הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

מודל מורין של המודיאליזה גישה לתפקוד לקוי של היד

2K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/63892

⸱

31 במאי 2022

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Applied Physiology and Kinesiology, University of Florida, 2Division of Vascular Surgery and Endovascular Therapy, University of Florida, 3Center for Exercise Science, University of Florida, 4Malcom Randall Veteran Affairs Medical Center

במאמר זה

סיכום

פרוטוקול זה מפרט את השלבים הכירורגיים של יצירת פיסטולה עורקית איליאק משותפת. פיתחנו מודל זה כדי לחקור פתופיזיולוגיה של הגפיים הקשורות להמודיאליזה.

תקציר

מחלת כליות כרונית היא בעיה מרכזית בבריאות הציבור, והשכיחות של מחלת כליות סופנית (ESRD) הדורשת טיפולים כרוניים בתחליפי כליות כגון המודיאליזה ממשיכה לעלות. מיקום פיסטולה עורקית אוטוגנית (AVF) נותר אפשרות גישה וסקולרית עיקרית עבור חולי ESRD. למרבה הצער, כמחצית מחולי המודיאליזה חווים הפרעות בתפקוד היד הקשור לדיאליזה (ARHD), החל מנימול עדין ועד נמק דיגיטלי. יש לציין כי המניעים הביולוגיים הבסיסיים האחראים ל- ARHD אינם מובנים היטב, ולא קיים מודל מתאים של בעלי חיים כדי להבהיר את המנגנונים ו / או לפתח טיפולים חדשניים למניעה/טיפול ב- ARHD. במאמר זה נתאר מודל עכברי חדש שבו נוצר AVF בין העורק האיליאק המשותף השמאלי לווריד, ובכך מקל על הערכת הפתופיזיולוגיה של הגפיים. המיקרו-כירורגיה כוללת בידוד כלי דם, ורנוטומיה אורכית, יצירת אנסטומוזה עורקית ושחזור ורידי. ניתוחי דאם כוללים את כל השלבים הקריטיים למעט יצירת AVF. מיקום Iliac AVF גורם לשינויים רלוונטיים מבחינה קלינית בהמודינמיקה המרכזית, איסכמיה היקפית וליקויים בביצועים נוירומוטוריים בגפיים האחוריות. מודל AVF פרה-קליני חדשני זה מספק פלטפורמה שימושית המשחזרת הפרעות נוירומוטוריות נפוצות שדווחו על ידי חולי המודיאליזה, ומאפשר לחוקרים לחקור את המנגנונים של פתופיזיולוגיה של ARHD ולבחון טיפולים פוטנציאליים.

מבוא

הקמה ושימור של גישה תפקודית לכלי הדם נותרה מטרה עיקרית חשובה עבור חולי מחלת כליות סופנית (ESRD) המקבלים טיפול בתחליפי כליות באמצעות המודיאליזה1. טיפולי המודיאליזה חוזרים ונשנים נחוצים כדי להסיר מוצרי פסולת, לנרמל אלקטרוליטים ולשמור על איזון נוזלים ברגע שתפקוד הכליות הופך ללקוי, ולכן הם נחוצים להישרדות לטווח ארוך2. לכן, גישה וסקולרית מייצגת "חבל הצלה" עבור חולים עם ESRD, ומיקום פיסטולה עורקית אוטוגנית (AVF) נותר אפשרות גישה מועדפת לדיאליזה בקרב קבוצהזו 3. עם זאת, כ-30%-60% מחולי המודיאליזה חווים ספקטרום של נכויות ידיים, המוגדרות קלינית כתפקוד לקוי של היד (ARHD). הסימפטומים של ARHD יכולים לנוע בין חולשה וחוסר תיאום למונופלגיה ונמק דיגיטלי, אשר יכול להתרחש מוקדם לאחר יצירת AVF או להתפתח בהדרגה עם התבגרות פיסטולה. יתר על כן, ARHD מסבך את לוח הזמנים לטיפול ESRD, אשר קשורה לאיכות חיים ירודה, סיכון גבוה למחלות לב וכלי דם, ותמותה מוגברת 2,3,4.

מספר מודלים של בעלי חיים פותחו כדי לחקור עיצוב מחדש של כלי דם הנגרמים על ידי שינויים המודינמיים לאחר יצירת AVF 5,6,7,8,9,10,11,12,13,14,15. מודלים גדולים של בעלי חיים עם AVF 16,17,18,19,20 ומודלים של מכרסמים המשתמשים באנסטומוזה של עורק התרדמה-עורק הצוואר או בהיווצרות פיסטולה אינפרא-כלייתית של אבי העורקים הנבוב התחתון מבוססים היטב כדי לבחון את ההיבטים הנ"ל של התבגרות AVF ופטנטיות 21 . לדוגמה, יתר לחץ דם ורידי, קוטר לומינלי גדול יותר ועובי דופן ורידי מוגבר הם סימנים להבשלה מוצלחת של AVF, בעוד שפיברוזיס משמעותי של המדיה והתפתחות היפרפלזיה אינטימית או פקקת ללא שינויים בזרימה מאפיינים לעתים קרובות כשלים של AVF 6,15. עם זאת, מודלים של בעלי חיים גדולים חסרים את הגמישות הניסיונית או את היכולות המהונדסות של מודלים של מורין, בעוד שמודלים עכשוויים של מכרסמים אינם מאפשרים בקלות חקירה של ARHD בשל המיקום האנטומי ו / או היעדר פתולוגיה של הגפיים הקשורות. ואכן, בשל היעדר מודל מבוסס של בעלי חיים פרה-קליניים המשחזר את הפנוטיפ הקליני הרלוונטי, התקדמות המחקר להבהרת המנגנונים הפתוביולוגיים ופיתוח אסטרטגיות טיפוליות חדשניות נותרה קפואה, למרות עלייה הדרגתית במספר חולי ARHD סימפטומטיים. לכן, המטרה העיקרית של מחקר זה היא להציג מודל עכבר ייחודי של ARHD, מתן צעדים פרוצדורליים של מיקרו-כירורגיה AVF ואפיון של פתופיזיולוגיה הקשורה ל- AVF.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

כל ההליכים אושרו על ידי הוועדה המוסדית לטיפול ושימוש בבעלי חיים (IACUC) של אוניברסיטת פלורידה והמרכז הרפואי לענייני חיילים משוחררים מלקום רנדל.

הערה: עכברי C57BL/6J זכרים בוגרים צעירים (בני 8-10 שבועות) נרכשו ממעבדת ג'קסון ושוכנו באור (12 שעות אור: 12 שעות מחזור כהה), טמפרטורה (22 ° C ± 1 ° C) ולחות (50% ± 10%) מתקן בעלי חיים נשלט. חמישה עכברים הורשו לשהות בכל כלוב (W:18 cm x L:29 cm x H:12.5 cm) עם חומרי קינון, מזון ומים זמינים עד לליביטום. לאחר 7 ימים של התאקלמות בית גידול עם צ'או סטנדרטי, העכברים שונו לתזונת צ'או מבוססת קזאין למשך 7 ימים כשלב מעבר לתזונה. לאחר מכן, עכברים קיבלו צ'או מבוסס קזאין עם תוספת אדנין של 0.2%-0.15% במשך 2-3 שבועות כדי לגרום לתפקוד כלייתי לקוי (CKD) לפני ניתוח AVF כפי שתואר קודם לכן22,23,24. עכברי ביקורת קיבלו דיאטת צ'או מבוססת קזאין ללא תוספת אדנין (ביקורת). דיאטות הבקרה וה- CKD נשמרו לאורך כל תקופת ההחלמה שלאחר הניתוח (POD).

1. מדידות טרום ניתוחיות

  1. להעריך מדידות תוצאה בסיסיות/טרום ניתוחיות, קוטר כלי דם אבי העורקים ופרמטרי זרימה המודינמיים באמצעות הדמיית אולטרסאונד דופלקס וזילוח הגפיים האחוריות באמצעות דופלר לייזר כמתואר לעיל25.
  2. קבע את חוזק אחיזת הגפיים האחוריות החד-צדדיות ואת הערכת ההליכה של ההליכון כדי לבסס את תפקוד הגפה האחורית הבסיסית כפי שתואר קודם לכן25,26.
  3. להעריך את תפקוד הכליות על ידי מדידת קצב סינון גלומרולרי (GFR) באמצעות פינוי FITC-אינולין ו / או רמת חנקן אוריאה בדם בסרום (BUN) כפי שתואר קודם לכן:22,24,27.

2. הכנה כירורגית

  1. הכינו את הכלים והציוד הכירורגיים הבאים (טבלת חומרים): מעקר חרוזים חם, חומר סיכה לעיניים, גוזם עטים, מכיני אלכוהול, מגבוני כלורהקסידין, מלקחיים Graefe דקים במיוחד, מלח 0.9% מעוקר, מזרקי מחט 29 גרם ו-31 גרם, 2 x 2 ספוגים לא ארוגים, עגולים בינוניים חד-צדדיים (SC-9) וצמר גפן קטן דו-צדדי קשה, חד, מחודד (SC-4), צמר גפן בטמפרטורה נמוכה, מלקחיים ישרים של Dumont, מלקחיים של Dumont בזווית 45°, מספריים קפיציים ישרים של Vannas, מספריים קפיציים מעוקלים של Vannas, מחזיקי מחטים עגולים עם ידית, תפרים בגדלים שונים (משי 4-0, 5-0 PGA, משי 6-0 ותפרי ניילון 10-0), הפרין, ספוג ג'לטין נספג, מחזיק מחט ישר ובופרנורפין.
    הערה: גומיות לקיבוע גפיים ומחזירים לבטן ולרגליים נעשו בעבודת יד.
  2. יש לעקר את ההכנות הכירורגיות באמצעות אוטוקלאבה עם עיקור בקיטור בטמפרטורה של 120-125 מעלות צלזיוס למשך 30 דקות ולאחר מכן לייבוש למשך 30 דקות לפני הניתוח. יש להשתמש בניקוי אתנול 70% ואחריו עיקור חרוזים חמים (240-270 מעלות צלזיוס למשך 3 דקות) בין כל ניתוח לבעלי חיים.
  3. הכינו מי מלח רגילים מעוקרים 0.9%, מלוחים הפרינים (100 IU/mL) ובופרנורפין (0.01 מ"ג/מ"ל) באמצעות מזרקי מחט 29-31 גרם.

3. הרדמה ומיקום

  1. יש להתחיל הרדמה של עכבר בתא האינדוקציה (0.8 מ"ל/דקה, 2.5% איזופלורן). לאחר שהעכבר מורדם כראוי, הניחו את העכבר במצב שכיבה על תחנת הניתוח המכוסה על ידי רפש סטרילי. יש להוריד את ריכוז האיזופלורן ל~1.2% במהלך שלבי הגילוח והמיקום.
  2. יש למרוח את חומר הסיכה העיני כדי להגן על העיניים מפני התייבשות במהלך הניתוח.
  3. בעזרת גוזם עטים, מגלחים את שיער הבטן לצורך הניתוח ואת שיער הרגליים למדידות זילוח לאחר הניתוח. נקו את השיער משדה הניתוח.
  4. יש לקבע את הגפיים העליונות והתחתונות בעזרת גומיות ונגיעות, לבדוק את עומק ההרדמה על ידי ניטור רפלקס צביטת הבוהן ולבצע הרדמה לפי הצורך. בצע את הערכת דפוס הנשימה כל 3-5 דקות לאורך ההליך הכירורגי כדי לכייל את רמת ההרדמה.

4. חקר אזור המטרה הניתוחית

  1. נקו את אזור העור המגולח מספר פעמים, לסירוגין בין הכנת אלכוהול למגבוני כלורהקסידין בתבנית מעגלית לחיטוי שדה הניתוח.
  2. בצע לפרטומיה בקו האמצע מהקצה התחתון של שולי עצם החזה לסימפיזת הערווה. נתחו את כרית השומן של הפאביס כדי לקבל שדה ניתוחי רחב יותר.
  3. פתח את הצליוטומיה כדי לגשת לתוכן הצפק עם retractors ו outucerate המעי הדק והגס באמצעות צמר גפן עגול בינוני, חד צדדי. מכסים את המעיים בספוג לא ארוג ספוג במי מלח.
  4. לאחר קבלת חשיפה מספקת של כלי הדם הרטרופריטוניאליים, כסו את המעי, הכליות והשופכנים הנותרים בספוגים קטנים ספוגי מלח לא ארוגים. יש לפנות שלפוחית שתן נפוחה על ידי סחיטה עדינה של כיפת השלפוחית בעזרת מקלוני צמר גפן עגולים בינוניים בעלי קצה אחד לפי הצורך.
  5. נתחו בזהירות את הפאשיה הפריווסקולרית ואת רקמת השומן מכ-1 ס"מ פרוקסימלי לביפורקציה של אבי העורקים המשתרע עד לרמת הביפורקציה האיליאק השמאלית באמצעות מלקחיים ישרים של Dumont ומקלוני צמר גפן קטנים דו-צדדיים קשים, חדים ומחודדים.
    הערה: העורק האיליאק השמאלי והווריד נותרים דבוקים זה לזה תוך בידוד מבני העורקים בהמוניהם. צעד זה יספק גיוס כלי שיט מספיק כדי להקל על יצירת AVF.
  6. אם נתקלים בענפים ורידיים קטנים שמקורם או מתמזגים עם וריד האיליאק המשותף השמאלי, יש לקשור אותם באמצעות צריבה בטמפרטורה נמוכה עם או בלי תפר משי 6-0 לפי הצורך.
  7. העבירו את קצה המלקחיים הזוויתיים מתחת לצרור כלי הדם האיליאק המשותף השמאלי ופרשו בעדינות מספר פעמים כדי לגייס את כלי הדם מהשרירים הרטרופריטוניאליים שמתחתיו (איור 1A).

5. יצירת אנסטומוזה משותפת של פיסטולה עורקית איליאק

  1. הניחו שני תפרי משי 4-0 סביב צרור העורקים האיליאק המשותף השמאלי המבודד והשתמשו בהם כליגטורות (למשל, מלחציים צולבים) לצרור כלי הדם. צור קשר יחיד עם כל עניבת משי 4-0 והחל אותם ברצף מפרוקסימלי לדיסטלי.
  2. ודא כי מלחציים צולבים משי ממוקמים מספיק רחוק זה מזה כדי לבודד ~ 2 מ"מ של אורך כלי הדם, ואת היישום הרציף של ליגטורות התפר יהיה לזרז גודש ורידים iliac שמאל.
  3. באמצעות מיתרי תפרי משי 4-0 כידיות, סובבו את צרור כלי הדם האיליאק השמאלי בכיוון השעון וכווננו את המיקום כדי למקם באופן זמני את הווריד הקדמי לעורק (איור 1B).
  4. הכינו ארס אורכי (~1 מ"מ) עם מספריים קפיציים ישרים של Vannas ושטפו בעדינות שאריות דם מלומן ורידי עם 0.9% מלוחים (איור 1C). יש לנקוט משנה זהירות במהלך שלב זה, שכן סומק מי מלח בלחץ גבוה עלול לגרום להפרעה ורידית.
    הערה: האזור של צבע אדום שנשאר בעורק האיליאק לאחר שטיפה ורידית מספק חלון חזותי לשלב הבא.
  5. מניחים תפר ניילון 10-0 דרך הדופן האחורית של הווריד.
    הערה: חלק זה של הווריד האיליאק צריך להיות בחיבור מיידי לקיר הקדמי של העורק האיליאק, והקירות דבוקים באופן טבעי. התפר צריך לעבור דרך שני הדפנות ולקשור את התפר בקשר יחיד (איור 1D). שימו לב שכמות קטנה של דימום, שמקורו בדם העומד בעורק האיליאק, תופיע ברגע שהמחט תעבור דרך שני הדפנות. אם הדימום התוך-לומינלי נמשך במהלך שלב זה, מלחציים צולבים של תפר המשי עשויים להיות רופפים מדי ויש צורך להדק אותם עוד יותר.
  6. אחזו בקצוות התפר המאולתר והניחו אותם תחת מתח עדין כדי להזיז את הקיר הקדמי מהקיר האחורי של העורק האיליאק. בצע חתך אליפטי ~ 1.0 מ"מ x 0.3 מ"מ באמצעות מספריים קפיציים מעוקלים של Vannas, תוך הסרת הדפנות הדבוקות של העורק האיליאק והווריד.
    הערה: הפיסטולה העורקית נוצרת לאחר יצירת תעלה משותפת זו. בשלב זה ניתן לפגוע בדפנות הצידיות של הווריד כאשר החתך בדופן הווריד האיליאק האחורי/הקדמי מתבצע באמצעות חשיפה לוורידים. יש לנקוט משנה זהירות כדי למנוע סיבוך זה מכיוון שזה יכול להפחית באופן משמעותי את קוטר הפיסטולה ולהוביל להתפתחות פקקת.
  7. שטפו בעדינות את שאריות הדם של לומן העורקים החשופים עם 0.9% מלוחים ומלוחים הפריניזציה (100 IU/mL)28 (איור 1E).
  8. לאחר יצירת ה-AVF, תקנו את הווריד הראשוני של הדופן הקדמית באמצעות שניים או שלושה תפרי ניילון 10-0 באופן קטוע (איור 1F).
  9. החזירו את צרור כלי הדם לאוריינטציה האנטומית המקורית שלו והניחו חתיכה קטנה של ספוג ג'לטין נספג במי מלח בסמוך לוורונוטומיה המתוקנת כדי להקל על המוסטאזיס.
  10. שחררו את ליגטורות המהדק הצולבות 4-0-0 ברצף מדיסטלי לפרוקסימלי. עקוב מקרוב אחר אתר הווריד לדימום יתר תוך התרופפות כל תפר.
  11. אם התיקון אינו המוסטטי כראוי, להחיל מחדש את מלחציים צולבים ומניחים עוד תפר ניילון 10-0 באתר הדימום. אם המוסטאזיס מובטח, הסר את התפרים ולאחר מכן את ספוג הג'לטין נספג.
  12. שפשפו בעדינות את צרור כלי הדם עם מקלוני צמר גפן קטנים קשיחים, חדים ומחודדים, אשר מקלים עוד יותר על שיקום זרימת הדם. לאשר הצלחה טכנית של הניתוח באמצעות הדמיה של דם מחומצן אדום פועם, אדום בוהק נכנס לווריד iliac וערבוב עם דם ורידי כהה חוזר מן הגפה האחורית.
  13. הזריקו מי מלח הפריניזציה (0.2 IU/g)15 לתוך IVC עבור נוגדי קרישה מערכתיים לשיפור תוצאות הפטנט של AVF.
    הערה: למרות ששלב זה מתרחש לאחר שחזור כלי הדם (בניגוד לאנלוגיה האנושית שבה מתרחשת הפריניזציה לפני הידוק כלי הדם), נצפתה הפחתה בדימום תוך ניתוחי ושיפור בפטנט AVF כאשר בוצעו בשלב זה של ההליך. הזרקה לאתר מכוסה בפאשיה ו/או שומן עדיפה למניעת דימום ממקום הניקוב.
  14. בדוק מחדש את האתר הכירורגי עבור hemostasis לאחר הזרקת מי מלח heparinized. אם אין חשש לדימום, סגרו את הפאשיה בקו האמצע ולאחר מכן את החתך בעור עם תפרים נספגים של 5-0 PGA בצורה רציפה.
  15. עבור פעולות דמה, בצע את כל השלבים העיקריים של ההליך למעט היווצרות AVF. יש למרוח קשר יחיד של ליגטורת משי 4-0 בקצה הפרוקסימלי של צרור העורקים האיליאק השמאלי ולהתאים את זמני ההידוק לניתוחי AVF (למשל, ~20 דקות, תלוי במיומנות המיקרוכירורג).

6. טיפול ומדידה לאחר הניתוח

  1. לאחר סגירת הלפרטומיה, יש למדוד את זילוח הדם של שרירי הטיביאליס הקדמיים הדו-צדדיים וכפות הגחון באמצעות הדמיית דופלר לייזר.
    הערה: גירעונות זילוח חד צדדיים יאשרו הסטת פיסטולה של זרימת העורקים ("גניבה").
  2. יש לתת 0.1 מ"ג/ק"ג בופרנורפין תת עורית ולהחזיר את העכבר לכלוב עכבר שחומם מראש עם מצעים רכים בעלי כושר ספיגה גבוה עם קן.
  3. אפשר לעכבר להתאושש בכלוב העכבר שחומם מראש עד שההרדמה פגה, מה שיהיה ברור כאשר העכבר אמבולטורי ואינטראקטיבי (~ 2 שעות). במהלך ההתאוששות, תן לעכבר גישה קלה לתזונה רכה ולחה.
  4. מתן buprenorphine ו / או לחות מלוחים תת עורית כל 12 שעות עד 48 שעות ולבצע ניטור יומי במשך 5 ימים לאחר הניתוח. המתת חסד לבעלי חיים עם מצב מתדרדר או נמק רקמות מוגזם, המסווגים כציון איסכמיה שונה ≥229.
  5. השתמש בהערכות אולטרסאונד דופלקס סדרתי כדי להעריך את הפטנט פיסטולה לאחר הניתוח; עכברים עם פקקת פיסטולה אינם נכללים בניתוחים הבאים, אלא אם מטרת הניסויים היא לאפיין כישלון הבשלה AVF.
  6. קבע מדידות תוצאה אחרות לאחר הניתוח, כגון המודינמיקה מקומית, חוזק אחיזה וביצועי הליכה במהלך תקופת ההתאוששות. אספו פיסטולה ורקמות שריר כדי להעריך את ההיסטומורפולוגיה בסוף הניסוי במהלך ההקרבה25,27.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

בעלי חיים שנחשפו לדיאטת אדנין הפחיתו את שיעורי הסינון הגלומרולרי (בקרה: 441.3 ± 54.2 מיקרוליטר/דקה לעומת CKD: 165.1 ± 118.3 מיקרוליטר/דקה, p < 0.05) ורמות גבוהות יותר של חנקן אוריאה בדם בסרום (בקרה: 20.39 ± 4.2 מיקרוליטר/דקה לעומת CKD: 38.20 ± 10.65 מיקרוליטר/דקה, p < 0.05) בהשוואה לבעלי החיים שקיבלו צ'או מבוסס קזאין, המאשר את קיומה של אי ספיקת כליות לפני ניתוח פיסטולה עורקית.

אימות פטנט AVF
למרות שאישור חזותי תוך ניתוחי להצלחה טכנית הוא הזיהוי הראש...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

השכיחות של חולי המודיאליזה עם ARHD לאחר יצירת AVF המשיכה לעלות30,31. ואכן, סיבוכים סימפטומטיים לא פתורים 4,32,33 כגון כאב, חולשה, נימול ו / או טווח תנועה מופחת יכולים להשפיע לרעה על רווחת המטופלים 4,32,33,34,35,36 ולאיים על יכולתם לקבל טיפול המודיאליזה חוזר באיכות גבוהה.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

למחברים אין מה לחשוף.

תודות

אנו מודים מקרב לב לד"ר גוואני לו מהמחלקה לכירורגיית כלי דם וטיפול אנדוסקולרי באוניברסיטת פלורידה על התמיכה הטכנית בפיתוח מודל AVF iliac, כמו גם הכשרה כירורגית, וראווי קומאר מהמחלקה לפיזיולוגיה יישומית וקינסיולוגיה באוניברסיטת פלורידה על התמיכה הטכנית בקבלת התמונות המיקרוכירורגיות החיות.

עבודה זו נתמכה על ידי מענקים מהמכונים הלאומיים לבריאות וללב, ריאות ודם לאומיים, מספרי המכון R01-HL148697 (ל- S.T.S.), כמו גם מענק איגוד הלב האמריקאי מספר POST903198 (לק.ק).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
0.15% דיאטת אדניןENVIGOTD.13089920% קזאין, 0.15% אדנין, 0.9% P
0.2% דיאטת אדניןENVIGOTD.13090020% קזאין, 0.2% אדנין, 0.9% P
10-0 תפר ניילוןAD כירורגיXXS-N1005T4
29 גרם מזרקי מחטExel International14-841-32
31 G מזרקי מחטAdvocateU-100 מזרק אינסולין
4-0 תפר משיAD כירורגיS-S41813
מלקחיים דומונט בזווית 45 מעלותFine Science Tools11253-25
5-0 תפר PGAAD כירורגיPSGU-518R13
6-0 תפר משיAD כירורגיS-S618R13
ספוג ג'לטין נספגETHICON1975
אלכוהול מכיןCovidien5110-cs400070% איזופרופיל אלכוהול
בופרנורפיןNA0.01 גרם/מ"ל
C57BL6/J עכברימעבדה Jaxon
דיאטת קזאיןENVIGOTD.13089820% קזאין, 0.9% P
צמר גפןCONSTIXSC-9צמר גפן עגול בינוני חד קצה
צמר גפןCONSTIXSC-4ספוגית כותנה קטנה דו-צדדית קשה, חדה ומחודדת
Curity ספוגים לא ארוגים (2x2)Covidien9022
מספריים קפיציים מעוקלים של VannasFine Science Tools15001-08
אולטרסאונד דופלרVisualSonicsVevo 2100
מלקחיים דקים במיוחדFine ScienceTools 11150-102 זוגות
עין חומר סיכהCLCMEDICAOptixcare סיכה
הפרין (5000 U/mL)רשימת קודי תרופות לאומית63739-953-25100 IU/mL
מעקר חרוזים חמיםFine Science Tools18000-50
צריבה בטמפרטורה נמוכהBovieAA04
גוזם עטWahl5640-600
כפפות כירורגיות ללא אבקהAnsell7824PF
מחזיקי מחט עם ידית עגולהכלי מדע עדינים12076-12
וילון מגבת סטריליDynarexDY440-MI
מעוקר 0.9% מלחרשימת קודי תרופות לאומית46066-807-25
מלקחיים ישרים דומונטכלי מדע עדינים11253-20
מחזיק מחט ישרמדע עדין כליםFST 12001-13
מספריים קפיציים ישרים של ואנהמדע עדינים25001-08
TrizChLOR4רשימת קודי תרופות לאומית17033-279-50
לעיניים כלי

מקורות

  1. Gameiro, J., Ibeas, J. Factors affecting arteriovenous fistula dysfunction: a narrative review. The Journal of Vascular Access. 21 (2), 134-147 (2020).
  2. Culleton, B. F., Asola, M. R. The impact of short daily and nocturnal hemodialysis on quality of life, cardiovascular risk and survival. Journal of Nephrology. 24 (4), 405(2011).
  3. Huber, T. S., et al. Access-related hand ischemia and the hemodialysis fistula maturation study. Journal of Vascular Surgery. 64 (4), 1050-1058 (2016).
  4. Rehfuss, J. P., et al. The spectrum of hand dysfunction after hemodialysis fistula placement. Kidney International Reports. 2 (3), 332-341 (2017).
  5. Caplice, N. M., et al. Neoangiogenesis and the presence of progenitor cells in the venous limb of an arteriovenous fistula in the rat. American Journal of Physiology-Renal Physiology. 293 (2), 470-475 (2007).
  6. Castier, Y., et al. Characterization of neointima lesions associated with arteriovenous fistulas in a mouse model. Kidney International. 70 (2), 315-320 (2006).
  7. Croatt, A. J., et al. Characterization of a model of an arteriovenous fistula in the rat: the effect of L-NAME. The American Journal of Pathology. 176 (5), 2530-2541 (2010).
  8. Guzman, R. J., Krystkowiak, A., Zarins, C. K. Early and sustained medial cell activation after aortocaval fistula creation in mice. Journal of Surgical Research. 108 (1), 112-121 (2002).
  9. Kojima, T., et al. The relationship between venous hypertension and expression of vascular endothelial growth factor: hemodynamic and immunohistochemical examinations in a rat venous hypertension model. Surgical Neurology. 68 (3), 277-284 (2007).
  10. Misra, S., et al. The rat femoral arteriovenous fistula model: increased expression of matrix metalloproteinase-2 and -9 at the venous stenosis. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 19 (4), 587-594 (2008).
  11. Nath, K. A., Kanakiriya, S. K., Grande, J. P., Croatt, A. J., Katusic, Z. S. Increased venous proinflammatory gene expression and intimal hyperplasia in an aorto-caval fistula model in the rat. The American Journal of Pathology. 162 (6), 2079-2090 (2003).
  12. Nath, K. A., et al. The murine dialysis fistula model exhibits a senescence phenotype: pathobiological mechanisms and therapeutic potential. American Journal of Physiology-Renal Physiology. 315 (5), 1493-1499 (2018).
  13. Yamamoto, K., et al. The mouse aortocaval fistula recapitulates human arteriovenous fistula maturation. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 305 (12), 1718-1725 (2013).
  14. Yang, S. T., et al. Adult mouse venous hypertension model: common carotid artery to external jugular vein anastomosis. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (95), e50472(2015).
  15. Wong, C. Y., et al. A novel murine model of arteriovenous fistula failure: the surgical procedure in detail. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (108), e53294(2016).
  16. Krishnamoorthy, M. K., et al. Anatomic configuration affects the flow rate and diameter of porcine arteriovenous fistulae. Kidney International. 81 (8), 745-750 (2012).
  17. Wang, Y., et al. Venous stenosis in a pig arteriovenous fistula model-anatomy, mechanisms and cellular phenotypes. Nephrology Dialysis Transplantation. 23 (2), 525-533 (2008).
  18. Loveland-Jones, C. E., et al. A new model of arteriovenous fistula to study hemodialysis access complications. The Journal of Vascular Access. 15 (5), 351-357 (2014).
  19. Nugent, H. M., et al. Perivascular endothelial implants inhibit intimal hyperplasia in a model of arteriovenous fistulae: a safety and efficacy study in the pig. Journal of Vascular Research. 39 (6), 524-533 (2002).
  20. Butterfield, A. B., et al. Inverse effect of chronically elevated blood flow on atherogenesis in miniature swine. Atherosclerosis. 26 (2), 215-224 (1977).
  21. Kwei, S., et al. Early adaptive responses of the vascular wall during venous arterialization in mice. The American Journal of Pathology. 164 (1), 81-89 (2004).
  22. Berru, F. N., et al. Chronic kidney disease exacerbates ischemic limb myopathy in mice via altered mitochondrial energetics. Scientific Reports. 9 (1), 15547(2019).
  23. Khattri, R. B., Thome, T., Ryan, T. E. Tissue-specific 1H-NMR metabolomic profiling in mice with adenine-induced chronic kidney disease. Metabolites. 11 (1), 45(2021).
  24. Thome, T., et al. Impaired muscle mitochondrial energetics is associated with uremic metabolite accumulation in chronic kidney disease. Journal of Clinical Investigation Insight. 6 (1), 139826(2021).
  25. Kim, K., et al. Development of a murine iliac arteriovenous fistula model for examination of hemodialysis access-related limb pathophysiology. Journal of Vascular Surgery-Vascular Science. 2, 247-259 (2021).
  26. Castro, B., Kuang, S. Evaluation of muscle performance in mice by treadmill exhaustion test and whole-limb grip strength assay. Bio-protocol. 7 (8), 2237(2017).
  27. Kim, K., et al. Skeletal myopathy in CKD: a comparison of adenine-induced nephropathy and 5/6 nephrectomy models in mice. American Journal of Physiology-Renal Physiology. 321 (1), 106-119 (2021).
  28. Yang, B., Shergill, U., Fu, A. A., Knudsen, B., Misra, S. The mouse arteriovenous fistula model. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 20 (7), 946-950 (2009).
  29. Brenes, R. A., et al. Toward a mouse model of hind limb ischemia to test therapeutic angiogenesis. Journal of Vascular Surgery. 56 (6), 1669-1679 (2012).
  30. Bello, A. K., et al. Assessment of global kidney health care status. Journal of the American Medical Association. 317 (18), 1864-1881 (2017).
  31. Levin, A., et al. Global kidney health 2017 and beyond: a roadmap for closing gaps in care, research, and policy. The Lancet. 390 (10105), 1888-1917 (2017).
  32. Hassabi, M., et al. Comparing strength and range of motion of the upper limb with AV fistula access with the contralateral upper limb among patients treated with hemodialysis. Researcher Bulletin of Medical Sciences. 22 (1), 1(2017).
  33. Capitanini, A., Galligani, C., Lange, S., Cupisti, A. Upper limb disability in hemodialysis patients: evaluation of contributing factors aside from amyloidosis. Therapeutic Apheresis and Dialysis. 16 (3), 242-247 (2012).
  34. Altintepe, L., et al. Physical disability, psychological status, and health-related quality of life in older hemodialysis patients and age-matched controls. Hemodialysis International. 10 (3), 260-266 (2006).
  35. Castaneda, C., et al. Resistance training to reduce the malnutrition-inflammation complex syndrome of chronic kidney disease. American Journal of Kidney Diseases. 43 (4), 607-616 (2004).
  36. Hurton, S., et al. Upper extremity complications in patients with chronic renal failure receiving haemodialysis. Journal of Renal Care. 36 (4), 203-211 (2010).
  37. Mazumder, M. K., Giri, A., Kumar, S., Borah, A. A highly reproducible mice model of chronic kidney disease: Evidences of behavioural abnormalities and blood-brain barrier disruption. Life Sciences. 161, 27-36 (2016).
  38. Jia, T., et al. A novel model of adenine-induced tubulointerstitial nephropathy in mice. BioMed Central Nephrology. 14, 116(2013).
  39. Kieswich, J. E., et al. A novel model of reno-cardiac syndrome in the C57BL/ 6 mouse strain. BioMed Central Nephrology. 19 (1), 346(2018).
  40. Abassi, Z., Goltsman, I., Karram, T., Winaver, J., Hoffman, A. Aortocaval fistula in rat: a unique model of volume-overload congestive heart failure and cardiac hypertrophy. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2011, 729497(2011).
  41. Brower, G. L., Levick, S. P., Janicki, J. S. Inhibition of matrix metalloproteinase activity by ACE inhibitors prevents left ventricular remodeling in a rat model of heart failure. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 292 (6), 3057-3064 (2007).
  42. Francis, B. N., Abassi, Z., Heyman, S., Winaver, J., Hoffman, A. Differential regulation of ET (A) and ET (B) in the renal tissue of rats with compensated and decompensated heart failure. Journal of Cardiovascular Pharmacology. 44, 362-365 (2004).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

מודל מורין של המודיאליזה גישה לתפקוד לקוי של היד
צרו קשר
המליצו לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

זכויות יוצרים © 2026 MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.