הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

מודל חזירים רלוונטי קלינית של איסכמיה כרונית של שריר הלב על ידי מיקום מכווץ אמרואיד עם מיפוי זלוף בו זמנית

374 צפיות

DOI:

10.3791/68490

10 באוקטובר 2025

במאמר זה

סיכום

מטרת פרויקט זה היא לפרט פרוטוקול שנבדק ביסודיות של מיקום כירורגי של מכווץ אמרואיד סביב העורק הכלילי השמאלי הפרוקסימלי (LCx), ובכך לגרום למחלת עורקים כליליים כרונית ולמפות במדויק את הטריטוריה האיסכמית באמצעות מיקרוספירות המסומנות באיזוטופים.

תקציר

למרות פריצות דרך בטיפולים רפואיים ופרוצדורליים לטיפול במחלות לב וכלי דם, הצורך במודלים תרגומיים של בעלי חיים גדולים נמשך לחקור כלי אבחון ואסטרטגיות טיפול. חזירים מייצגים מודל מדויק ומתאים ללא דופי למחלות לב וכלי דם בבני אדם, שכן האנטומיה והפיזיולוגיה של הלב שלהם דומות מאוד לאלו של בני אדם, כמו גם הפרופיל המטבולי והפרוטאומי שלהם. השראת איסכמיה כרונית של שריר הלב לאזור בשריר הלב על ידי שימוש בכיווץ אמרואיד מחקה בצורה מדויקת וקלה את התהליך הפתופיזיולוגי הנפוץ של התפתחות טרשת עורקים בבני אדם ותגובת שריר הלב שלאחר מכן. מכווצים אמרואידים נחקרו רבות במהלך 50 השנים האחרונות ומספקים ראיות קפדניות לשימוש בו; כמו כן, יש לנו ניסיון של למעלה משני עשורים בביצוע יעיל ואחיד של הליך זה. שלב חשוב בפרוטוקול זה הוא ביצוע מיפוי זרימת דם כלילית כדי לקבוע את האזור עם האיסכמיה הגדולה ביותר ואזורים ללא איסכמיה על ידי הזרקת מיקרוספירות המסומנות באיזוטופים. היכולת לבצע מיפוי זרימת דם כלילית מונעת שימוש הכרחי ועתיר עבודה בהדמיית MRI לב או PET למחקרי זלוף וקביעת הטריטוריה האיסכמית. מטרת פרסום זה היא לפרט את המיקום הנכון של מכווץ אמרואיד על ה-LCx הפרוקסימלי ומיפוי הזלוף הכלילי שלאחר מכן.

מבוא

ברחבי העולם, מחלת לב איסכמית (IHD) רק גדלה בתמותה ובעומס שלה על החולים ומערכת הבריאות. על פי איגוד הלב האמריקאי, מספר מקרי המוות המיוחסים ל-IHD בין השנים 1990 ל-2021 עלה ב-74% ברחבי העולם1. זה נכון גם בארצות הברית, שם המרכז לבקרת מחלות מציין שאחד מכל עשרים מבוגרים אובחן עם מחלת עורקים כליליים (CAD), וכאחד מכל חמישה מקרי מוות נובע ממחלות לב וכלי דם, המקבילות לאדם שמת ממחלות לב וכלי דם כל 33 שניות2. נטל המחלה הזה מלחיץ את מערכת הבריאות, שבה הוצאו למעלה מ-250 מיליארד דולר על חולים במחלות לב וכלי דם בין השנים 2019 ל-20202. בהתחשב באופי הנפוץ של מחלות לב וכלי דם והעומס החמור הן על המטופל והן על הספק, הכרחי להמשיך לחקור טיפולים חדשניים וחדשניים.

כדי להשיג מטרות כאלה, יש להשתמש במודלים של בעלי חיים רלוונטיים מבחינה קלינית אך לבחון אותם כדי לעמוד בסטנדרטים של מחקר הניתן לשחזור ותרגום. מודלים של בעלי חיים הוטלו בספק מסיבות רבות, כולל מיני בעלי חיים שונים עם פרמקוקינטיקה משתנה, פרוטוקולים שונים להשראת מצב המחלה הרצוי, שינויים במינון התרופות ובלוחות הזמנים, סטנדרטיזציה לקויה של בעלי חיים אקראיים, משך מעקב וסמיות של חוקרים, ולבסוף, קבוצות ניסוי קטנות3. חידדנו ותקננו באופן ניסיוני את הפרוטוקול לא רק של המודל הכללי של בעלי החיים כדי לייצג IHD אלא גם את הפרוטוקול הכירורגי, אקראיות של בעלי חיים, מתן תרופות ומשך הזמן והתוצאות הבאות. בכל הנוגע ל-IHD, חזירים מייצגים מודל אופטימלי של בעלי חיים בשל הדמיון המשמעותי שלהם באנטומיה ובפיזיולוגיה של הלב לבני אדם. חשוב לציין, לחזירים יש התפלגות עורקים כליליים דומה לבני אדם וזרימת דם צדדית מינימלית, מה שהופך את השראת איסכמיה לייצוג אמין של התפתחות טרשת עורקים בבני אדם. בנוסף, לחזירים יש חילוף חומרים, פרופיל פרוטאומי ומערכת חיסון דומים לבני אדם, מה שהופך את ניתוח ההשפעה המולקולרית של טיפולים למשמעותי יותר4. בהתחשב בכך, המודל החייתי המשמש בפרוטוקול זה מתאים ביותר לייצוג חוזר של פתופיזיולוגיה קרדיווסקולרית אנושית.

המעבדה שלנו משתמשת במיקום כירורגי של מכווץ אמרואיד על ה-LCx, המאפשר אינדוקציה כרונית של איסכמיה של שריר הלב. שימוש בטכניקה זו כדי לגרום לאיסכמיה כרונית מניב יתרונות ייחודיים על פני קשירה חריפה. האחת היא הספרות המחקרית הנרחבת ממספר עשורים המשתמשת במכשיר זה5. בנוסף, הוא מאפשר סימולציה קלינית אמינה של היצרות כלילית הדרגתית עקב התפתחות טרשת עורקים בבני אדם, ולבסוף, שיפור בתמותת בעלי חיים על ידי חיסכון בשריר הלב שהיה מביא להפסקה מוחלטת של זרימת הדם6. למכווץ האמרואיד שני חלקים: טבעת חיצונית מטיטניום ושכבת פלסטיק היגרוסקופית פנימית. כאשר היא ממוקמת סביב העורק הכלילי, הטבעת הפנימית תספוג לאחר מכן נוזלי גוף ותתפח פנימה עקב שרוול הפלדה המגביל במשך תקופה של שבועיים עד ארבעה שבועות7. אסטרטגיית המיקום סביב ה-LCx מעניקה יתרונות תמותה מכיוון שזהו הקטן מבין שלושת העורקים הכליליים העיקריים ומשפיע על כ-20% משריר הלב7. כדי לייצר באופן אחיד את האזור האיסכמי, יש למקם את האמרואיד בהמראה LCx לפני הסתעפות העורקים השוליים הקהים.

שיקול נוסף המופעל על ידי פרוטוקול זה הוא מיפוי זרימת הדם הכלילי המאשר לקביעת השראת איסכמיה והשימוש בטריטוריה הנכונה בחקירת ההשפעות של שריר הלב של טיפולים. למטרה זו, אנו משתמשים בהזרקת מיקרוספירה זהב ממעבדת בדיקת ביופיזיקה, בע"מ בזמן מיקום האמרואיד כאשר ה-LCx חסום לחלוטין. הקטע עם הכימות הנמוך ביותר של מיקרוספירות זהב ייצג אז את הטריטוריה האיסכמית ביותר של החדר השמאלי. לא ניתן להפריז בחשיבות המיפוי בעת קביעת השינויים המולקולריים המיוצרים על ידי טיפול ניסיוני. בנוסף, השימוש במיקרוספירות המסומנות באיזוטופים מספק שיטה חסכונית בהשוואה להדמיית התנגדות מגנטית לבבית לקביעת זלוף שריר הלב8.

לבסוף, המודל המתואר כאן לוקח בחשבון את השונות הידועה בין המינים בהתפתחות מחלות לב וכלי דם ובתגובה הטיפולית שלאחר מכן. לעתים קרובות מדי, מודלים פרה-קליניים של בעלי חיים אינם מייצגים נאמנה את ההבדלים באוכלוסייה האנושית; לפיכך, אנו מתאימים את מין החזירים ששימשו בקבוצות הביקורת והניסוי בין נקבות לחזירים זכרים שלמים. השתמשנו בזה בעבר כדי לקבוע תגובות מבוססות מין לטיפולים חדשים9. בנוסף לתרגום של פרוטוקול זה הוא השימוש באקראיות של קבוצות טיפול וסמיות של החוקר המנתח את תפקודי הלב ופרמטרי הזלוף של שריר הלב של כל חזיר.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

ההליך הכירורגי המפורט להלן אושר על ידי הוועדה המוסדית לטיפול ושימוש בבעלי חיים של בית החולים רוד איילנד ואוניברסיטת בראון.

1. מודל בעלי חיים

  1. השתמש גם בנקבות צעירות וגם בחזירי יורקשייר זכרים שלמים, בגיל אידיאלי בסביבות גיל 11 שבועות, ובמשקל בדרך כלל בסביבות 15 ק"ג.

2. הליכים טרום ניתוחיים

  1. ודא שהחזירים מקבלים אספירין יומי לפני ואחרי הניתוח (10 מ"ג/ק"ג) החל מיום אחד לפני הניתוח ועד 5 ימים לאחר הניתוח.
  2. ודא שהחזירים ללא מזון בבוקר הניתוח.
  3. ביום הניתוח, יש לעורר הרדמה באמצעות זריקות תוך שריריות של טלזול (4.4 מ"ג/ק"ג) וקסילזין (2.2 מ"ג/ק"ג).
  4. החדרו את החזירים עם צינור אנדוטרכאלי בגודל מתאים (בדרך כלל 7-0).
  5. במקביל, השיגו משככי כאבים על ידי מתן בופרנורפין במינון של 0.03 מ"ג/ק"ג ומריחת מדבקת פנטניל (4 מיקרוגרם/ק"ג).
  6. הנח קטטר תוך ורידי (IV) של 20-22 גרם בווריד האפרכסת הגדול.
  7. יש להתחיל בעירוי נוזלים (0.9% מי מלח) בקצב של 5 מ"ל/ק"ג/שעה.
  8. יש לתת צפטיופור, שהיא אנטיביוטיקה רחבת טווח של צפלוספורין. זה נעשה בדרך כלל תוך 30 דקות מהחתך כזריקת IM במינון יחיד.
  9. לגלח את החזיר באתר הניתוח (מהכתף השמאלית לטבור) וכן בעמדות עופרת לניטור אלקטרוקרדיוגרמה (ECG).
  10. העבירו את החזיר לחדר הניתוח ושמרו על הרדמה עם 0.75-3.0% איזופלורן.
  11. חבר את החזירים לצג האק"ג והחל רפידות הארקה חשמליות.
  12. מקם נכון את החזירים על שולחן הניתוחים: צד ימין כלפי מטה, הגפה הקדמית השמאלית מושטת וקשורה לשולחן, והצד הימני של השולחן מוטה כלפי מעלה.
  13. הכן את אתר הניתוח עם קרצוף כלורוהקסדין 2%.
  14. עטפו את מקום החתך בארבעה וילונות דביקים קטנים ווילון לפרוטומי אחד גדול.

3. הליך כירורגי

  1. התחל בהזרקת 2% לידוקאין תת עורית באתר החתך הצפוי.
  2. לאחר מכן, השתמש באזמל #10 כדי לבצע חתך של כ-5 ס"מ באלכסון החל מקפל העור בבית השחי והמשך החוצה לרוחב; זה בערך החלל הבין-צלעיהשני עד השלישי.
  3. השתמש באזמל #10 כדי להמשיך את החתך הזה למטה דרך השכבה השרירית עד שמגיעים לשכבה הפשיאלית.
  4. בשלב זה, השתמש בצריבה חשמלית כדי להשיג המוסטזיס של העור והשרירים.
  5. פתח את המקום הפשיאלי בצורה בוטה עד שניתן יהיה למשש את עצם הבריח.
  6. לאחר השגת זה, משש את רווחי הצלעות, וודא שחלל הצלעהשני מזוהה.
    הערה: בדרך כלל, החללהבין-צלעי השני משיג תצוגה מעט מעולה של השדה, ומאפשר מיקום פרוקסימלי קל יותר של המכווץ האמרואידי. לפעמים, בגלל אנטומיה של חזירים, יש להיכנס לחלל הבין-צלעיהשלישי .
  7. קלעו את השריר הבין-צלעי בעזרת צריבה חשמלית והיכנסו לחלל הצדר עם מהדק קלי גדול.
  8. הרחב פתח זה מדיאלית ורוחבית עם צריבה חשמלית תוך הגנה על הריאה וקרום הלב עם מהדק קלי הגדול כהנחיה.
  9. הכניסו מפסק פינוצ'יטו קטן כדי לפזר את הצלעות.
  10. הניחו גזה רטובה כדי לדחוף את הריאה לאחור לחלל הצדר השמאלי. זה מרחיב את הנוף של קרום הלב.
  11. השתמש במלקחיים של Debakey כדי לאהל את קרום הלב ולבצע חתך קטן עם מספריים של מצנבאום. הרחב את זה מדיאלית ורוחבית כדי לחשוף את התוספתן הפרוזדורי השמאלי. כאשר מתרחבים לרוחב לכיוון הריאה, זהה והגן על הריאה ועל העצב הפרני.
  12. הדביקו את קרום הלב לפי הצורך באמצעות תפר משי 3-0.
  13. בעזרת מהדק סטינסקי קטן, אחוז בחלק הדיסטלי של התוספתן הפרוזדורי השמאלי וקשר את החלק הזה באמצעות עניבת משי 0. עם המוסטט קטן, משוך את התוספתן כדי לחשוף את ה-LCx ואת ה-LAD (איור 1A).
  14. לאחר חשיפת כלי הדם, עברו למלקחיים של ג'רלד ועשו חתך קטן עם מספריים של מצנבאום בשומן האפיקרדיאלי שמעל ה-LCx בסמוך להמראה שלו מהעורק הכלילי הראשי השמאלי.
  15. בעזרת זווית ישרה קטנה וספוגי בוטנים על מהדקי אליס, נתחו בזהירות את ה-LCx. לאחר הקפת העורק בזווית הנכונה, הנח לולאת כלי כדי לבודד אותו לחלוטין. הניחו המוסטט קטן בשני הקצוות.
  16. בשלב זה, יש להפרין את החזירים באופן שיטתי עם 80 IU/kg כדי למנוע היווצרות פקקת.
  17. בצע את מיפוי הזלוף של שריר הלב.
    הערה: הליך זה דורש שני עוזרים. ודא שאחד מהם הוא טכנאי חדר ניתוח שיתזמן ל-2 דקות. השני חייב להיות עוזר כירורגי.
    1. הורה לעוזרים למשוך בעדינות את לולאת הכלי כדי לחסום את ה-LCx במלואו. אשר את החסימה על ידי view מקטע ST ו/או שינויי גל T בצג האק"ג.
    2. במהלך 30 השניות הראשונות של החסימה, הזריקו 5 מ"ל של מיקרוספירות זהב, באמצעות מחט 28 G, לתוך התוספתן השמאלי של הפרוזדורים (איור 1B). משוך את המזרק לאחור בנקודת האמצע של ההזרקה כדי לדמיין דם; זה קריטי כדי להבטיח את המיקום הנכון של המחט בתוך הפרוזדור השמאלי ומיפוי מדויק לאחר מכן.
    3. לאחר השלמת ההזרקה, השתמש בספוג בוטנים כדי להחזיק לחץ על מקום ההזרקה עד להשגת המוסטזיס. אם לא ניתן להשיג המוסטזיס בלחץ, הניחו דמות קטנה של שמונה תפרים עם תפר פוליפרופילן 6-0.
    4. הנחו את העוזר הכירורגי להמשיך למשוך את לולאת כלי הדם במשך כל 2 הדקות תוך כדי הדמיית שינויי האק"ג, תוך הבטחת חסימה של ה-LCx.
  18. לאחר 2 הדקות וברגע ששינויי האק"ג שוככים, הנח מכווץ אמרואיד סביב כלי ה-LCx הפרוקסימלי. הגודל מבוסס על בדיקה חזותית, בדרך כלל נעה בין 2.0 מ"מ ל-2.75 מ"מ. אחיזת האמרואיד על מהדק אליס או מהדק קלי מאפשרת יישום קל יותר (איור 1C). ודא שהאמרואיד משומן היטב.
  19. בקש מהעוזר הכירורגי למשוך את הכיס שנוצר מדיסקציה עם מלקחיים של ג'רלד ו/או ספוג בוטנים כדי לפתוח את החלל. הנח בעדינות את האמרואיד אל העורק דרך חור המנעול, וודא כי חור המנעול מסתובב כלפי חוץ (איור 1D).
  20. ודא שהאמרואיד קרוב ככל האפשר במיקומו. זה עוזר לשמור על אחידות במיקום והאזור האיסכמי שלאחר מכן.
  21. הסר את לולאת כלי הדם ורסס ניטרוגליצרין מקומי (~2 מ"ל) על העורק כדי למנוע עווית כלי דם נוספת.
  22. חותכים את העניבה על התוספתן הפרוזדורי ונותנים לו ליפול בחזרה למקומו.
  23. סגור את קרום הלב באמצעות תפר נספג 3-0 על מחט משופעת הפוכה (RB).
  24. זכור להוציא את הגזה הרטובה, להחזיר את הריאה לאחור ולבדוק אם יש פציעה.
  25. העריכו מחדש את חלל הצלעות באמצעות 0 תפר פולידיוקסנון (PDS) על מחט קצה קהה.
  26. סגור את שכבת השרירים בתפר נספג 3-0, וכאשר כמעט סגור, הכניס קטטר גומי אדום קטן המחובר ליניקה לחלל הצדר. כאשר המנתח הראשי קושר את התפר הסופי, קבל עצירת נשימה ובקש מהעוזר להוציא את הגומי האדום מהחלל. זה מבטיח שכל אוויר בתוך חלל הצדר יפונה.
  27. סגור את השכבה התת עורית עם תפר נספג 3-0 ואת העור עם תפר מונוקריל 4-0 תת עורי רץ.
  28. הניחו תחבושת סטרילית על מקום החתך.

4. טיפול והחלמה לאחר הניתוח

  1. התחל לגמול את האיזופלורן.
  2. בזמן ההמתנה להתעוררות החזירים, אבטח את תחבושת החתך עם גזה ועטיפה אלסטית.
  3. ברגע שהחזירים נושמים בכוחות עצמם, הסירו את הצינור האנדוטרכיאלי.
  4. אפשרו לחזירים להתאושש תחת פיקוח הצוות הווטרינרי בכלוב התאוששות מרופד עם תמיכה בחום.
  5. שוב, אספירין נמשך עד היום החמישי לאחר הניתוח כדי להפחית את הסיכון לפקקת. השיגו שיכוך כאבים עם מדבקת הפנטניל המונחת לפני הניתוח, שנשארת במקומה למשך 3 ימים.
  6. השלימו בדיקות פעמיים ביום לאחר הניתוח על החזירים למשך 3 ימים. בדרך כלל, החזירים אינם חווים הפרעות קצב או אוטם בתקופה זו.
    הערה: שים לב שבסביבות היום ה-14 שלאחר הניתוח, יש סיכוי גבוה יותר להתרחש סגירה אמרואידית מוקדמת ו/או הפרעות קצב חדריות ספונטניות. קבוצות עשויות לפתור תקופה זו עם תרופות מונעות נגד הפרעות קצב, כגון אמיודרון או לידוקאין, אשר נסקר בדיון. בנוסף, ניתן להשתמש בניטור א.ק.ג רציף; עם זאת, הוא די אינטנסיבי וקשה לתחזק אותו על החזירים.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

במשך שני עשורים של ביצוע ההליך הנ"ל, שיעור ההישרדות הוא כ-80%10,11. רוב מקרי המוות מתרחשים כשבועיים לאחר הניתוח, לעתים קרובות עקב הפרעת קצב חדרית בלתי הפיכה וספונטנית בזמן סגירת האמרואידים. במספר נתיחות קודמות, ממצאים אופייניים מראים אמרואיד ממוקם כראוי עם היווצרות צלקת חריפה מינימלית של החדר השמאלי, המאשר את אבחנת הפרעת הקצב החדרית. הפרעת הקצב מובילה למוות לבבי פתאומי, שקשה מאוד לחזות באילו בעלי חיים זה עלול להתרחש. לכן, שקלנו ניטור א.ק.ג רציף במהלך השבועיים הרא...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

היתרון העיקרי בשימוש בכיווץ אמרואיד הוא פשטות המכשיר; עם זאת, זה מציג מגבלות בחוסר היכולת לשלוט בשיעורי הסגירה או במידת ההיצרות סביב העורק הכלילי. זה יכול להוביל לשונות באינדוקציה של איסכמיה של שריר הלב. חלופות לשימוש במכווצים אמרואידים כוללות שימוש בקשרי משי, חוסמים הידראוליים או מיקום סדרתי של בדיקות זרימה 12,13,14,15,16. הש...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

למחברים אין גילויים או ניגודי אינטרסים.

תודות

המחקר מומן על ידי המכונים הלאומיים לבריאות עם מספרי המענקים הבאים: T32HL16051703 (K.C.M., C.S., D.D.H, M.K.), R01HL46716 (F.W.S) ו-R01HL128831 (F.W.S). ברצוננו להודות לצוות הווטרינרי בבית החולים רוד איילנד ובאוניברסיטת בראון על עבודתם יוצאת הדופן ותמיכתם בשלל הפרויקטים שלנו.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
#10 אזמלמדלייןMDS15310
0.9% מי מלחדכרה/וטיבקס17033-492-50קצב: 5 מ"ל/ק"ג במהלך המארז
0-עניבות משיאתיקוןSA76Gקשרו את נספח הפרוזדור השמאלי
1-0 PDS II על קצה קהה CTאתיקוןZ359Tסגירת רווח צלעות
2% לידוקאיןפניקסמינון: 2– 5 מ"ג/ק"ג
2-0 תפר משי על SH מתחדדאתיקוןK833Hהדבק קרום הלב
מחט 28 מדפטרסון וטרינרי78032728להזרקת מיקרוספרה
3 מחטים 18 גרםפטרסון וטרינרי78032793למשיכת תרופות
3-0 ויקריל על RB מתחדדאתיקוןVCP215Hסגור את קרום הלב
3-0 חיתוך הפוך של ויקרילאתיקוןVCP442Hסגירת שכבות שריריות ושכבות עור עמוקות
4-0 מונוקרילאתיקוןMCP496Gסגירת עור
6-0 תפר פוליפרופילןSharePointJS617Nלתיקון חירום של אטריום
כל המכשירים הכירורגייםסטריס ומדלייןדרוש נציג מכירותהכל נפוץ בחדרי ניתוח בבתי חולים
מכווצים אמרואידיםמכשירי מחקר SW, Inc. CS-2.00-TIסוג: טיטניום (2.0 ס"מ עד 3.0 ס"מ)
משכך כאבים: בופרנורפיןהוספירהשם מותג: בופרדיןמינון: 0.03 מ"ג/ק"ג
משכך כאבים: מדבקת פנטנילקובטרוס77870מינון: 4 מ"ג/ק"ג
הרדמה: טלזולאנונימי(טילטמין וזולאזפאם)מינון: 4.4 מ"ג/ק"ג
הרדמה: קסילזין (רומפון)דצ'רהלא ישיםמינון: 2.2 מ"ג/ק"ג
כלורהקסידין 4%BD E-Z פילינג371073הכנה כירורגית
צינור אנדוטרכיאלי אזוקראש.7-0 בדרך כללעשוי להזדקק לגדלים שונים בהתאם לגודל ומשקל החזירים
מערכת ניטור א.ק.גסימן בינייםלא ישיםמוניטור רב-פרמטרי
צריבה חשמליתBovie מומחה פרושנות ה-1250
אקסיד (Ceftiofur)קובטרוס23814הזרקת IM במינון יחיד
זהב STERIspheres ביופל בע"מג-15H20כמות: 5 סמ"ק לניתוח
איזופלורן, USPדצ'רהמינון: 0.75%– 3.0%
מיני לולאות כלי לבנות (ניתנות לזיהוי רנטגן)דה רויאל30-711כדי לבודד את ה-LCx
מזרקים מרובים של 5 סמ"קמדלייןTMOSS05Lלזריקות מרובות
ניטרוגליצריןבקסטרניטרוגליצרין בהזרקת דקסטרוז 5% (200 מק"ג/מ"ל)ריסוס 2– 3 סמ"ק באופן מקומי
קטטר גומי אדוםבריאות קרדינל888766008מניחים בחזה כדי להוציא אוויר
כפפות סטריליותהדרן820955
מערכת יניקהגומקו4042עדיף אם יניקת קיר של מתקן משלו
טיפ יניקה: YankauerמדלייןDYND50130
וילונות כירורגייםחבילת כירורגיה כללית וטרינרית של פטרסון789294364 וילונות דבק קטנים ווילון לפרוטומי אחד גדול
חומר סיכה כירורגיסורגי לוב0281-0205-43חייב להיות סטרילי
הפרין סיסטמיקובטרוס82496מינון: 80 יחב"ל/ק"ג
חזירי יורקשיירCBSET, בע"מלא ישיםבאופן אידיאלי בסביבות גיל 11 שבועות

מקורות

  1. Martin, S. S., Aday, A. W., Almarzooq, Z. I., et al. heart disease and stroke statistics: a report of US and global data from the American Heart Association. Circulation. 149 (8), e347-e913 (2024).
  2. Tsao, C. W., Aday, A. W., Almarzooq, Z. I., et al. heart disease and stroke statistics-2023 update: a report from the American Heart Association. Circulation. 147 (8), e93-e621 (2023).
  3. Pound, P., Ebrahim, S., Sandercock, P., Bracken, M. B., Roberts, I. Where is the evidence that animal research benefits humans. BMJ. 328 (7438), 514-517 (2004).
  4. Jia, H., Chang, Y., Song, J. The pig as an optimal animal model for cardiovascular research. Lab Anim (NY). 53 (6), 136-147 (2024).
  5. Litvak, J., Siderides, L. E., Vineberg, A. M. The experimental production of coronary artery insufficiency and occlusion. Am Heart J. 53 (4), 505-518 (1957).
  6. Keeran, K. J., et al. A chronic cardiac ischemia model in swine using an ameroid constrictor. J Vis Exp. (128), e56190(2017).
  7. Hughes, G. C., Post, M. J., Simons, M., Annex, B. H. Translational physiology: porcine models of human coronary artery disease: implications for preclinical trials of therapeutic angiogenesis. J Appl Physiol. 94 (5), 1689-1701 (2003).
  8. Reinhardt, C. P., Dalhberg, S., Tries, M. A., Marcel, R., Leppo, J. A. Stable labeled microspheres to measure perfusion: validation of a neutron activation assay technique. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 280 (1), H108-H116 (2001).
  9. Harris, D. D., et al. Proteomic analysis and sex-specific changes in chronically ischemic swine myocardium treated with sodium-glucose cotransporter-2 inhibitor canagliflozin. J Am Coll Surg. 238 (6), 1045-1055 (2024).
  10. Sabe, S. A., et al. Sitagliptin therapy improves myocardial perfusion and arteriolar collateralization in chronically ischemic myocardium: a pilot study. Physiol Rep. 11 (11), e15744(2023).
  11. Stone, C. R., et al. Crafting a rigorous, clinically relevant large animal model of chronic myocardial ischemia: what have we learned in 20 years. Methods Protoc. 7 (1), 17(2024).
  12. Chen, C., et al. Functional and structural alterations with 24-hour myocardial hibernation and recovery after reperfusion: a pig model of myocardial hibernation. Circulation. 94 (3), 507-516 (1996).
  13. Chen, C., et al. Impact of delayed reperfusion of myocardial hibernation on myocardial ultrastructure and function and their recoveries after reperfusion in a pig model of myocardial hibernation. Cardiovasc Pathol. 9 (2), 67-84 (2000).
  14. Fallavollita, J. A., Perry, B. J., Canty, J. M. Jr 18F-2-deoxyglucose deposition and regional flow in pigs with chronically dysfunctional myocardium: evidence for transmural variations in chronic hibernating myocardium. Circulation. 95 (7), 1900-1909 (1997).
  15. Liedtke, A. J., Renstrom, B., Nellis, S. H., Hall, J. L., Stanley, W. C. Mechanical and metabolic functions in pig hearts after 4 days of chronic coronary stenosis. J Am Coll Cardiol. 26 (3), 815-825 (1995).
  16. Young, L. H., Renfu, Y., Russell, R., et al. Low-flow ischemia leads to translocation of canine heart GLUT-4 and GLUT-1 glucose transporters to the sarcolemma in vivo. Circulation. 95 (2), 415-422 (1997).
  17. Bolukoglu, H., et al. An animal model of chronic coronary stenosis resulting in hibernating myocardium. Am J Physiol. 263 (1 Pt 2), H20-H29 (1992).
  18. Radke, P. W., et al. Evaluation of the porcine ameroid constrictor model of myocardial ischemia for therapeutic angiogenesis studies. Endothelium. 13 (1), 25-33 (2006).
  19. Remme, W. J., et al. Acute hemodynamic and antiischemic effects of intravenous amiodarone. Am J Cardiol. 55 (6), 639-644 (1985).
  20. Nawada, T., et al. Evaluation of negative inotropic and antiarrhythmic effects of class 1 antiarrhythmic drugs. Int J Clin Pharmacol Ther. 32 (7), 347-355 (1994).
  21. Paslawska, U., et al. Normal electrocardiographic and echocardiographic (M-mode and two-dimensional) values in Polish Landrace pigs. Acta Vet Scand. 56 (1), 54(2014).
  22. Robich, M. P., et al. Anti-angiogenic effect of high-dose resveratrol in a swine model of metabolic syndrome. Surgery. 148 (2), 453-462 (2010).
  23. Salerno, M., Beller, G. A. Noninvasive assessment of myocardial perfusion. Circ Cardiovasc Imaging. 2 (5), 412-424 (2009).
  24. Qayyum, A. A., Kastrup, J. Measuring myocardial perfusion: the role of PET MRI and CT. Clin Radiol. 70 (6), 576-584 (2015).
  25. Sirajuddin, A., et al. Ischemic heart disease: noninvasive imaging techniques and findings. Radiographics. 41 (4), 990-1021 (2021).
  26. Hecht, S., Adams, W. H., Narak, J., Thomas, W. B. Magnetic resonance imaging susceptibility artifacts due to metallic foreign bodies. Vet Radiol Ultrasound. 52 (4), 409-414 (2011).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

זרימת דם כליליתמיקרוספירות מסומנות באיזוטופיםמחלות קרדיווסקולריותמודל של בעלי חיים גדוליםפרפוזיה כליליתתגובה של השריר הלבבי

מאמר זה פורסם

הסרטון יגיע בקרוב