס באווירה humidified של אוויר/CO2 (95%: 5%).
    1. לספור את התאים עם hemocytometer, ואז זרע 2 x 106 תאים OP9 את הבקבוק תרבות2 כל 75 ס מ עם 15 מ"ל של מדיום. תרבות במשך 48 שעות.
    2. התרבות מגיעה למפגש 80%, לשטוף את הבקבוק עם 10 מ"ל של PBS ולהוסיף 20 מ"ל של מדיום אלפא-מ רגיל (ללא FBS ואנטיביוטיקה) לכל את הבקבוק.
  2. לאסוף את המדיום תנאי OP9 מן הבקבוק תרבות-24 שעות ביממה, לנקות את שאריות תאים עם מסנן polyethersulfone (פסי) מיקרומטר 0.25 ולשמר ב 4 ° C (שימוש בתוך 2 שבועות).

2. בידוד תאי מח עצם העכבר

  1. המתת חסד עכבר C57BL/6J בן 12 בשבוע מנת יתר pentobarbitone (100 מ"ג/ק"ג, הזרקת בקרום הבטן). לאשר את מותו על ידי חוסר נשימה, ואז לקצור את העצמות עצם הירך עם חיתוך סכין כירורגית בצמתים שבין עצמות, להסיר את השרירים הנותרים עם הלהב על ידי גירוד עדין.
  2. מניחים את העצמות שפופרת צנטרפוגה 50 מ ל המכיל אלפא סטרילי צונן-מ, ולאחר מכן בצע את הפעולות הבאות באבטחה ארון.
  3. ביטול המדיום אלפא-מ, ולשטוף את העצמות עם 70% אתנול ל 30 s.
  4. לשטוף את העצמות עם PBS קר כקרח סטרילי פעמיים כדי לנקות האתנול הנותרים.
  5. העברת עצמות מרגמה המכילה 5 מ של PBS קר כקרח, בעדינות fragmentize העצמות עם כבעלי (לא pulverize אותם).
  6. להתסיס את העצמות בעדינות על ידי מתערבל את המרוסקים כדי לשחרר את התאים במח העצם לתוך מגניב. איסוף תאי מח עצם המכיל PBS לתוך שפופרת צנטרפוגה 50 מ ל חדש.
  7. חזור על שלב 2.6 עבור ארבע פעמים עד שברי עצם הופכים לבן, מוצק בצבע.
  8. Centrifuge את הצינור ב- g x 465 עבור 5 דקות ב 4 ° C, ואז למחוק את תגובת שיקוע.
  9. Resuspend בגדר עם 18 מ ל מים מזוקקים סטריליים, ומשהים 30 s כדי להסיר תאי דם אדומים.
  10. להוסיף 2 מיליליטר 10 קר כקרח PBS X כדי לעצור את התגובה, ואז לסנן את התערובת דרך מסננת תא מיקרומטר 70 להסרת כדוריות דם אדומות lysed.
  11. Centrifuge את הצינור ב- g x 465 עבור 5 דקות ב 4 º C. Resuspend בגדר עם 20 מ של PBS קר כקרח.
  12. לשטוף את התאים באמצעות חזרה שלב 2.11 בפעם השנייה.
  13. להעביר בגדר תא 100-מ מ עקר פטרי עם 10 מ"ל של המדיום המותנה OP9 מהשלב 1.2 בתוספת 20% FBS ותערובת של 0.5 ng/mL 7-IL מאתר 30 ננוגרם למ"ל העכבר SCF, 100 flt3L מאתר U/mL.
  14. דגירה המנה ב 37 ° C עם 5% CO2 ח' 2 העברת תאי כעיגולים בצבע לתוך מיכל תרבות חדשה-צפיפות של 5 x 105 קיימא תאים למ"ל (ספירת תאים על-ידי hemocytometer עם הדרה trypan-כחול) עם אותה נוסחה בינוני כמו שלב 2.13 , דגירה ב 37 ° C עם 5% CO2.
  15. יום 4, שינוי התנאי תרבות המדיום המותנה OP9 בתוספת 20% FBS ו- 2,000 U/mL של מאתר il-2.
  16. רענון המדיום תרבות כל 3 ימים; תאי NK בוגר יכול להיות מתקבל על ידי 7 יום, מוסמך כמו סעיף 4.

3. siRNA בתיווך גנים Silencing של תאי NK המבדילים

  1. Premix siRNA או שטויות הפקד (NC) עם סוכן תרביות תאים על פי ההדרכה של המוצר.
  2. בצע את שלב 3.1 בכל נקודת זמן מהיום 0.
  3. להוסיף את ה-50 nM של siRNA או תערובת NC לתאים מהשלב 2.14.
  4. חזור על שלב 3.1 על כל כיבוד בינונית (למשל, היום 0, 4 ו- 7) עד נקודת הסיום ניסיוני.

4. ניתוח של התא NK בידול באמצעות Cytometry זרימה

  1. בנקודת זמן מתאים, לאסוף את התליה של הבחנה תאים ולשטוף עם PBS קר כקרח.
  2. לתקן את התאים באמצעות מאגר קיבוע תאים על פי המדריך המוצר.
  3. לשטוף את התאים קבוע עם PBS קר כקרח ולאחר מכן resuspend עונה 1 פרק 106 תאים µL 100 של Flow Cytometry מכתים מאגר המכיל Cy3 מצומדת אנטי עכבר NKp46 ו- PE-מצומדת העכבר אנטי CD244 נוגדנים על יחס דילול בטחונות.
  4. כתם המדגם בחושך בטמפרטורת החדר במשך שעתיים.
  5. Resuspend הדגימות ויטראז'ים עם 300 µL ל- PBS, ולאחר מכן לרכוש FACS הנתונים ולנתח עם Cytobank פלטפורמה20 (http://cytobank.org/).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

התוצאות נציג מתקבלים בעקבות הפרוטוקול המתואר. תאים במח העצם הכולל ההשעיה היו מעובדות תחת מערכת מזין ללא בידול למשך 11 ימים; עלייה משמעותית בשיעור התפשטות נצפתה על ידי יום 7 לעומת מספר התאים הכולל ביום 0 (איור 1א'). תאי NK בוגרת עם יחס גבוה גרעיני כדי cytoplasmic, מורפולוגיה ציטופלזמה עשירה גרגר נמצאו ביום 6 במערכת (איור 1B).

כדי להבהיר ...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

בשנת העבודה הנוכחית, תארנו שיטה להפקת הנגזרות מח עצם מאתר NK תאים בתוך חוץ גופית. התא המזין21,המערכת המקורית22 מוחלף בהצלחה על-ידי המדיום המותנה של תאים OP9, שהגדילה במידה רבה את היציבות של המערכת בידול. בנוסף, המערכת יכולה לייצר כמות גבוהה, טוהר NK בוגרת תאי במבחנה , כמו גם ויוו מבחני, אשר יכול להקל את המחקר מכניסטית, כמו גם המחקר translational תאי NK במחלות אנושיות.

השיטה המתוארת שימש עבור חוקרים את התפקיד ...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

המחברים אין לחשוף.

תודות

מחקר זה נתמך על ידי מחקר מלגות המועצה של הונג קונג (GRF 468513, CUHK3/crf לניסויים קליניים/12R) ואת החדשנות, קרן הטכנולוגיה של הונג קונג (ITS/227/15, ITS InP/164/16, ITS-InP/242/16), גרנט ישירה מחקר-CUHK (2016.035), מלומד הונג קונג תוכנית.

ה-י. ל תוכנן כל ניסויים מבוקרים, תרמה הכנת כתב היד. אחה צ-K.T. ביצע ניסויים, ניתחו נתונים, תרמה הכנת כתב היד. פי. סי-טי טי, J.Y.-יונייטד, י. ס-ג, ה, ש- M.W., ג-י. ל אספו דגימות בעלי חיים, השתתף בניסויים על בעלי חיים. י. ס, ר. י-ה, ק. ס. ז תרם הכנת כתב היד.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
קו תאים OP9ATCCATCC® CRL-2749™
MEM α, ללא נוקלאוזידיםGibco22561021
סרום בקר עובריGibco10500064
PBS, pH 7.4Gibco10010049
עכברים רקומביננטיים IL-7PEPROTECH217-17
עכבר רקומביננטי SCFPEPROTECH250-03
עכברים רקומביננטיים Flt3-LigandPEPROTECH250-31L
עכבר רקומביננטי IL-2PEPROTECH212-12
ליפופקטמין RNAiMAX מגיב טרנספקציהInvitrogen1377815
מאגר קיבוע IC eBioscience00-8222-49
מאגר צביעת ציטומטריית זרימה eBioscience00-4222-26
PE-conjugated anti-mouse CD244eBioscience12-2441-83
Cy3-conjugated anti-mouse NKp46Biossbs-2417R-cy3
Nonsense Control (NC)RibobiosiN05815122147
siRNA נגד עכבר E4BP4 mRNARibobioN/A5′-GAUGAGGGUGUA
GUGGGCAAGUCUU-3& פריים;

מקורות

  1. Schreiber, R. D., Old, L. J., Smyth, M. J. Cancer immunoediting: integrating immunity's roles in cancer suppression and promotion. Science. 331 (6024), 1565-1570 (2011).
  2. Junttila, M. R., de Sauvage, F. J. Influence of tumour micro-environment heterogeneity on therapeutic response. Nature. 501 (7467), 346-354 (2013).
  3. Rusakiewicz, S., et al. Immune infiltrates are prognostic factors in localized gastrointestinal stromal tumors. Cancer Res. 73 (12), 3499-3510 (2013).
  4. Mamessier, E., et al. Human breast cancer cells enhance self tolerance by promoting evasion from NK cell antitumor immunity. J Clin Invest. 121 (9), 3609-3622 (2011).
  5. Stern, M., et al. Pre-emptive immunotherapy with purified natural killer cells after haploidentical SCT: a prospective phase II study in two centers. Bone Marrow Transplant. 48 (3), 433-438 (2013).
  6. Miller, J. S., et al. Successful adoptive transfer and in vivo expansion of human haploidentical NK cells in patients with cancer. Blood. 105 (8), 3051-3057 (2005).
  7. Rubnitz, J. E., et al. NKAML: a pilot study to determine the safety and feasibility of haploidentical natural killer cell transplantation in childhood acute myeloid leukemia. J Clin Oncol. 28 (6), 955-959 (2010).
  8. Curti, A., et al. Successful transfer of alloreactive haploidentical KIR ligand-mismatched natural killer cells after infusion in elderly high risk acute myeloid leukemia patients. Blood. 118 (12), 3273-3279 (2011).
  9. Bachanova, V., et al. Clearance of acute myeloid leukemia by haploidentical natural killer cells is improved using IL-2 diphtheria toxin fusion protein. Blood. 123 (25), 3855-3863 (2014).
  10. Stringaris, K., et al. Leukemia-induced phenotypic and functional defects in natural killer cells predict failure to achieve remission in acute myeloid leukemia. Haematologica. 99 (5), 836-847 (2014).
  11. Rouce, R. H., et al. The TGF-β/SMAD pathway is an important mechanism for NK cell immune evasion in childhood B-acute lymphoblastic leukemia. Leukemia. 30 (4), 800-811 (2016).
  12. Derynck, R., Akhurst, R. J., Balmain, A. TGF-β signaling in tumor suppression and cancer progression. Nature Genet. 29 (2), 117-129 (2001).
  13. Massague, J. TGFbeta in cancer. Cell. 134 (2), 215-230 (2008).
  14. Ikushima, H., Miyazono, K. TGFbeta signalling: a complex web in cancer progression. Nat Rev Cancer. 10 (6), 415-424 (2010).
  15. Pickup, M., Novitskiy, S., Moses, H. L. The roles of TGFβ in the tumour microenvironment. Nat Rev Cancer. 13 (11), 788-799 (2013).
  16. Rook, A. H., et al. Effects of transforming growth factor beta on the functions of natural killer cells: depressed cytolytic activity and blunting of interferon responsiveness. J Immunol. 136 (10), 3916-3920 (1986).
  17. Bellone, G., Aste-Amezaga, M., Trinchieri, G., Rodeck, U. Regulation of NK cell functions by TGF-beta 1. J Immunol. 155 (3), 1066-1073 (1995).
  18. Trotta, R., et al. TGF-β utilizes SMAD3 to inhibit CD16-mediated IFN-γ production and antibody-dependent cellular cytotoxicity in human NK cells. J Immunol. 181 (6), 3784-3792 (2008).
  19. Shull, M. M., et al. Targeted disruption of the mouse transforming growth factor-β1 gene results in multifocal inflammatory disease. Nature. 359 (6397), 693-699 (1992).
  20. Chen, T. J., Kotecha, N. Cytobank: providing an analytics platform for community cytometry data analysis and collaboration. Curr Top Microbiol Immunol. 377, 127-157 (2014).
  21. Williams, N. S., et al. Differentiation of NK1.1+, Ly49+ NK cells from flt3+ multipotent marrow progenitor cells. J Immunol. 163 (5), 2648-2656 (1999).
  22. Fathman, J. W., et al. Identification of the earliest natural killer cell-committed progenitor in murine bone marrow. Blood. 118 (20), 5439-5447 (2011).
  23. Tang, P. M., et al. Smad3 promotes cancer progression by inhibiting E4BP4-mediated NK cell development. Nat Commun. 6 (8), 14677(2017).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

תאי NK עכברייםמופקי מחלצת גרעיןמצע מותנה OP9השתקת גנים באמצעות siRNAעיכוב E4bp4אנליזת ציטומטריה זרימהTGF Beta-1 Smad3פרוטוקול תרבית תאים