מאמר שיטה

כימות מוחלטת של פלזמה רמות MicroRNA בקופים Cynomolgus, באמצעות שעתוק במהופך בזמן אמת PCR כמותי

DOI:

10.3791/56850

⸱

12 בפברואר 2018

 ,  ,  ,  , 
1Medicinal Safety Research Laboratories, Daiichi Sankyo Co., Ltd.

במאמר זה

סיכום

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

הדו ח מתאר פרוטוקול למדידת ברמות המוחלטות miRNA פלזמה, באמצעות שעתוק במהופך בזמן אמת PCR כמותי עם או בלי הגברה מראש. פרוטוקול זה מאפשר הבנה טובה יותר של כמות פלזמה miRNAs ומאפשר הערכה איכותית של נתונים התואמים מחקרים שונים או מעבדות.

תקציר

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

RT-qPCR היא אחת השיטות הנפוצות להערכת miRNAs היעד בודדים. רמות MiRNAs בדרך כלל נמדדים ביחס דגימת. גישה זו מתאימה לבחינת שינויים פיסיולוגיים רמות הביטוי של גנים היעד. עם זאת, כימות מוחלט באמצעות ניתוח סטטיסטי יותר עדיפה עבור הערכה מקיפה של רמות ביטוי גנים. כימות המוחלט הוא עדיין לא במשותף להשתמש. הדו ח מתאר פרוטוקול למדידת ברמות המוחלטות miRNA פלזמה, באמצעות RT-qPCR עם או בלי הגברה מראש.

נפח קבוע (200 µL) של EDTA-פלזמה הוכן מהדם שנאסף וריד הירך cynomolgus בהכרה קופים (n = 50). סה כ RNA שהופק באמצעות מערכת זמינים מסחרית. פלזמה miRNAs היו לכמת על ידי המבוסס על בדיקה RT-qPCR מבחני אשר מכיל miRNA ספציפי לפנים/הפוכה PCR פריימר בדיקה. עקומות רגיל על כימות מוחלטת נוצרו תוך שימוש זמינים מסחרית oligonucleotides RNA סינתטי. סינתטי צ'ל-מיר-238 שימש פקד חיצוני להערכה נורמליזציה ואיכות. MiRNAs הראה כימות מחזור (סי) ערכים מעל 35 היו מראש מוגבר לפני השלב qPCR.

בין 8 miRNAs בחן, מיר-122, מיר-133a ומיר-192 היו לזיהוי ללא הגברה מראש, ואילו מיר-1, מיר-206 ו miR-499a הנדרש הגברה מראש בגלל רמות נמוכות הביטוי שלהם. MiR-208a מיר-208b היו לא לזיהוי גם לאחר הגברה מראש. הדגימה יעילות העיבוד הוערך על ידי ערכי סי מחודדים צ'ל-מיר-238. בשיטה זו assay, וריאציה טכני היה מוערך להיות פחות 3-fold, הגבול התחתון של כימות (LLOQ) היה העתק2 10/µL, עבור רוב miRNAs בחן.

פרוטוקול זה מספקת אומדן טוב יותר כמות פלזמה miRNAs, ומאפשרת הערכת איכות הנתונים המתאימים ממחקרים שונים. בהתחשב שהמספר הנמוך של miRNAs בנוזלי גוף, קדם הגברה שימושית לשפר זיהוי של גרוע הביע miRNAs.

מבוא

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

מספר גדל והולך של מחקרים יש כבר חקר מיקרו Rna (miRNAs) כמו סמנים ביולוגיים עבור האבחון, הפרוגנוזה של סרטן, או ניטור וכן זיהוי מחלות אחרות מחקרים קליניים nonclinical1,2,3 . כמותיים שעתוק במהופך בזמן אמת PCR (RT-qPCR) היא אחת השיטות הנפוצות ביותר לשימוש לצורך הערכת miRNAs היעד בודדים, כי טכניקה זו הוא יותר רגיש ממה microarray4 ו- RNA רצף המבוסס על פלטפורמות5. באופן כללי, miRNA ביטוי נמדד ביחס דוגמה הפניה באמצעות שיטת ΔCq6. גישה זו מתאימה עבור חוקרים שינויים פיסיולוגיים רמות הביטוי של גנים היעד. עם זאת, כימות היחסי של מחזורי miRNAs מוגבל השירות בגלל כמויות קטנות שלהם. בנוסף, וריאציה טכני עושה את זה קשה להשוות את התוצאות ממחקרים שונים, כי מעבדות שונות להתאים הפרוטוקולים ניסיוני RT-qPCR אחרת, מה שמוביל לא עקבי או אפילו סותרות נובעת מחקרים שונים7.

על רקע חששות שהוזכרו לעיל, כימות מוחלט עשוי להיות מתאים יותר ההערכה כמויות קטנות של miRNAs בנוזלי גוף. השיטה כימות המוחלטת משתמש עיקול רגיל המופקים ידוע ריכוזי oligonucleotides RNA סינתטי זהים ברצף המתאים למטרה miRNA8. בריאותם של המכון למדעי הסביבה (HESI) הוועדה הטכנית גנומיקה שנערך לאחרונה מחקרים מקיפים כדי להשוות את התוצאות של המידות המוחלט של פלזמה miRNAs, באתרים מרובים של הבדיקה. התוצאות הראו כי באמצעות פרוטוקול תקשורת עבור כימות מוחלטת של miRNAs הניבו תוצאות דומות על פני אתרי מבחן מספר9. RT-qPCR assay השיטה המתוארת במחקר הנוכחי הוא כמעט זהה לזה של HESI ההליך הרגיל, הכולל ניתוח מרובבת של miRNA מטרות מרובות, ושל הגברה מראש כדי לסייע זיהוי miRNAs ביטוי נמוך.

במחקר זה, נפח קבוע (200 µL) של EDTA-פלזמה מוכן מהדם שנאסף וריד הירך cynomolgus בהכרה קופים (n = 50) היה בשימוש10. הפרוטוקול הבא מתאר את ההליך עבור הכנת דגימות פלסמה, החילוץ של miRNA, ו- RT-qPCR, כולל הגברה מראש. חשוב מכך, פרטים טכניים נוספים אודות הפרוטוקול כבר כלול, כך כמות היעד miRNAs הדגימות הניתנים לאימות בשילוב עם תהליך מוסמך מאוד. ראשית, העקומה סטנדרטי של כל miRNA אומתה עבור טווח זיהוי הפרט שלו, לפני שלה כימות בדגימות ביולוגיות. שנית, האיכות של המתודולוגיה הנוכחית באופן מקיף הוערך על-ידי סי ערכים של פקד חיצוני (cel-מיר-238). לכן, פלטפורמה זו מניבה נתונים מקיף ואמין יותר לצורך השוואת תוצאות של מחקרים שונים או מעבדות.

הפרופילים של 8 miRNAs נכללו בדו ח זה כתוצאות נציג מן השיטה assay המתוארים כאן. אלה miRNAs הוצעו כפי פוטנציאליים בטיחות סמנים ביולוגיים הקשורים עם פציעה של רקמות הכבד (122-מיר ומיר-192), הלב (מיר-1, מיר-208a, מיר-208b ומיר-499a), ואת שרירי השלד (מיר-133a ומיר-206) מכרסמים ובני אדם3, 11,12,13.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

כל ניסויים אושרו על ידי טיפול בעלי חיים מוסדיים ועל שימוש הוועדה של תחנת Sankyo ושות', בע מ

1. הכנת הדוגמא

  1. לאסוף דם (לפחות 0.5 מ"ל) וריד הירך קופים cynomolgus לתוך צינורות 2K המכילה EDTA.
    הערה: ציטראט הפארין אינם מקובלים כי אלה תרופות נגד קרישת דם לעכב PCR עוקבות14,15.
  2. במקום הדגימות שנאספו באופן מיידי על הקרח ותהליך לבידוד פלזמה תוך שעתיים של אוסף.
  3. Centrifuge את הדגימות ב g x 10,000 ב 4 מעלות צלזיוס למשך 5 דקות.
  4. להעביר את תגובת שיקוע microtube 2 מ"ל, ואחריו צנטריפוגה ב g 16,000 x ב 4 מעלות צלזיוס למשך 5 דקות להסיר שאריות תאים שיורית טסיות.
    הערה: כימות miRNAs עשויה להיות מושפעת באופן משמעותי טסיות זיהום16.
  5. למקם את aliquots µL 200 של תגובת שיקוע טרי 2 מ ל- microtubes, לאחסן ב- 80 ° C עד השימוש.
    הערה: נפח קבוע של כל מדגם משמש לחילוץ RNA; לכן, כמות aliquot חייב להיות מדויק.

2. RNA החילוץ

  1. הפשרת דגימות קפוא בקרח (מתוך שלב 1.5).
    1. לשמור על מדגם קר על קרח במהלך החילוץ-RNA. . תירגע ריאגנט פירוק, כלורופורם על הקרח לפני השימוש.
  2. מוסיפים 5 כרכים (1000 µL) של ריאגנט פירוק, המכיל תמיסת monophasic פנול, guanidine isothiocyanate, כדי המדגם (200 µL), ומערבבים נמרצות על ידי vortexing עבור 1 דקות.
  3. להוסיף 5 µL של 5 nM סינתטיים Caenorhabditis elegans miRNA (Syn-צ'ל-מיר-238-3 p).
  4. הוסף נפח 1 (200 µL) של כלורופורם, מערבבים היטב על ידי vortexing עבור 1 דקות.
  5. לשמור בקירור למשך 2-3 דקות ולאחר מכן centrifuge את הדגימות ב g x 12,000 ב 4 מעלות צלזיוס למשך 15 דקות.
  6. העברה השלב מימית בזהירות microtube החדש.
    הערה: אל תעביר שלב אורגני (אדום) או לאטמוספרה (לבן). הנפח של השלב מימית שנאסף צריך להיות אחיד כדי למנוע טיפול עקביות, כשהתוצאה היא וריאציה טכני מוגברת. הכמות הרגילה של פאזה מימית מועברים ב פרוטוקול זה היה 650 µL.
  7. להוסיף 1.5 כרכים (975 µL) של אתנול, ולערבב היטב על ידי pipetting למעלה ולמטה.
  8. להעביר את הדגימה לתוך העמודה המתאימה מתאם, ואחריו ואקום ייבוש למשך 3 דקות באמצעות יריעות ואקום. אם אמצעי האחסון מדגם µL יותר מ-700, חזור על שלב זה כדי לעבד את הפתרון הנותרים.
    הערה: בידוד מבוססי עמודה RNA הוא תואם עם שיטת ואקום צנטריפוגה.
  9. להוסיף 200 µL של אתנול העמודה, ואחריו ואקום ייבוש עבור 1 דקות.
  10. להוסיף µL 800 RWT מאגר העמודה, ואחריו ואקום ייבוש למשך 2 דקות.
  11. להוסיף 800 µL RPE מאגר העמודה, ואחריו ואקום ייבוש למשך 2 דקות.
  12. חזור על שלב 2.11.
  13. להוסיף 300 µL של אתנול העמודה, ואחריו ואקום ייבוש עבור 1 דקות.
  14. מקם את העמודה אל microtube חדש ולאחר צנטריפוגה ב g x 12,000 בטמפרטורת החדר (15-25 ° C) במשך 1 דקה.
  15. להעביר את העמודה microtube חדש, ולהוסיף 50 µL של נוקלאז ללא מים.
  16. לעמוד בטמפרטורת החדר (15-25 ° C) במשך 3 דקות, צנטריפוגה ב 8000 g × בטמפרטורת החדר (15-25 ° C) במשך 1 דקה.
  17. החל מחדש את eluate על העמודה.
  18. חזור על שלב 2.16 ואחסן eluate ב-80 מעלות צלזיוס עד השימוש.

3. cDNA סינתזה

  1. הפשרת דגימות קפואים (מתוך שלב 2.18).
  2. הכנת ריכוז ידוע של oligonucleotides RNA סינתטי התואמים miRNAs היעד.
    1. השתמש oligonucleotide RNA סינתטי ליצירת עיקול רגיל ב- qPCR. פתרון מניות ריכוז העתק/µL8 עונה 1 פרק 10 מוכן למטרות אחסון.
    2. לדלל את הפתרון מניות 10-fold להשיג עותק7 עונה 1 פרק 10/µL (לא מוגבר מראש דוגמיות) או עונה 1 פרק 105 העתק/µL (דוגמאות מוגבר מראש) הפתרון עובד כמו הריכוז הגבוה ביותר עבור בניית העקומה סטנדרטי. באופן כללי, מגוון הצעות עבור הריכוזים עיקול רגיל הוא עונה 1 פרק 107 עונה 1 פרק 102 העתק/µL (לא מוגבר מראש דוגמיות) או עונה 1 פרק 105 ל 1 x 100 העתק/µL (דוגמאות מוגבר מראש).
  3. להכין מולטיפלקס RT פריימר הבריכה על ידי ערבוב נפחים שווים של 20 x RT צבעי יסוד miRNAs היעד.
    הערה: כפי שמוצג באיור2, מאגר המכיל עד 4 miRNAs היעד יכול להתבצע על ידי ערבוב של תחל RT 20 x של כל אחד miRNAs בבריכה. צ'ל-מיר-238 (פקד חיצוני) חייב להיות כלול כאחד היעד miRNAs בהתפתחות של כל שפופרת. במקרה של פחות מ- 4 miRNAs היעד, הוסף נפחים שווים של 1/10 מאגר טה במקום 20 x RT פריימר.
  4. להכין תערובת התגובה RT: 3 µL של RT פריימר מאגר (מתוך שלב 3.3), µL 0.15 של 100 מ מ dNTPs עם dTTP, 1 µL רוורס טרנסקריפטאז (U 50/µL), µL 1.5 10 x RT מאגר, 0.19 µL של RNase מעכב (20 U µL), µL 4.16 של נוקלאז ללא מים.
  5. מיקס 10 µL של תגובה RT לערבב עם µL 5 של RNA דוגמה (מתוך שלב 3.1) או oligonucleotides (מתוך שלב 3.2) על ידי pipetting, דגירה על קרח למשך 5 דקות.
  6. לרוץ שעתוק במהופך על מנגנון הצנטרפוגה תרמי: 16 מעלות צלזיוס למשך 30 דקות, 42 מעלות צלזיוס למשך 30 דקות, ואחריו צעד איון הסופי רוורס טרנסקריפטאז ב 85 מעלות צלזיוס במשך 5 דק מאגר דגימות משועתקים הפוכה ב-80 מעלות צלזיוס עד השימוש.

4. preamplification (אופציונלי)

הערה: miRNAs המציגים סי ערכים מעל 35 ומעלה qPCR הבאים הם מראש מוגבר.

  1. הפשרת דגימות קפואים (מתוך שלב 3.6).
  2. להפוך 10-fold דילולים טורי של RT מוצר מ- RNA oligonucleotides סינתטי; עונה 1 פרק 105 ל 1 x 100 העתק/µL ליצירת עיקול רגיל.
  3. להכין assay מולטיפלקס פריימר הבריכה על ידי ערבוב נפחים שווים (5 µL) של 20 x assay תחל miRNAs היעד עם הריכוז הסופי של כל פריימר assay להיות מדולל 200-fold על-ידי מאגר טה בנפח סופי של 1,000 µL.
    הערה: תחל assay miRNAs יעד אשר ניתן לזיהוי ב qPCR הבאים ללא הגברה מראש, ואלה עבור צ'ל-מיר-238 (פקד חיצוני) אינם נכללים במאגר פריימר.
  4. להכין תערובת התגובה קדם הגברה: 12.5 µL של 2 x ריאגנט preamplification מוכן לשימוש, 3.75 µL assay ביליארד פריימר (מתוך שלב 4.3) ו- µL 6.25 נוקלאז ללא מים.
  5. מיקס 22.5 µL של תגובה קדם הגברה לערבב עם µL 2.5 מדגם משועתקים הפוכה (מתוך שלב 4.1) או oligonucleotides (מתוך שלב 4.2) על ידי pipetting, דגירה על קרח למשך 5 דקות.
  6. להפעיל תגובה על מנגנון הצנטרפוגה תרמי: 95 מעלות צלזיוס למשך 10 דקות; ואחריו 12 מחזורי 95 ° C עבור 15 s ו- 60 ° C עבור 4 דק לאחסן דגימות מראש מוגבר ב- 80 ° C עד השימוש.

5. PCR כמותי בזמן אמת (qPCR)

  1. הפשרת דגימות קפואים (מתוך שלב 3.6 או שלב 4.6).
  2. לדלל את הדגימות 5 פי במים סטריליים.
  3. להכין 10-fold דילולים טורי של המוצר RT נגזר oligonucleotides RNA סינתטי; עונה 1 פרק 107 עונה 1 פרק 102 העתק/µL (לא מוגבר מראש דוגמיות) או עונה 1 פרק 105 ל 1 x 100 העתק/µL (דוגמאות מוגבר מראש) ליצירת עקומות סטנדרטי.
  4. להכין תערובת התגובה qPCR: 10 µL של ריאגנט הגברה מוכן לשימוש, µL 1 של 20 x ריאגנט assay, המכיל PCR פריימר לפנים/הפוכה המכשיר המתאים למטרה miRNA, ו- 7 µL של נוקלאז ללא מים.
  5. העברת 18 µL מהתערובת התגובה qPCR אל צלחות אופטי מהיר תגובה 96-ובכן, ולהוסיף 2 µL של הדגימות מדולל (מתוך שלב 5.2 או שלב 5.3) לתוך הבארות.
    הערה: תקנים עבור qPCR ודוגמאות מוגדרים למצב שבו כפילויות.
  6. לאטום את הצלחת עם סרט דביק, צנטריפוגה בקצרה.
  7. להפעיל תגובה הצנטרפוגה תרמי בזמן אמת: 95 ° C עבור 20 s, ואחריו 45 מחזורי 95 ° C עבור 1 s ו- 60 ° C עבור 20 s.

6. ניתוח נתונים

  1. לחשב את המספר raw עותק של כל דגימה באמצעות ניתוח נתונים תוכנה שעובדת עם המקביל הצנטרפוגה תרמי בזמן אמת.
    הערה: קו סף מוגדר באופן ידני "1.0" על כל הצלחות במחקר, כדי לאשר את הפארמצבטית by comparison with שלהם vales סי. ניתוק רמת מוגדרת בסי > 40 מחזורי.
  2. לחשב את הממוצע של מספר raw עותק של כל דגימה של כפילויות.
  3. לחשב פקטור התיקון על-ידי חלוקת מספר עותק של צ'ל-מיר-238 בכל מדגם לפי הממוצע של עותק מספר צ'ל-מיר-238 מ כל הדגימות צינור המקביל.
    הערה: כפי שמוצג באיור2, כל שפופרת מכילה עד 4 miRNAs היעד כולל צ'ל-מיר-238 (פקד חיצוני). לכן, פקטור התיקון מחושבת עבור כל שפופרת באמצעות ערך צ'ל-מיר-238 המתאים.
  4. לחשב את המספר מנוכי עונתיות העתקה על-ידי חלוקת מספר עותק raw בממוצע כל דגימה (מתוך שלב 6.2) על ידי פקטור התיקון (מתוך שלב 6.3) עבור כל דגימה.
  5. לחשב את המספר המוחלט עותק על-ידי הכפלת המספר עותק raw מנוכי עונתיות של כל דגימה (מתוך שלב 6.4) על ידי הגורם דילול עבור כל דגימה.
    הערה: הגורם דילול הוא "5" של פרוטוקול זה, שהוא נגזרת של 5.2 שלב.
  6. לחשב את היעילות של PCR הגברה מן המדרון של העלילה של הערכים סי עבור כל דילול טורי כנגד ריכוז cDNA יומן.
    הערה: נוסחה לחישוב את היעילות; E = (10(-1/שיפוע) -1) x 100%.
  7. לחשב את הווריאציה טכנית באמצעות הערכים סי של צ'ל-מיר-238 מ כל דוגמאות באמצעות הנוסחה E = (2 x הגברה היעילות)ΔCt(Max(Cq)-Min(Cq)).
    הערה: השלבים 6.5 ו- 6.7 משמשים להערכת איכות של ההליך.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

זרימת העבודה של miRNA assay מאת RT-qPCR ו- assessmen איכותt
איור 1 מציג את זרימת העבודה של miRNA assay מדגימות דם באמצעות qPCR10. האיכות של הניסויים ניתנת לאימות כמקורית על-ידי הכללת צ'ל-מיר-238 כמו שליטה חיצונית. זה יחשוף טכני בווריאציות החילוץ-RNA ומעבד עוקבות RT-qPCR. במחקר זה, זאת אומרת ± SD מערכי סי שחושב מתוך 50 דגימות היה ± 21.0 0.4 (טבלה 1). אם צ'ל-מיר-238 היה מדולל בגלל השלב קדם הג...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

להערכתנו, מקיף מספק ניתוח סטטיסטי קפדנית יותר של היקף הטווח הדינמי, אשר לציין בבירור סדר הגודל של וריאציה בין דוגמאות בודדות היה שונה מאוד בין miRNAs נבדק. למרות לווריאציות אלה ניתן לייחס שלהם כמויות קטנות של נוזלי הגוף, יצוין כי נתונים אלו משקפים לא רק הווריאציות ביולוגי, אלא גם וריאציות טכני. רוב וריאציית טכני ניתן לבדיקה באמצעות סי הערכים בפקד חיצוני (cel-מיר-238), אשר משמש פלטפורמות אחרות assay18. מאז היו ללא בקרה פנימית מתוקננת בניתוח miRNA, יש לכלול את המידע על וריאציה טכני בניתוח, לקביעת אי...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

המחבר יש אין ניגוד אינטרסים לחשוף.

תודות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

המחקר הזה לא קיבל כל מענק ספציפי מהארגונים במגזר הציבורי, מסחריים, או שלא למטרות רווח.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
שפופרת BD Microtainer (K2EDTA)בקטון, דיקינסון ושות'365974לאיסוף דם
צינורות Eppendorf PCR, 0.2 מ"לEppendorf0030124359
מבחנות מיקרו Eppendorf Safe-Lock  1.5 מ"לEppendorf0030120086
Eppendorf Safe-Lock מבחנות מיקרו  2.0 מ"לEppendorf0030120094
אוליגונוקלאוטיד סינתטיHokkaido SystemScience-IndividualmiRNA (0.2 μ מול, כיתה HPLC)
Tris-EDTA Buffer  (pH 8.0)Nippon Gene314-90021TE
מאגר מאגר RPEQIAGEN-תוכןבערכת מיני miRNeasy 
מאגר RWTQIAGEN-תוכןבערכת מיני miRNeasy 
miRNeasy Mini KitQIAGEN217004
מים ללא נוקלאזים QIAGEN129114
QIAzol מגיב ליזהQIAGEN-תוכןבערכת מיני miRNeasy 
Syn-cel-miR-238-3p miScript miRNA Mimic QIAGEN219600ID:MSY0000293, 5 ננומול
SC מתאמיTAIGEN Bioscience CorporationS0120למיצוי RNA
VacEZor 36 מערכת שלמהTAIGEN Bioscience CorporationM3610למיצוי RNA
7900HT מערכת PCR מהירה בזמן אמתThermo Fisher Scientific Inc.4351405מהירה של 96 בארות GeneAmp
9700Thermo Fisher Scientific Inc.9700
מיקרו-אמפר מהיר אופטי 96 באר צלחת תגובהתרמו פישר סיינטיפיק בע"מ
4346907 סרט דבק אופטי MicroAmpThermo Fisher Scientific Inc.
TaqMan Fast Advanced Master Mixתרמו פישר סיינטיפיק בע"מ
TaqMan MicroRNA Astests (cel-miR-238-3p)Thermo Fisher Scientific Inc.4427975מזהה בדיקה: 000248
TaqMan MicroRNA Astests (has-miR-122-5p)Thermo Fisher Scientific Inc.4427975מזהה בדיקה: 002245
TaqMan MicroRNA Astests (has-miR-133a-3p)Thermo Fisher Scientific Inc.4427975מזהה בדיקה: 002246
TaqMan MicroRNA Astests (has-miR-1-3p)Thermo Fisher Scientific Inc.4427975מזהה בדיקה: 002222
TaqMan MicroRNA Astests (has-miR-192-5p)Thermo Fisher Scientific Inc.4427975מזהה בדיקה: 000491
TaqMan MicroRNA Astests (has-miR-206)Thermo Fisher Scientific Inc.4427975 מזהה בדיקה: 000510
TaqMan MicroRNA Astests (has-miR-208a-3p)Thermo Fisher Scientific Inc.מזהה 4427975בדיקה: 000511
TaqMan MicroRNA Astests (has-miR-208b-3p)Thermo Fisher Scientific Inc.4427975 מזהה בדיקה: 002290
TaqMan MicroRNA Astests (has-miR-499a-5p)Thermo Fisher Scientific Inc.4427975מזהה בדיקה: 001352
TaqMan MicroRNA Reverse
ערכת שעתוק		Thermo Fisher Scientific Inc.
TaqMan PreAmp Master Mix (2&)תרמו פישר סיינטיפיק בע"מ
כלורופורם Wako Pure Chemicals035-02616
אתנול (99.5)Wako Pure Chemicals057-00456
מערכת PCR 4311971444455743665974391128

מקורות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Schöler, N., Langer, C., Döhner, H., Buske, C., Kuchenbauer, F. Serum microRNAs as a novel class of biomarkers: a comprehensive review of the literature. Exp. Hematol. 38, 1126-1130 (2010).
  2. Viereck, J., Thum, T. Circulating Noncoding RNAs as Biomarkers of Cardiovascular Disease and Injury. Circ. Res. 120 (2), 381-399 (2017).
  3. D'Alessandra, Y., et al. Circulating microRNAs are new and sensitive biomarkers of myocardial infarction. Eur Heart J. 31 (22), 2765-2773 (2010).
  4. Chen, Y., Gelfond, J. A., McManus, L. M., Shireman, P. K. Reproducibility of quantitative RT-PCR array in miRNA expression profiling and comparison with microarray analysis. BMC Genomics. 10, 407(2009).
  5. Nassirpour, R., et al. Identification of tubular injury microRNA biomarkers in urine: comparison of next-generation sequencing and qPCR-based profiling platforms. BMC Genomics. 15, 485(2014).
  6. Derveaux, S., Vandesompele, J., Hellemans, J. How to do successful gene expression analysis using real-time PCR. Methods. 50 (4), 227-230 (2010).
  7. Bustin, S. A. Why the need for qPCR publication guidelines?--The case for MIQE. Methods. 50 (4), 217-226 (2010).
  8. Kroh, E. M., Parkin, R. K., Mitchell, P. S., Tewari, M. Analysis of circulating microRNA biomarkers in plasma and serum using quantitative reverse transcription-PCR (qRT-PCR). Methods. 50 (4), 298-301 (2010).
  9. Thompson, K. L., et al. Absolute Measurement of Cardiac Injury-Induced microRNAs in Biofluids across Multiple Test Sites. Toxicol Sci. 154 (1), 115-125 (2016).
  10. Iguchi, T., Niino, N., Tamai, S., Sakurai, K., Mori, K. Comprehensive Analysis of Circulating microRNA Specific to the Liver, Heart, and Skeletal Muscle of Cynomolgus Monkeys. Int. J. Toxicol. 36 (3), 220-228 (2017).
  11. Matsuzaka, Y., et al. Three novel serum biomarkers, miR-1, miR-133a, and miR-206 for Limb-girdle muscular dystrophy, Facioscapulohumeral muscular dystrophy, and Becker muscular dystrophy. Environ. Health. Prev. Med. 19 (6), 452-458 (2014).
  12. Starkey Lewis, P. J., et al. Circulating microRNAs as potential markers of human drug-induced liver injury. Hepatology. 54 (5), 1767-1776 (2011).
  13. Wang, K., et al. Circulating microRNAs, potential biomarkers for drug-induced liver injury. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 106 (11), 4402-4407 (2009).
  14. Moldovan, L., Batte, K., Wang, Y., Wisler, J., Piper, M. Analyzing the Circulating MicroRNAs in Exosomes/Extracellular Vesicles from Serum or Plasma by qRT-PCR. Methods Mol. Biol. 1024, 129-145 (2013).
  15. Li, S., Chen, H., Song, J., Lee, C., Geng, Q. Avoiding heparin inhibition in circulating MicroRNAs amplification. Int. J. Cardiol. 207, 92-93 (2016).
  16. Cheng, H. H., et al. Plasma processing conditions substantially influence circulating microRNA biomarker levels. PLoS One. 8 (6), e64795(2013).
  17. Serafin, A., et al. Identification of a set of endogenous reference genes for miRNA expression studies in Parkinson's disease blood samples. BMC Res. Notes. 7, 715(2014).
  18. Akiyama, H., et al. A set of external reference controls/probes that enable quality assurance between different microarray platforms. Anal. Biochem. 472, 75-83 (2015).
  19. Kirschner, M. B., van Zandwijk, N., Reid, G. Cell-free microRNAs: potential biomarkers in need of standardized reporting. Front Genet. 4, 56(2013).
  20. Malentacchi, F., et al. SPIDIA-RNA: second external quality assessment for the pre-analytical phase of blood samples used for RNA based analyses. PLoS One. 9 (11), e112293(2014).
  21. Sourvinou, I. S., Markou, A., Lianidou, E. S. Quantification of circulating miRNAs in plasma: effect of preanalytical and analytical parameters on their isolation and stability. J Mol Diagn. 15 (6), 827-834 (2013).
  22. Yamaura, Y., Nakajima, M., Takagi, S., Fukami, T., Tsuneyama, K., Yokoi, T. Plasma microRNA profiles in rat models of hepatocellular injury, cholestasis, and steatosis. PLoS One. 7 (2), e30250(2012).
  23. Kirschner, M. B., Edelman, J. J., Kao, S. C., Vallely, M. P., van Zandwijk, N., Reid, G. The Impact of Hemolysis on Cell-Free microRNA Biomarkers. Front Genet. 4, 94(2013).
  24. Mestdagh, P., et al. High-throughput stem-loop RT-qPCR miRNA expression profiling using minute amounts of input RNA. Nucleic Acids Res. 36 (21), e143(2008).
  25. Pritchard, C. C., Cheng, H. H., Tewari, M. MicroRNA profiling: approaches and considerations. Nat. Rev. Genet. 13 (5), 358-369 (2012).
  26. Moldovan, L., Batte, K. E., Trgovcich, J., Wisler, J., Marsh, C. B., Piper, M. Methodological challenges in utilizing miRNAs as circulating biomarkers. J. Cell. Mol. Med. 18 (3), 371-390 (2014).
  27. Mangolini, A., et al. Diagnostic and prognostic microRNAs in the serum of breast cancer patients measured by droplet digital PCR. Biomark. Res. 3, 12(2015).
  28. Miotto, E., Saccenti, E., Lupini, L., Callegari, E., Negrini, M., Ferracin, M. Quantification of circulating miRNAs by droplet digital PCR: comparison of EvaGreen- and TaqMan-based chemistries. Cancer Epidemiol. Biomarkers Prev. 23 (12), 2638-2642 (2014).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

MicroRNART qPCRRNA

מאמרים קשורים