$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
פרוטוקול מחקר בעלי החיים אושר על ידי ועדת הטיפול והשימוש בבעלי חיים של אוניברסיטת צ'ונגצ'ינג הרפואית (IACUC-CQMU-2025-10073).
הכנת שבר מועשר לקטונים ססקיטרפני (SLEL)
חומרים רפואיים מיובשים של Eupatorium lindleyanum DC. נמחקו ונחשפו לריפלוקס פעמיים עם 70% אתנול (V/V) בלחץ מופחת. כל חילוץ בוצע ביחס ממס לחומר של 10:1 (v/w) למשך 2 שעות. התמציות המשולבות סוננו, רוכזו בלחץ מופחת בטמפרטורה של ≤60 מעלות צלזיוס, ולאחר מכן יובשו בהקפאה בוואקום כדי לקבל את אבקת תמצית האתנול הגולמית.
התמצית המיובשת הומסה במלואה במים מזוקקים (ריכוז סופי: 100 מ"ג/מ"ל) והועברה ברצף לכרומטוגרפיית שרף פוליאמיד, ולאחר מכן כרומטוגרפיית שרף ספיחה מקקרופוסית D101 להעשרת לקטונים ססקיטרפניים. לאחר שהשגת שיווי המשקל של הספיחה, שרף D101 נשטף במים מזוקקים להסרת זיהומים פולריים ולאחר מכן נשטף באתנול אנידרי. לאחר שחרור אתנול, החלק שנאסף רוכז בלחץ מופחת ועבר ייבוש בהקפאה ליצירת חלק SLEL, שנשמר בטמפרטורה של −20°C עד לשימוש.
ההפרדה הושגה על פלטפורמת UPLC תוך שימוש במערכת פאזה ניידת בינארית של אצטוניטריל וחומצה פורמית של 0.1% (v/v) במים. תוכנית הגרדיאנט כללה אחיזה איזוקרטית ראשונית של 25 דקות בתכולה אורגנית נמוכה, רמפה ליניארית קצרה ל-70% אצטוניטריל, שלב צעד אורגני גבוה עם 90% אצטוניטריל, ושלב שיווי משקל סופי עם חזרה לתנאי התחלה. המערכת הופעלה ב-0.25 mL·min⁻1 עם טמפרטורת עמודה של 35°C ונפח הזרקה של 0.1 מיקרוליטר (איור משלים S1).
בעלי חיים
בסך הכול שימשו במחקר זה 36 זכרים של חולדות ספרג–דולי (200 ± 20 גרם) ו-36 עכברי BALB/c זכרים (20 ± 2 גרם). בעלי החיים אוחסנו בתנאים סטנדרטיים (22 ± 2 מעלות צלזיוס, 55 ± 5% לחות, מחזור אור/חושך של 12 שעות) עם גישה חופשית למזון ולמים. בעלי החיים התרגלו במשך 7 ימים לפני הניסויים ונעקבו מדי יום לבריאות כללית. כל ההליכים בוצעו כדי למזער סבל בעלי חיים, וההרדמה בוצעה לפני איסוף דם ואיסוף רקמות.
בצקת אוזן הנגרמת על ידי קסילן בעכברים
מודל הבצקת של אוזן העכבר נקבע כפי שתוארקודם 9. לאחר ההסתגלות, העכברים חולקו באקראי לשש קבוצות (n = 6 לכל קבוצה): קבוצת ביקורת (CG), מודל (MG), דקסמתזון (DEX, 10 mg/kg) וקבוצות SLEL במינון נמוך (75 מ"ג/ק"ג), מינון בינוני (150 מ"ג/ק"ג), ומינון גבוה (300 מ"ג/ק"ג). כל הטיפולים ניתנו באמצעות שיפוי אוראלי פעם ביום במשך 7 ימים רצופים (נפח מינון סופי: 10 מ"ל/ק"ג). בשעה וחצי לאחר הטיפול הסופי, הושרה דלקת על ידי מריחת 30 מיקרוליטר קסילן באופן שווה על שני משטחי האוזן הימנית, למעט בקבוצת הביקורת. שלושים דקות לאחר מכן, עכברים הורדמו, נאספו דגימות דם, ונעשו מכות אוזן עגולות בקוטר 8 מ"מ ממיקומים אנטומיים זהים של שתי האוזניים.
בצקת כף רגל שנגרמה על ידי קאראג'ינן בעכברים
מודל הבצקת של כפות העכברוש הוקם באמצעות קאראג'ינן כפי שתוארקודם 10. העכברים חולקו באקראי לשש קבוצות (n = 6 לכל קבוצה): CG, MG, DEX (5 mg/kg) ו-SLEL במינון נמוך (50 mg/kg), מינון בינוני (100 mg/kg) ורמות גבוהות (200 mg/kg). הטיפולים ניתנו דרך הפה פעם ביום במשך 7 ימים (10 מ"ל/ק"ג). נפחי כפות רגליים בסיסיים נמדדו לפני המינון הסופי. שלושים דקות לאחר המתן האחרון, הוזרק 0.1 מ"ל של תמיסת קאראג'ינן 1% (עם ז) תת-עורית למשטח כף הרגל האחורית הימנית. נפחי הכפות נמדדו ב-1, 2, 3 ו-4 שעות לאחר ההזרקה באמצעות פלתיסמומטר. בצקת הרגליים חושבה כך:
בצקת כפות (%) = (Vt − V0) / V0 × 100%
בדיקה היסטולוגית
רקמות האוזן והכפות נאספו מיד לאחר הערכות פונקציונליות. הרקמות הוקצו בפורמלין בופר ניטרלי של 10% למשך 72 שעות בטמפרטורת החדר, הוטמעו בפארפין, חתכו (5 מיקרון) וצבועו ב-H&E לפי פרוטוקולים סטנדרטיים11.
מבחן אימונוסורבנט מקושר באנזימים (ELISA)
דגימות הסרום נאספו בצנטריפוגה ב-3,000 × גרם למשך 10 דקות בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס. רמות TNF-α, IL-6 ו-IL-1β נמדדו באמצעות ערכות ELISA מסחריות בהתאם לפרוטוקולים סטנדרטיים.
ניתוח כתמים מערביים
תמציות חלבון כוללות הוכנו מרקמות אוזן וכפות רגליים באמצעות בופר RIPA ליזיס בתוספת מעכבי פרוטאז ופוספטאז. ריכוזי החלבון נמדדו באמצעות בדיקת BCA, וכמויות שוות של חלבון (30 מיקרוגרם לדגימה) טופלו על ידי SDS-PAGE והועברו לממברנות PVDF. הממברנות נחסמו עם 5% חלב דל שומן למשך שעה בטמפרטורת החדר, ולאחר מכן דגירה עם נוגדנים ראשוניים ב-4 מעלות צלזיוס במהלך הלילה ונוגדנים משניים מצומדים ל-HRP למשך שעה בטמפרטורת החדר. רצועות אימונוריקטיביות זוהו באמצעות כימילומינסנציה משופרת וכמותו באמצעות תוכנת ImageJ.
PCR כמותי בזמן אמת (qRT-PCR)
סך ה-RNA בודד מרקמות אוזן וכפות רגליים באמצעות תגובת חילוץ RNA המופיעה בטבלת החומרים. מיקרוגרם אחד של RNA כולל הועתק הפוך ל-cDNA באמצעות ערכת שעתוק הפוך מסחרית לפי הוראות היצרן. PCR כמותי בוצע באמצעות כימיה של SYBR Green עם פריימרים גנטיים ספציפיים (טבלה 1) בנפח תגובה של 10 מיקרו ליטר תחת פרוטוקול הגברה דו-שלבי. תנאי שעתוק הפוך מפורטים ופרמטרי מחזור PCR מסופקים בסעיף הפרוטוקול. רמות התמלול היחסיות חושבו באמצעות שיטת 2⁻ΔΔCT , כאשר Gapdh שימש כגן ההתייחסות הפנימי.
נתונים וניתוח סטטיסטי
הנתונים מבוטאים כממוצע ± SD. השוואות סטטיסטיות בין שתי קבוצות בוצעו באמצעות מבחן t סטודנט לא מזווג, בעוד ש-ANOVA חד-כיווני יושם בניתוחים שכללו יותר משתי קבוצות. המובהקות הסטטיסטית הוגדרה כ-p < 0.05. המובהקות מוצגת כ-# p < 0.05 ו-## p < 0.01 לעומת קבוצת הביקורת (CG), ו-* p < 0.05 ו-** p < 0.01 לעומת קבוצת המודל (MG).