הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

העשרת שלפוחיות חוץ-תאיות שמקורן באסטרוציטים מפלזמה אנושית

3.5K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/64107

⸱

3 באוגוסט 2022

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Sant Pau Memory Unit, Department of Neurology, Hospital de la Santa Creu i Sant Pau, Biomedical Research Institute Sant Pau, Universitat Autònoma de Barcelona, 2Center of Biomedical Investigation Network for Neurodegenerative Diseases (CIBERNED), 3Movement Disorders Unit, Department of Neurology, Hospital de la Santa Creu i Sant Pau, 4Department of Endocrinology and Nutrition, Hospital Clínic de Barcelona, August Pi i Sunyer Biomedical Research Institute - IDIBAPS, 5Spanish Biomedical Research Network in Physiopathology of Obesity and Nutrition (CIBEROBN)

במאמר זה

סיכום

פרוטוקול זה מתאר העשרה של שלפוחיות חוץ-תאיות שמקורן באסטרוציטים (ADEVs) מפלזמה אנושית. הוא מבוסס על הפרדת EVs על ידי משקעים פולימרים, ואחריו לכידה חיסונית מבוססת ACSA-1 של ADEVs. ניתוח ADEVs עשוי להציע רמזים לחקר שינויים במסלולים דלקתיים של חולים חיים, באופן לא פולשני על ידי ביופסיה נוזלית.

תקציר

שלפוחיות חוץ-תאיות (EVs) הן ננו-חלקיקים ביולוגיים המופרשים על ידי כל התאים לתקשורת תאית וסילוק פסולת. הם משתתפים במגוון רחב של פונקציות על ידי פעולה והעברת המטענים שלהם לתאים אחרים בתנאים פיזיולוגיים ופתולוגיים. בהתחשב בנוכחותם בנוזלים ביולוגיים, EVs מייצגים משאב מצוין לחקר תהליכי מחלה ויכולים להיחשב כביופסיה נוזלית לגילוי סמנים ביולוגיים. היבט אטרקטיבי של ניתוח EV הוא שניתן לבחור אותם על סמך סמנים של תא המוצא שלהם, ובכך לשקף את הסביבה של רקמה ספציפית במטען שלהם. עם זאת, אחת המגבלות העיקריות הקשורות לשיטות בידוד EV היא היעדר קונצנזוס מתודולוגי ופרוטוקולים סטנדרטיים. אסטרוציטים הם תאי גליה עם תפקידים חיוניים במוח. במחלות נוירודגנרטיביות, תגובתיות אסטרוציטים עלולה להוביל לשינוי במטען EV ולתקשורת סלולרית חריגה, מה שמקל / משפר את התקדמות המחלה. לפיכך, ניתוח של אסטרוציטים EVs עשוי להוביל לגילוי סמנים ביולוגיים ומטרות מחלה פוטנציאליות. פרוטוקול זה מתאר שיטה דו-שלבית להעשרה של EVs שמקורם באסטרוציטים (ADEVs) מפלזמה אנושית. ראשית, EVs מועשרים מפלזמה דפיברינה באמצעות משקעים מבוססי פולימרים. לאחר מכן מתבצעת העשרה של ADEVs באמצעות לכידה חיסונית מבוססת ACSA-1 עם מיקרו-חרוזים מגנטיים, כאשר EVs תלויים נטענים על עמודה הממוקמת בשדה מגנטי. רכבי EV בעלי תווית מגנטית ACSA-1+ נשמרים בתוך העמודה, בעוד שרכבי EV אחרים זורמים דרכו. לאחר הסרת העמודה מהמגנט, ADEVs נפלטים ומוכנים לאחסון וניתוח. כדי לאמת את ההעשרה של סמני אסטרוציטים, ניתן למדוד חלבון חומצי סיבי גליה (GFAP), או סמנים אסטרוציטים ספציפיים אחרים ממקור תוך-תאי, ולהשוות אותם לזרימה. פרוטוקול זה מציע שיטה קלה וחסכונית בזמן להעשרת ADEVs מפלזמה שיכולה לשמש כפלטפורמה לבחינת סמנים רלוונטיים לאסטרוציטים.

מבוא

שלפוחיות חוץ-תאיות (EVs) הן קבוצה הטרוגנית של ננו-חלקיקים קרומיים המופרשים על ידי כל סוגי התאים, הנושאים חלבונים, שומנים וחומצות גרעין1. מיקרו-שלפוחיות (100-1000 ננומטר), אקסוזומים (30-100 ננומטר) וגופים אפופטוטיים (1000-5000 ננומטר) מהווים את סוגי ה-EV העיקריים, כפי שנבדלים על ידי אתר מוצאם 2,3. EVs מווסתים תהליכים פיזיולוגיים חשובים, כגון הצגת אנטיגן ותגובות חיסוניות4, מיחזור קולטנים, חיסול מטבוליט5 ותקשורת סלולרית6. ויסות תהליכים אלה עשוי להתרחש על ידי קשירה ישירה בין חלבונים המועשרים בקרום תא EV לבין מטרות בתאים המקבלים, ו/או באמצעות הפנמה ושחרור המטען שלהם בציטופלזמהשל התא המקבל. בעוד שרכבים חשמליים מבצעים פונקציות תאיות חיוניות, הם זכו לעניין גובר מנקודת מבט פתולוגית בתחומי הסרטן והנוירולוגיה. ואכן, מספר מחקרים הראו ש-EVs יכולים לעזור לקדם נדידת תאי גידול 8,9 או אגרגטים של חלבונים רעילים זרעים במחלות ניווניות, כגון מחלת אלצהיימר10,11.

ניתן לבחור ולהעשיר EVs מנוזלים ביולוגיים על סמך סמני פני התא הקשורים לתא המוצא שלהם, ובכך לשקף את הסביבה של רקמה ספציפית במטען שלהם 12,13,14,15,16,17,18,19,20. בנוסף, בהתחשב בנוכחותם בדם, נוזל מוחי (CSF), רוק, שתן וחלב אם, EVs מייצגים כלי מצוין ולא פולשני לאבחון, ויכולים להיחשב כביופסיה נוזלית לגילוי סמנים ביולוגיים. זה מעניין במיוחד בנוירולוגיה, בהתחשב בקשיים בחקר אנליטים של המוח בנוזלים נגישים שאינם CSF.

אסטרוציטים זכו לעניין גובר, מכיוון שהם נמצאים בצומת של תקשורת נוירו-וסקולרית21. בתנאים פיזיולוגיים, הם אחראים על שימור מחסום הדם-מוח, מיחזור נוירוטרנסמיטורים, אספקת חומרים מזינים וגורמי גדילה לנוירונים ותאי גליה אחרים 22,23,24 כמו גם הגנה נוירו-אימונית, בהתחשב בפלסטיות המטבולית שלהם ממצבים פרו-דלקתיים למצבים אנטי דלקתיים ולהיפך 25,26,27 . מנגנון חשוב שבאמצעותו אסטרוציטים מבצעים את תפקידי הוויסות שלהם הוא על ידי תקשורת באמצעות EVs28,29. אסטרוציטוזיס תגובתית היא סימן היכר מרכזי של מספר מחלות נוירודגנרטיביות, כגון מחלת אלצהיימר,30 ניוון רב מערכתי (MSA), שיתוק על-גרעיני מתקדם (PSP)31 וטרשת אמיוטרופית צידית (ALS)32. תגובתיות אסטרוציטים עלולה להוביל לשינוי במטען EV, שחרור מתווכים דלקתיים ותקשורת סלולרית חריגה, ובכך להקל על התפשטות הפתולוגיה ולהוביל לניוון עצבי10,11. לכן, חקר EVs שמקורם באסטרוציטים (ADEVs) ושינויים במטען שלהם הוא משאב אטרקטיבי לבחינת תהליכים ניווניים באופן לא פולשני.

נכון לעכשיו, קיימות מספר מתודולוגיות לבידוד רכבים חשמליים, כל אחת עם היתרונות והחסרונות המתאימים לה33. חיוני לשקול איזו שיטה מתאימה יותר לשימוש ספציפי, בהתאם ליישום הסופי של העניין. בתחום הנוירולוגיה, וליתר דיוק, במחקרי אסטרוציטים, משקעים מבוססי פולימרים ואחריהם לכידה חיסונית הייתה השיטה הנפוצה ביותר 12,18,19,20,34. עם זאת, גם כאשר מיישמים את אותה גישה, נותרה הטרוגניות בין המחקרים בשלבים השונים המיושמים לבידוד EV. לכן, יש צורך במתודולוגיה סטנדרטית ברורה, צעד אחר צעד, כדי להקל על מחקרי EV אסטרוציטים ושחזור מחקר. משקעים מבוססי פולימרים מקלים על סינון סמנים ביולוגיים בהתחשב בכך שמדובר בהליך מהיר ופשוט שאינו דורש ציוד מורכב, מה שמוביל לתפוקה גבוהה של EVs מבלי להשפיע על פעילותם הביולוגית35.

הפרוטוקול הנוכחי מתאר שיטה מפורטת, פשוטה ודו-שלבית להעשרת ADEVs מפלזמה אנושית. הוא מבוסס על משקעים מבוססי פולימר של חלק ה-EV הכולל, ואחריו לכידה חיסונית של EVs אסטרוציטים. בהתחשב בתפקודים החשובים של אסטרוציטים, ניתוח ADEVs עשוי לשפוך אור על גילוי סמנים ביולוגיים ומסלולי דלקת במוח שניתן לחקור בצורה לא פולשנית.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

המחקר המתואר בפרוטוקול זה נערך עם דגימות פלזמה אנושיות מתורמים בוגרים בריאים משני המינים (טווח גילאים 65.9-81.3 שנים, 45.5% נשים), מקבוצת יוזמת סנט פאו לניוון עצבי (SPIN), ברצלונה, ספרד36. המשתתפים נתנו הסכמה מדעת. המחקר נערך בהתאם להנחיות האתיות הבינלאומיות למחקר רפואי הכלולות בהצהרת הלסינקי ובחוק הספרדי. ועדת האתיקה של המחקר של סנט פאו (CEIC) בחנה ואישרה את הפרוטוקול לאיסוף ואחסון דגימות פלזמה אנושיות מקבוצת SPIN (#16/2013).

1. העשרת EVs אסטרוציטים מפלזמה אנושית

הערה: פרוטוקול זה כולל שימוש בדגימות פלזמה אנושיות. כל הפרטים על ריאגנטים וחומרי מעבדה המשמשים בפרוטוקול זה כלולים בטבלת החומרים. אין צורך בציוד מיוחד להליך זה, עם זאת, אנא עיין בשיקולי הבטיחות של כל מגיב, כפי שצוין בנפרד על ידי כל יצרן.

  1. איסוף ואחסון דגימות
    1. אסוף דם בשפופרות ואקוטיין לבנדר EDTA, בהתאם לפרוטוקולים סטנדרטיים לאיסוף פלזמה36,37. צנטריפוגה ב-2000 x גרם למשך 10 דקות ב-4 מעלות צלזיוס תוך 30-120 דקות לאחר האיסוף להפרדת פלזמה. הפרד את הפלזמה, שהיא הנוזל הצלול העליון שמופיע כסופרנטנט, ב -500 מיקרוליטר אליקוטים.
    2. כדי להסיר פסולת תאים, צנטריפוגה את המינונים ב-3000 x גרם למשך 15 דקות בטמפרטורת החדר. להחזיר את הסופרנטנט. אחסן את הפלזמה בטמפרטורה של -80 מעלות צלזיוס עד לניתוח. כמקובל לאנליזות נוזלים ביולוגיים, יש לצטט את הדגימות לפני האחסון ולהימנע מיותר משלושה מחזורי הקפאה-הפשרה.
  2. העשרה כוללת לרכב חשמלי
    הערה: יש לסנן את כל הריאגנטים המשמשים דרך מסנן של 0.22 מיקרומטר.
    1. להפשיר 500 מיקרוליטר של דגימות פלזמה. הוסף טרומבין ביחס של 1:100 כדי להסיר גורמי קרישה. מערבבים בהיפוך שלוש פעמים ונותנים לו לשבת 5 דקות בטמפרטורת החדר.
    2. השלם את הנפח כדי להגיע ל-1 מ"ל עם תמיסת המלח המבודדת פוספט (DPBS) של Dulbecco: קוקטייל מעכב פרוטאז מרוכז DPBS + 3x (מדולל ממלאי קוקטייל מעכב פרוטאז פי 10). מיקס על ידי היפוך.
    3. צנטריפוגה את הדגימות ב-6000 x גרם למשך 20 דקות ב-4 מעלות צלזיוס. להחזיר את הסופרנטנט. השלם את עוצמת הקול עם פתרון עבודה DBPS כדי להגיע ל -1 מ"ל.
    4. הוסף 252 מיקרוליטר מתמיסת המשקעים EV וערבב בהיפוך שלוש פעמים. דגירה בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס למשך 60 דקות.
    5. צנטריפוגה את הדגימות ב-1500 x g למשך 20 דקות ב-4 מעלות צלזיוס כדי לזרז את שבר ה-EV הכולל (גלולה). אוספים 1 מ"ל של הסופרנטנט. סמן את השבר כפלסמה מדולדלת EV לשימוש כבקרה שלילית של סמני העשרת EV (ללא EVs) ואחסן ב-80 מעלות צלזיוס.
    6. צנטריפוגה את הגלולה הנותרת ב-1500 x גרם למשך 5 דקות ב-4 מעלות צלזיוס. השליכו את הסופרנטנט שנותר. השעו מחדש את הגלולה ב-500 מיקרוליטר של מים טהורים במיוחד המכילים מעכבי פרוטאז ופוספטאז מרוכזים (ריכוז סופי פי 3, מדולל ממלאי של פי 100, ראה טבלת חומרים).
    7. פיפטה למעלה ולמטה במרץ כדי לשחרר את הכדור, הימנעות מקצף; מערבולת ומערבבים על שייקר צינור מסתובב למשך 30 דקות בטמפרטורת החדר עד להשעיה מלאה. הקפידו על השעיית גלולה מלאה, מכיוון שזהו שלב קריטי לשלב הלכידה החיסונית הבא.
  3. לכידה חיסונית של ADEVs
    הערה: ADEVs נושאים סמני אסטרוציטים. הסמן שנבחר להעשרת ADEV באמצעות לכידה חיסונית הוא GLAST. GLAST, ראשי תיבות של טרנספורטר גלוטמט-אספרטט (UniProtKB-P43003), הוא טרנספורטר הגלוטמט הנפוץ ביותר המתבטא בעיקר על ידי אסטרוציטים במוח הקטן ובניאו-קורטקס המוחי38. הנוגדן נגד GLAST (ACSA-1, antigen-1 על פני תא אסטרוציטים) הוא ספציפי לאפיטופ חוץ-תאי של GLAST ופותח לזיהוי אסטרוציטים. זהו היעד הנפוץ ביותר ללכידה חיסונית של ADEVs מפלזמה אנושית 12,20,34.
    1. הוסף 10 מיקרוליטר של נוגדן ביוטיניל אנטי-GLAST (ACSA-1) לכל דגימה המכילה את תכשיר ה-EV הכולל. מערבבים היטב ובעדינות. דגירה למשך שעה בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס על שייקר צינור מסתובב.
    2. הוסף 10 מיקרוליטר של מיקרו-חרוזים מגנטיים מצומדים לנוגדנים אנטי-ביוטין חד-שבטיים (IgG1 של עכבר). מערבבים היטב ובעדינות. דגירה למשך שעה בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס על שייקר צינור מסתובב.
    3. הנח עמודת מיקרו בשדה המגנטי של מפריד MACS. הכן את העמודה על ידי שטיפתה עם 500 מיקרוליטר של אלבומין סרום בקר PBS-0.5% (BSA). השליכו את הזרימה.
    4. טען את מתלה ה-EV/ACSA-1/מיקרו-חרוזים על העמוד. אל תדחף עם הבוכנה בשלב זה. אסוף את הזרימה. תייגו את זה כרכבים חשמליים לא אסטרוציטיים (ללא ADEVs) ושמרו כבקרה במידת הצורך.
    5. שטפו את העמוד פעמיים עם 500 מיקרוליטר PBS-0.5% BSA. השליכו את הזרימה.
    6. הסר את העמוד מהמפריד המגנטי והנח אותו בצינור איסוף בעל הידבקות נמוכה של 1.5 מ"ל. פיפטה 500 מיקרוליטר של PBS-0.5% BSA על העמודה. דחף בחוזקה עם בוכנה לתוך העמוד ואסוף את הנוזל.
    7. תווית כ-ACSA-1+ EVs (ADEVs). אחסן רכבים חשמליים ללא ליז ב-20 מעלות צלזיוס לתקופות קצרות או ב-80 מעלות צלזיוס לתקופות ארוכות יותר (>6 חודשים).
      הערה: נוגדנים נגד ACSA-1 ייקשרו לאפיטופ GLAST-1/EAAT-1. מיקרו-חרוזים מגנטיים ייקשרו בזיקה לקומפלקס האנטי-ACSA-1-EV. עמודות מיקרו MACS מכילות מטריצה אופטימלית ליצירת שדה מגנטי חזק כאשר היא מונחת במגנט, הנדרש כדי לשמור על ה-ADEVs המסומנים בתווית.
      לייצוג סכמטי של הליך ההעשרה של ADEV, ראה איור 1.
  4. ליזה של רכבים חשמליים
    הערה: רכבים חשמליים חייבים להיות ליזים לחלוטין לזיהוי סמנים תוך-שלפוחיתיים. מומלץ להשתמש בשתי שיטות עוקבות, כגון כימית ואחריה ליזה מכנית.
    1. בצע ליזה כימית של EVs על ידי הוספת מגיב מיצוי חלבון (ראה טבלת חומרים) בפרופורציה של דגימה של 100 מיקרוליטר לכל מגיב מיצוי של 150 מיקרוליטר. הוסף פי 100 מעכבי פרוטאז ופוספטאז כדי להגיע לריכוז סופי פי 1. מערבולת נמרצת ומניחים לשבת בטמפרטורת החדר למשך 15 דקות.
    2. בצע ליזה מכנית בהליך דו-שלבי: העבירו את תמיסת ה-EV הליזה הכימית דרך מזרק פעמיים (מחט G29). לאחר מכן, סוניקציה של הדגימות למשך 45 שניות באמבט מים קרים קולי. הקפיאו את הרכבים החשמליים הליזיים בטמפרטורה של -80 מעלות צלזיוס.
    3. מפשירים את הדגימות ב-37 מעלות צלזיוס למשך 5 דקות. הקפיאו שוב בטמפרטורה של -80 מעלות צלזיוס לאחסון רכבים חשמליים שעברו ליזה. יש להפשיר שוב למשך 5 דקות בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס לפני הניתוח.

figure-protocol-1
איור 1: ייצוג סכמטי של ההליך הדו-שלבי להעשרת EVs שמקורם באסטרוציטים. בשלב הראשון, EVs מועשרים מפלזמה אנושית דפיברינה על ידי משקעים מבוססי פולימרים ושלבי צנטריפוגה. לאחר השעיית EV מלאה, EVs אסטרוציטים נבחרים על ידי לכידה חיסונית עם נוגדנים אנטי-GLAST ביוטיניליים (ACSA-1) ומיקרו-חרוזים מגנטיים אנטי-ביוטין. קיצורים: ACSA-1 = אנטיגן 1 על פני תא אסטרוציטים; ADEVs = שלפוחיות חוץ-תאיות שמקורן באסטרוציטים; DPBS = מי מלח חוצץ פוספט של Dulbecco; EVs = שלפוחיות חוץ-תאיות; GLAST = טרנספורטר גלוטמט-אספרטט; ללא ADEVs = שלפוחיות חוץ-תאיות לא אסטרוציטיות; ללא EVs = ללא שלפוחיות חוץ-תאיות (פלזמה מדולדלת EV); PIC = קוקטייל מעכב פרוטאז; RT = טמפרטורת החדר. הדמות נוצרה באמצעות BioRender. אנא לחץ כאן לצפייה בגרסה גדולה יותר של איור זה.

2. אימות פרוטוקול

  1. אפיון מקטע EV הכולל לפני לכידה חיסונית
    1. השתמש ב-EVs כוללים ליזים (גלולה מושעה לאחר משקעים פולימריים) ודגימות פלזמה מדוללות לניתוח כתמים מערביים. השלימו את הדגימות עם מאגר דגימה 4x Laemmli (5 מיקרוליטר עבור 15 מיקרוליטר דגימה), הרתיחו במשך 10 דקות ב-90 מעלות צלזיוס והעמיסו על ג'ל אקרילאמיד 10% ללא כתמים.
    2. בצע אלקטרופורזה של ג'ל SDS-polyacrylamide (SDS-PAGE) במאגר Tris/Glycine/SDS ב-80 וולט למשך 30 דקות, ואחריו 200 וולט למשך 40 דקות. לאחר ה-SDS-PAGE, הסר את הג'ל מלוחות הזכוכית ודמיין את תכולת החלבון הכוללת לאחר עירור UV של דקה אחת.
    3. העבירו את החלבונים מהג'ל לקרום PVDF 0.2 מיקרומטר המופעל על ידי מתנול דרך מערכת חצי יבשה ב-25 וולט, 2.5 A למשך 10 דקות (ראה טבלת חומרים לפרטים על ציוד). לאחר ההעברה, יש לחסום את הממברנה במאגר חוסם למשך 5 דקות בטמפרטורת החדר ולאחר מכן לדגור למשך הלילה ב-4 מעלות צלזיוס עם הנוגדנים העיקריים לאליקס (1:1000), CD9 (1:1000) או קלנקסין (1:1000); ראה טבלת חומרים לפרטים.
    4. שטפו את הממברנה במי מלח עם 0.1% Tween 20 (TBST) שלוש פעמים למשך 10 דקות ודגרו למשך שעה בטמפרטורת החדר עם נוגדן משני HRP נגד ארנב מדולל ב-1:7500 במאגר חוסם. שוטפים את הממברנה ב- TBST ארבע פעמים למשך 10 דקות. בצע את כל שלבי הכביסה והדגירה עם תסיסה עדינה של הממברנה על נדנדת ספסל.
    5. מערבבים ביחס של 1:1 את התמיסה הכימילומינסנט עם מאגר החמצן ודוגרים על הממברנות למשך 5 דקות בטמפרטורת החדר. חשוף ורכוש רצועות באמצעות מערכת הדמיה כימילומינסנציה (ראה טבלת חומרים לפרטים).
  2. אימות ההעשרה של סמנים ספציפיים לאסטרוציטים בשבר ADEV
    הערה: חלבון חומצי סיבי גליה (GFAP) הוא חלבון חוט הביניים העיקרי בתאים אסטרוציטים ומרכיב חיוני בשלד הציטו שלהם במהלך ההתפתחות. ניתן לזהות GFAP ברקמת המוח ובנוזלים ביולוגיים בהיותו סמן אסטרוציטים ידוע39. לכן, סמן זה כומת באמצעות טכנולוגיה מסחרית לזיהוי סמנים ביולוגיים כדי להדגים את ההעשרה של סמנים שמקורם באסטרוציטים במקטע ADEV. טכנולוגיית סמנים ביולוגיים זו היא טכניקה רגישה במיוחד המאפשרת מדידה של מולקולות חלבון בודדות ברגישות של עד פי 1,000 מבדיקות אימונולוגיות קונבנציונליות. טכניקה זו מבוססת על שימוש במיקרו-חלקיקים פרמגנטיים יחד עם נוגדנים שנועדו להיקשר למטרות ספציפיות40,41 (ראה טבלת חומרים).
    1. השתמש בדגימות EV ליז לניתוח סמנים ביולוגיים. כדי לבדוק את ההעשרה של סמני אסטרוציטים, השווה את רמות ה-GFAP ב-eluate (ADEVs) לעומת הזרימה (ללא ADEVs) באמצעות בדיקה חיסונית מסחרית אולטרה-רגישה.
    2. לדלל את הדגימות ביחס של 1:4 (25 מיקרוליטר של EVs + 75 מיקרוליטר של מאגר בדיקה), להכין את הכיולים ולבצע את הבדיקה בציוד זיהוי הסמנים הביולוגיים, כמפורט בהוראות היצרן (ראה טבלת חומרים). ניתן לדלל את הדגימות ישירות על הצלחת.
    3. בדוק את הדגימות והכיולים בשכפול. טווח הכימות של בדיקת GFAP היה 1.37-1000 pg/mL. השתמש בפלטפורמת ניתוח התוכנה של היצרן כדי לחשב את ריכוזי ה-GFAP מעקומת הכיול.
    4. כדי להעריך את מקדם השונות (CV) של הפרוטוקול להעשרת סמני אסטרוציטים, יש למדוד את רמות ה-GFAP בתכשירי ADEV המתקבלים משכפולים זהים של דגימות פלזמה אנושיות מאוגדות ולחשב את ה-CV כסטיית תקן/ממוצע x 100. בפרוטוקול זה, ה-CV חושב באמצעות N = 10 דגימות פלזמה זהות.
  3. אימות העשרת סמני EV בשבר ADEV
    1. כדי לאמת את ההעשרה של סמני EV, מדוד את רמות Alix ו-CD81 על ידי ELISA (ראה טבלת חומרים) בדגימות EV לא מדוללות, בהתאם להמלצות היצרן. בדוק דגימות וכיולים בשכפול.
    2. קרא את הלוחות ב-450 ננומטר ו-570 ננומטר באמצעות קורא מיקרו-פלטות. השתמש בעקומת כיול ליניארית כדי לחשב את ריכוזי Alix ו-CD81. טווח הכימות עבור בדיקת Alix היה 47-3000 pg/mL ועבור CD81 הוא היה 0.156-10 ננוגרם/מ"ל.
  4. אפיון הגודל והמורפולוגיה של ADEVs
    1. ניתוח מעקב אחר ננו-חלקיקים
      1. השתמש בניתוח מעקב אחר ננו-חלקיקים (NTA) כדי למדוד את ריכוז החלקיקים והתפלגות הגודל של תכשירי EV טריים שאינם ליזים.
      2. לדלל מתלי ADEV טריים ולא ליזים (10 מיקרוליטר) עם PBS מסונן בהתאם לטווח הזיהוי של המכשיר (20-100 חלקיקים/מסגרת), באמצעות התוכנה המצורפת, הקלט שלושה סרטוני 60 שניות עם הגדרות כדלקמן: קצב זרימת מזרק ב-30 a.u., רמת מצלמה ב-13 וסף הזיהוי ב-5. תקן את ריכוזי החלקיקים עבור נפח דגימת הקלט, נפח השעיית EV והדילול הדרושים לקריאת NTA.
        הערה: מומלץ לדמיין מראש דגימה המכילה את פתרון הרכב החשמלי כדי לאמת את אפקט המטריצה ואת טוהר המדיום שבו מושעים רכבים חשמליים.
    2. מיקרוסקופ אלקטרונים קריו
      1. השתמש במיקרוסקופ אלקטרונים קריו (Cryo-EM) כדי לאשר את הנוכחות והמורפולוגיה של Evs בתרחיפים טריים של ADEV (4 מיקרוליטר). זגוגי את הדגימות באמצעות מקפיא צלילה מסחרי על רשתות פחמן Holey עם ההגדרות הבאות: 3.9 מיקרוליטר של דגימה, זמן המתנה 10 שניות, זמן כתמים 2 שניות.
      2. צללו לתוך אתאן-חנקן נוזלי בתחנת עבודה קריו. העבר את הרשתות למחזיק קריו הנשמר בטמפרטורה של -179 מעלות צלזיוס לניתוח מיקרוסקופ אלקטרונים שידור. בדוק את הרכבים החשמליים עם מיקרוסקופ אלקטרונים שידור הפועל במתח מאיץ של 200 קילו וולט ומצויד במצלמת CCD. רכוש מיקרוגרפים באמצעות תוכנה.
  5. ניתוח משקעים משותפים של ליפופרוטאין
    1. קבע רמות ApoB אנושיות בפלזמה לא מדוללת, דגימות EV כוללות ודגימות ADEV ליז עם בדיקה אימונוטורבידימטרית באמצעות ערכה מסחרית המותאמת לאוטו-אנלייזר מסחרי (ראה טבלת חומרים לפרטים נוספים).
  6. ניתוח סמנים דלקתיים ב-ADEVs
    1. השתמש בבדיקה מבוססת חרוזים (ראה טבלת חומרים) כדי לכמת את הריכוז של 25 סמנים דלקתיים: אאוטקסין, IFN Alpha2, IFN Gamma, IL-1 Alpha, IL-1 Beta, IL-3, IL-6, IL-8, IL-10, IL-12 (p40), IL-12 (p70), IL-15, IL-17A, IL-17E/IL-25, IL-17F, IL-18, IP-10, MCP-1, MCP-3, MDC, MIP-1 Alpha, MIP-1 Beta, TGF Alpha, TNF Alpha, TNF Beta.
    2. השתמש בתכשירי EV לא מדוללים (25 מיקרוליטר) ודגר את הדגימות עם החרוזים למשך הלילה בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס, בהתאם להוראות היצרן. שוטפים את הצלחת, דוגרים עם 25 מיקרוליטר של נוגדנים לזיהוי, ודוגרים למשך שעה עם תסיסה בטמפרטורת החדר.
    3. מוסיפים 25 מיקרוליטר של Streptavidin-PE לכל באר ודוגרים למשך 30 דקות בטמפרטורת החדר. מוסיפים 150 מיקרוליטר נוזל נדן ודוגרים למשך 5 דקות תחת תסיסה. קרא את הלוחית על קורא הלוחות המחובר למערכת.
      הערה: טכניקה זו מבוססת על בדיקות אימונולוגיות באמצעות נוגדנים הנקשרים לפני השטח של מיקרו-חרוזים מגנטיים מצופים פלואורסצנט. טכנולוגיה זו מקודדת באופן פנימי מיקרוספירות לפי צבען בצבעים שונים. כל סוג של מיקרוספירה מצופה בנוגדני לכידה ספציפיים, כך שחרוזים מצומדים מרובים לוכדים את האנליטים המוטמעים בדגימות, ומאפשרים זיהוי כמותי של עשרות אנליטים בו זמנית. המערכת משתמשת בפלטפורמת הבדיקה החיסונית המרובה מבוססת החרוזים לזיהוי אותות43.

3. ניתוח נתונים

  1. ביצוע ניתוחים סטטיסטיים באמצעות תוכנה מסחרית. העריכו את נורמליות הנתונים באמצעות מבחן שפירו-וילק. בדוק השוואות של שתי קבוצות עם מבחן Mann-Whitney U והשוואות של שלוש קבוצות עם מבחן Kruskal-Wallis ותיקון פוסט-הוק של דאן. הגדר את המשמעות ב- p < 0.05.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

הבידוד של ADEVs מפלזמה שנאספה מתורמים בריאים הושג בהצלחה. נעשה שימוש בשיטת משקעים מבוססת פולימרים כדי להשיג את חלק ה-EV הכולל, ואחריו לכידה חיסונית עם מיקרו-חרוזים מגנטיים להשגת ADEVs.

ניתוח הכתם המערבי של מקטע ה-EV הכולל לפני שלב הלכידה החיסונית הצביע על היעדר קלנקסין (סמן זיהום תאי) ונוכחות של אליקס והחלבון הטרנסממברני CD9 בתכשירי EV (איור 2A).

לאחר לכידה חיסונית, הנוכחות וההעשרה של סמנים שלפוחיתיים ואסטרוציטים אומתו במקטע ADEV. ריכוז...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

רכבים חשמליים זכו לעניין רב במחקר ביו-רפואי בשל הפוטנציאל האבחוני והטיפולי שלהם. נכון לעכשיו, אחת המגבלות העיקריות הקשורות לשיטות בידוד EV היא היעדר קונצנזוס מתודולוגי ופרוטוקולים סטנדרטיים. מחקר זה מספק פרוטוקול מפורט להעשרת EVs אסטרוציטים מפלזמה אנושית באמצעות משקעים מבוססי פולימרים ולכידת חיסון GLAST.

קיימות מתודולוגיות שונות לבידוד רכבים חשמליים מנוזלי גוף, לכל אחת יתרונות ומגבלות משלה. גישה מבוססת פולימרים נבחרה בגלל פשטותה, קלות השימוש, אי זמן ר...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

ד"ר בלבין דיווח על קבלת עמלות אישיות מ-ADx NeuroSciences מחוץ לעבודה שהוגשה. ד"ר אלקולאה דיווח על קבלת עמלות אישיות עבור שירותי הוועדה המייעצת ו/או כבוד של דוברים מ-Fujirebio-Europe, Roche, Nurtricia, Krka Farmacéutica, Zambon S.A.U. ו-Esteve מחוץ לעבודה שהוגשה. ד"ר לאו שימש כיועץ או בוועדות מייעצות עבור Fujirebio-Europe, Roche, Biogen, Grifols ו-Nutricia מחוץ לעבודה שהוגשה. ד"ר פורטיאה דיווח על קבלת שכר אישי עבור שירות בוועדות המייעצות, ועדות השיפוט או כבוד של דוברים מ-AC Immune, Novartis, Lundbeck, Roche, Fujirebio ו-Biogen מחוץ לעבודה שהוגשה. ד"ר אלקולאה, בלבין, לאו ופורטיאה מדווחים על פטנט על סמנים של סינפטופתיה במחלות ניווניות (ברישיון ADx, EPI8382175.0). לא דווח על גילויים נוספים. לכל הסופרים האחרים אין שום דבר אחר לחשוף.

תודות

המחברים מבקשים להודות לעזרתם של סוראיה טורס, שיימה אל בונאסרי אל בנאדי ואוריול סאנצ'ז לופז לטיפול והכנת דגימות. ברצוננו גם להודות לשיתוף הפעולה של חוסה אמבל ברנבה, מ-ICTS "NANBIOSIS", יחידה 6 (היחידה של CIBER בביו-אינינגיינרינג, ביו-חומרים וננו-רפואה) של המכון למדעי החומרים בברצלונה, מרטי דה קאבו ג'אומה מהיחידה למיקרוסקופיה אלקטרונית באוניברסיטה האוטונומית של ברצלונה, ד"ר מרתה סולר קסטני וליה רוס בלנקו מפלטפורמת ציטומטריית הזרימה במכון המחקר הביו-רפואי סנט פאו (IIB-Sant Pau), כמו גם ד"ר ג'ואן קרלס אסקולה-גיל מקבוצת הפתופיזיולוגיה של מחלות הקשורות לליפידים ב-IIB-Sant Pau לעזרה בקביעות NTA, cryo-EM, Luminex ו-ApoB, בהתאמה.

המחברים מודים לתמיכה כספית מקרן Jérôme Lejeune (פרויקט #1941 ו-#1913 ל-MFI ו-MCI), Instituto de Salud Carlos III (PI20/01473 ל-JF, PI20/01330 ל-AL, PI18/00435 ל-DA, ו-INT19/00016 ל-DA), המכון הלאומי לבריאות (1R01AG056850-01A1, R21AG056974 ו-R01AG061566 ל-JF), איגוד האלצהיימר והמכון העולמי לבריאות המוח (GBHI_ALZ-18-543740 ל-MCI), האגודה לניוון פרונטו-טמפורלי (מלגת פוסט-דוקטורט למחקר קליני, AFTD 2019–2021) ל-ODI, ו-Societat Catalana de Neurologia (Premi Beca Fundació SCN 2020 ל-MCI). עבודה זו נתמכה גם על ידי תוכנית CIBERNED (תוכנית 1, מחלת אלצהיימר ל-AL ומחקר SIGNAL. SS הוא זוכה במענק פוסט-דוקטורט "Juan de la Cierva-Incorporación" (IJC2019-038962-I) על ידי Agencia Estatal de Investigación, Ministerio de Ciencia e Innovación (Gobierno de España).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
נוגדן ראשוני אנטי-אליקס לכתמים מערבייםEMD MilliporeABC40
ומיקרו; מפריד MACSMiltenyi Biotec130-042-602המיקרו; מפריד MACS משמש בשילוב עם µ עמודות ומיקרו-חרוזי MACS.
נוגדן ראשוני נגד קלנקסין לכתמים מערבייםGenetexGTX109669
נוגדן ראשוני Anti-CD9 לאיתותתאים13174
חוסם BSA (10%) 200 מ"לThermo Fisher37525
Bransonic 1510E-MT אמבט אולטרסאונדברנסון
COBAS 6000 autoanalyzerRoche Diagnosticsמנתח לקביעה אימונוטורבידימטרית של ApoB; אוטואנלייזר מסחרי
cOmplete קוקטייל מעכב פרוטאז (ללא EDTA)Roche11873580001
מיקרוגרף דיגיטלי 1.8 תוכנת מיקרוגרף
PBS Mg++, Ca++ free 500 mLThermo Fisher14190144
EveryBlot Blocking BufferBioRad12010020
Exoquick (תמיסת משקעים אקסוזומית 5 מ"ל) + תרומבין את System BioscienceEXOQ5TM-1ExoQuick 20 מ"ל (EXOQ20A-1)
Gatan 895 USC 4000 מצלמה
GeneGnome XRQ מערכת הדמיה כימית Syngene
אנטיגן CD81 אנושי (CD81) ערכת ELISACusabioCSB-EL004960HU
מוות תאי מתוכנת אנושי 6 חלבון אינטראקציה (PDCD6IP) ערכת ELISACusabioCSB-EL017673HU
Immun-Blot PVDF ממברנהBioRad1620177
מיקרוסקופ אלקטרונים שידור JEOL 2011 JEOL בע"ממצויד ב  מצלמת CCD Gatan 895 USC 4000  (גתן 626, גטן, פלזנטון, ארה"ב)
לבנדר EDTA BD Vacutainer K2E צינורותBecton dickinson367525
Leica EM GP מקפיא צלילה מסחרישל Leica Microsystem
מיקרו-צינורות מחייבים נמוכים 1,5 מ"לDeltalab4092.3NS
MACS ומיקרו; עמודים עם בוכנות Miltenyi Biotec130-110-905& עמודות עם בוכנות תוכננו במיוחד לבידוד אקסוזומים מנוזלי גוף
MACS MultistandMiltenyi Biotec130-042-303
קורא צלחות MAGPIXLuminex Corporation80-073יחידת ריבוב xMAP של Luminex (תוכנת Luminex xPonent v 4.3)
MicroBead Kit100 μ L אנטי-גלסט (ACSA-1)-ביוטין, אדם, עכבר, חולדה וכו'; מידה קטנה; 100 μ L אנטי-ביוטין מיקרו-חרוזיםMiltenyi Biotec130-095- 825
MILLIPLEX MAP ערכת ציטוקין אנושי/כימוקין/גורם גדילה פאנל חרוזים מגנטיEMD MilliporeHCYTA-60K-25
M-PER מגיב מיצוי חלבון יונקים 25 מ"לThermo Fisher78503עבור יישומים מסוימים כמו כתם מערבי, ניתן להשתמש במאגרי ליזה אגרסיביים יותר (למשל RIPA)
MultiSkan SkyHigh Microplate ספקטרופוטומטרתרמופישרA51119500C
NanoSight NS300Malvern PanalyticalNTA; גרסת 3.4
פירס האלט מעכב פרוטאז ופוספטאז קוקטיילתרמו פישר78441
מזרק פוליפרופילן (G29)PeroxFarma1 מ"ל; 0.33x12 מ"מ-G29x1/2 אינץ'
אנטי ארנב משני נוגדןThermo Fisher10794347
Simoa GFAP Discovery KitQuanterix102336
Simoa, מכשיר SR-XQuanterixSR-X מערכת זיהוי סמנים ביולוגיים רגישים במיוחד; טכנולוגיית זיהוי סמנים ביולוגיים מסחרית
בדיקת חלבון ספציפי אפוליפופרוטאין B - APOB (100 det) COBAS C/CIRoche Diagnostics3032574122
SuperSignal West FemtoThermo Fisher34095מצע HRP משופר (ECL) רגיש במיוחד 
מערכת העברת טורבו טרנס-בלוטBioRad1704150
מערביים ניתן לרכוש גם מזרק

מקורות

  1. Pathan, M., et al. Vesiclepedia 2019: a compendium of RNA, proteins, lipids and metabolites in extracellular vesicles. Nucleic Acids Research. 47, 516-519 (2019).
  2. Raposo, G., Stoorvogel, W. Extracellular vesicles: Exosomes, microvesicles, and friends. Journal of Cell Biology. 200 (4), 373-383 (2013).
  3. Gustafson, D., Veitch, S., Fish, J. E. Extracellular vesicles as protagonists of diabetic cardiovascular pathology. Frontiers in Cardiovascular Medicine. 4, 71(2017).
  4. Raposo, G., et al. B lymphocytes secrete antigen-presenting vesicles. The Journal of Experimental Medicine. 183 (3), 1161-1172 (1996).
  5. Harding, C. V., Heuser, J. E., Stahl, P. D. Exosomes: Looking back three decades and into the future. Journal of Cell Biology. 200 (4), 367-371 (2013).
  6. Valadi, H., et al. Exosome-mediated transfer of mRNAs and microRNAs is a novel mechanism of genetic exchange between cells. Nature Cell Biology. 9 (6), 654-659 (2007).
  7. Van Niel, G., D'Angelo, G., Raposo, G. Shedding light on the cell biology of extracellular vesicles. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 19 (4), 213-228 (2018).
  8. Hood, J. L., San Roman, S., Wickline, S. A. Exosomes released by melanoma cells prepare sentinel lymph nodes for tumor metastasis. Cancer Research. 71 (11), 3792-3801 (2011).
  9. Rak, J. Microparticles in cancer. Seminars in Thrombosis and Hemostasis. 36 (8), 888-906 (2010).
  10. Ledreux, A., et al. Small neuron-derived extracellular vesicles from individuals with down syndrome propagate tau pathology in the wildtype mouse brain. Journal of Clinical Medicine. 10 (17), 3931(2021).
  11. Winston, C. N., et al. Prediction of conversion from mild cognitive impairment to dementia with neuronally derived blood exosome protein profile. Alzheimer's and Dementia: Diagnosis, Assessment and Disease Monitoring. 3, 63-72 (2016).
  12. Goetzl, E. J., Schwartz, J. B., Abner, E. L., Jicha, G. A., Kapogiannis, D. High complement levels in astrocyte-derived exosomes of Alzheimer's disease. Annals of Neurology. 83 (3), 544-552 (2018).
  13. Fiandaca, M. S., et al. Identification of preclinical Alzheimer's disease by a profile of pathogenic proteins in neurally derived blood exosomes: A case-control study. Alzheimer's and Dementia. 11 (6), 600-607 (2015).
  14. Mustapic, M., et al. Plasma extracellular vesicles enriched for neuronal origin: A potential window into brain pathologic processes. Frontiers in Neuroscience. 11, 278(2017).
  15. Hamlett, E. D., et al. Neuronal exosomes reveal Alzheimer's disease biomarkers in Down syndrome. Alzheimer's and Dementia. 13 (5), 541-549 (2017).
  16. Goetzl, E. J., et al. Abnormal levels of mitochondrial proteins in plasma neuronal extracellular vesicles in major depressive disorder. Molecular Psychiatry. 26 (12), 7355-7362 (2021).
  17. Goetzl, E. J., et al. Neuron-derived exosome proteins may contribute to progression from repetitive mild traumatic brain injuries to chronic traumatic encephalopathy. Frontiers in Neuroscience. 13, 452(2019).
  18. Goetzl, E. J., et al. Cargo proteins of plasma astrocyte-derived exosomes in Alzheimer's disease. FASEB Journal. 30 (11), 3853-3859 (2016).
  19. Goetzl, E. J., et al. Traumatic brain injury increases plasma astrocyte-derived exosome levels of neurotoxic complement proteins. FASEB Journal. 34 (2), 3359-3366 (2020).
  20. Nogueras-ortiz, C. J., et al. Astrocyte- and neuron-derived extracellular vesicles from Alzheimer's disease patients effect complement-mediated neurotoxicity. Cells. 9 (7), 1618(2020).
  21. Haydon, P. G., Carmignoto, G. Astrocyte control of synaptic transmission and neurovascular coupling. Physiological Reviews. 86 (3), 1009-1031 (2006).
  22. Abbott, N. J., Rönnbäck, L., Hansson, E. Astrocyte-endothelial interactions at the blood-brain barrier. Nature Reviews Neuroscience. 7 (1), 41-53 (2006).
  23. Rothstein, J., et al. Antisense knockout of glutamate transporters reveals a predominant role for astroglial glutamate transport in excitotoxicity and clearance of extracellular glutamate. Neuron. 16 (3), 675-686 (1996).
  24. Vasile, F., Dossi, E., Rouach, N. Human astrocytes: structure and functions in the healthy brain. Brain Structure and Function. 222 (5), 2017-2029 (2017).
  25. Balu, D. T., et al. Neurotoxic astrocytes express the D-serine synthesizing enzyme, serine racemase, in Alzheimer's disease. Neurobiology of Disease. 130, 104511(2019).
  26. Sofroniew, M. V. Astrocyte barriers to neurotoxic inflammation. Nature Reviews Neuroscience. 16 (5), 249-263 (2015).
  27. Yun, S. P., et al. Block of A1 astrocyte conversion by microglia is neuroprotective in models of Parkinson's disease. Nature Medicine. 24 (7), 931-938 (2018).
  28. Bianco, F., et al. Acid sphingomyelinase activity triggers microparticle release from glial cells. EMBO Journal. 28 (8), 1043-1054 (2009).
  29. Datta Chaudhuri, A., et al. Stimulus-dependent modifications in astrocyte-derived extracellular vesicle cargo regulate neuronal excitability. Glia. 68 (1), 128-144 (2020).
  30. Serrano-Pozo, A., Gómez-Isla, T., Growdon, J. H., Frosch, M. P., Hyman, B. T. A phenotypic change but not proliferation underlies glial responses in Alzheimer disease. American Journal of Pathology. 182 (6), 2332-2344 (2013).
  31. Tong, J., et al. Low levels of astroglial markers in Parkinson's Disease: relationship to α-synuclein accumulation. Neurobiology of Disease. 82, 243-253 (2015).
  32. Kamo, H., et al. A distinctive distribution of reactive astroglia in the precentral cortex in amyotrophic lateral sclerosis. Acta Neuropathologica. 74 (1), 33-38 (1987).
  33. Coumans, F. A. W., et al. Methodological guidelines to study extracellular vesicles. Circulation Research. 120 (10), 1632-1648 (2017).
  34. Winston, C. N., Goetzl, E. J., Schwartz, J. B., Elahi, F. M., Rissman, R. A. Complement protein levels in plasma astrocyte-derived exosomes are abnormal in conversion from mild cognitive impairment to Alzheimer's disease dementia. Alzheimer's and Dementia: Diagnosis, Assessment and Disease Monitoring. 11, 61-66 (2019).
  35. Niu, Z., et al. Polymer-based precipitation preserves biological activities of extracellular vesicles from an endometrial cell line. PLoS ONE. 12 (10), 1-21 (2017).
  36. Alcolea, D., et al. The Sant Pau Initiative on Neurodegeneration (SPIN) cohort: A data set for biomarker discovery and validation in neurodegenerative disorders. Alzheimer's and Dementia: Translational Research and Clinical Interventions. 5, 597-609 (2019).
  37. O'Bryant, S. E., et al. Guidelines for the standardization of preanalytic variables for blood-based biomarker studies in Alzheimer's disease research. Alzheimer's and Dementia. 11 (5), 549-560 (2015).
  38. Kim, K., et al. Role of excitatory amino acid transporter-2 (EAAT2) and glutamate in neurodegeneration: Opportunities for developing novel therapeutics. Journal of Cellular Physiology. 226 (10), 2484-2493 (2011).
  39. Middeldorp, J., Hol, E. M. GFAP in health and disease. Progress in Neurobiology. 93 (3), 421-443 (2011).
  40. Mora, J., et al. Next generation ligand binding assays-review of emerging technologies' capabilities to enhance throughput and multiplexing. AAPS Journal. 16 (6), 1175-1184 (2014).
  41. Chunyk, A. G., et al. A multi-site in-depth evaluation of the quanterix simoa from a user's perspective. AAPS Journal. 20 (1), 1-12 (2018).
  42. Lötvall, J., et al. Minimal experimental requirements for definition of extracellular vesicles and their functions: A position statement from the International Society for Extracellular Vesicles. Journal of Extracellular Vesicles. 3 (1), 26913(2014).
  43. Hansen, E. O., et al. Millipore xMap® Luminex (HATMAG-68K): An accurate and cost-effective method for evaluating Alzheimer's biomarkers in cerebrospinal fluid. Frontiers in Psychiatry. 12, 1-9 (2021).
  44. Kowal, J., et al. Proteomic comparison defines novel markers to characterize heterogenous populations of extracellular vesicle subtypes. Proceedings of the National Academy of Sciences. 113 (8), 968-977 (2016).
  45. Gauthier, S. A., et al. Enhanced exosome secretion in Down syndrome brain - a protective mechanism to alleviate neuronal endosomal abnormalities. Acta Neuropathologica Communications. 5 (1), 65(2017).
  46. Cataldo, A. M., et al. Endocytic pathway abnormalities precede amyloid β deposition in sporadic alzheimer's disease and down syndrome: Differential effects of APOE genotype and presenilin mutations. American Journal of Pathology. 157 (1), 277-286 (2000).
  47. Cataldo, A. M., et al. Down syndrome fibroblast model of Alzheimer-related endosome pathology: Accelerated endocytosis promotes late endocytic defects. American Journal of Pathology. 173 (2), 370-384 (2008).
  48. Théry, C., et al. Minimal information for studies of extracellular vesicles 2018 (MISEV2018): a position statement of the International Society for Extracellular Vesicles and update of the MISEV2014 guidelines. Journal of Extracellular Vesicles. 7 (1), 1535750(2018).
  49. Van Deun, J., et al. EV-TRACK: Transparent reporting and centralizing knowledge in extracellular vesicle research. Nature Methods. 14 (3), 228-232 (2017).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

ACSA 1
הסרטון יגיע בקרוב
צור קשר
המלצה לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

2026 © זכויות יוצרים MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.