Name: הכנת ראשי בתרביות תאים hematopoietic ממח העצם Murine עבור electroporation (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-01-06T23:59:00.000+00:00
Duration: 8 min 15 s
Description: למדו לבודד תאים המטופויטיים ממח העצם של עכברים ולתרבם לתאי פיטום ובזופילים. השיטה כוללת שימוש ב-IL-3 להבדלה ואלקטרופורציה יעילה עם יעילות שתילה של כ-30%.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

קציר מוח העצם מן עצמות הירך לבין Tibiae <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השלב הראשון של ההליך הוא לקצור מח העצם של עצמות הירך לבין tibiae של 6 - עכבר 12 שבועות הישן (אנחנו משתמשים BALB / c עכברים אבל אתה יכול לעשות הליך זה עם זן כל העכבר). כדי להתחיל, להרדים את העכבר משאיפת CO 2 (לא יוצג). קציר עצם הירך לבין tibiae מן הרגליים האחוריות של כל אחד. ואז, עם סכין גילוח, לחתוך כל סוף עצמות הירך כדי להסיר את הירך והמפרקים הברך לחשוף את מח. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> באופן דומה, לחתוך כל סוף tibiae כדי להסיר את הברך ואזורים סמוכים הקרסול לחשוף את מח. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> קח מזרק 3 מ&quot;ל עם מחט 26-מד ולמלא אותו RPMI FBS בתוספת 10%, פניצילין, סטרפטומיצין, ואת בטא mercaptoethanol (BME 100 = UM). בעזרת פינצטה, להחזיק את העצם מעל צלחת פטרי המכילה RPMI התקשורת. הכנס את מחט המזרק לתוך קצהו האחד של העצם, לוחץ על המתג כדי לשטוף את מוח העצם. מחט המזרק ניתן להזיז למעלה ולמטה בתוך העצם כדי לשטוף את מוח שיורית. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חזור על התהליך עבור כל העצמות, ואז להמשיך עם הקמת תרבויות. </li></ol> הקמת תרבויות <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כדי להקים את התרבויות מח עצם, פיפטה מח העצם סמוקות מעלה ומטה מספר פעמים כדי לשבור את הרקמה לתוך תא ההשעיה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מקום מסנן 70 מיקרון על גבי צינור חרוטי 50 מ&quot;ל, ומוסיפים את ההשעיה תא המסנן. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> יש לשטוף את צלחת פטרי פעם אחת עם RPMI, ואז מוסיפים את לשטוף את מסנן 70 מיקרון. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שימוש בסוף גומי של 1 מ&quot;ל במזרק הבוכנה, לטחון את חתיכות מוח העצם שנותרו על גבי פילטר 70 מיקרון. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שטפו את המסנן פעם אחת עם RPMI. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר שטיפת מסנן, צנטריפוגה ההשעיה תא בסל&quot;ד 1200 למשך 5 דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שטפו את תא גלולה ידי resuspending ב PBS. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ספירת התאים באמצעות hemocytometer. אנחנו בדרך כלל להשיג ~ 90 מיליון תאים מהעצמות אחד העכבר (שתי עצמות הירך בתוספת שתי tibiae). לאחר ספירת תאים, צנטריפוגה אותם שוב בסל&quot;ד 1200 למשך 5 דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Resuspend התאים כמות קטנה של RPMI ו aliquot אותם לתוך צלוחיות תרבות רקמה המכילה מספיק RPMI כך הריכוז הסופי הוא 1 מיליון תאים לכל מ&quot;ל. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף ציטוקינים כדי לקדם את הפיתוח של סוג התא העניין שלך. במקרה זה, ציטוקינים interleukin-3 (IL-3 = 10 ng / mL) נוסף כדי לקדם את הפיתוח של בזופילים ותאי פיטום. כדי לרכוש בזופילים, דגירה 10 ימים. עבור תאים התורן, דגירה של 5 שבועות. בעת יצירת תא הפיטום, התקשורת IL-3 יש לשנות פעם בשבוע. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הנה מבט על כמה תאים התורן אמור להופיע רק לאחר ציפוי. תמונה זו ממחישה את התמיינות של תאים במח התורן לתוך בזופילים ותאי תורן 10 ימים לאחר תוספת של interleukin-3. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> פעם את סוג התא הרצוי מתקבל, להמשיך לשלב electroporation. </li></ol> Electroporating תאים <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כדי להתחיל את הצעד electroporation, לקבוע את מספר התאים בקבוק התרבות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תאים הם electroporated בדרך כלל צפיפות של 10 מיליון דולר מ&quot;ל, כדי להעביר את המספר הסלולרי נדרש צינורות חרוטי ו צנטריפוגות צינורות ב 1200 סל&quot;ד במשך 5 דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר centrifuging, לשאוב את התקשורת, לשטוף את התאים עם 1X PBS, ו צנטריפוגות שוב ב 1200 סל&quot;ד במשך 5 דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשאוב PBS ולהוסיף Bio-Rad ג&#39;ין חיץ Pulser electroporation לעשות השעיה תא של 10 מיליון תאים לכל מ&quot;ל. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר resuspending את התאים, להוסיף את ה-DNA פלסמיד הרצוי בריכוז סופי של 10 עד 20 מיקרוגרם למ&quot;ל. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Aliquot 150 מיקרוליטר של השעיה התא לתוך בארות על פי בחירתך על צלחת electroporation 96-היטב. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שים את צלחת electroporation בחדר צלחת MXcell ולסגור את המכסה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לפני transfection של תא הפיטום, פרוטוקול electroporation חייב להיות שתוכנת MXcell אלא באמצעות פרוטוקול מראש או מאוחסנים. באמצעות ניסויים אופטימיזציה גילינו את היעילות הגבוהה ביותר transfection של תא הפיטום להתרחש באמצעות מרובע פרוטוקולים גל הדופק. אנו ישתנו התנאים electroporation על הצלחת להעביר 300V/20ms, 350/15ms, 350V/20ms ו 350V/10ms פולסים מרובע לנופף 2000uF אוהם ו 1000. לאחר פרוטוקול הוגדר ולטעון המכשיר, ללחוץ על &quot;דופק&quot; כדי electroporate התאים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר electroporation תושלם, העברת תאים לצלחת בתרבית רקמה. אנחנו בדרך כלל העברת כל 150 electroporation מדגם microliter אל באר צלחת 48-היטב בתרבות רקמה המכילה 300 מיקרוליטר RPMI (בתוספת 10% FCS, פניצילין, סטרפטומיצין, ואת בטא mercaptoethanol) עם 10 ננוגרם למ&quot;ל interleukin-3. תאים מודגרת לילה בשעה 37 ° C, אז assayed 24 שעות מאוחר יותר לביטוי ודיכוי. </li></ol> טראןsfection תוצאות תמונת מיקרוסקופ פלואורסצנטי של תאים לאחר electroporation מוצלח באמצעות 20 מיקרוגרם למ&quot;ל GFP פלסמיד מוצג הווידאו. שימוש במערכת electroporation MXcell transfection יעילות של כ -30% ניתן להשיג. המערכת מאפשרת לך להשתנות התנאים כדי למקסם את היעילות transfection שלך, תוך שמירה על כדאיות התא.

כאשר מידע גנטי יותר עולה וכלים חדשים כגון siRNA מפותחים, השימוש פיזיולוגית התאים הרלוונטיים הפך חשוב יותר מתמיד כדי לקדם את ההבנה שלנו של המסלולים המחלה, חלבונים אינטראקציות, ואת הולכת אותות. תאים ראשוניים מתקבלים ישירות לרקמות או נוזלים מעובד במבחנה. תאים אלה ניתן לטפל במספר דרכים, כולל באמצעות הקדמה של חומר גנטי חיצוני. זה הופך ברור יותר ויותר כי הדרך היעילה ביותר להציג את ה-DNA או פלסמיד siRNA לתוך תאים ראשוניים הוא electroporation. Electroporation חושף תאים פולסים חשמליים על מנת transiently להגדיל את החדירות של קרום התא, ובכך לאפשר חומצות גרעין אקסוגניים להיכנס לתא. שיטה זו של transfection יכול להיות מותאם כדי להכיל את ההבדלים בין תאים מסוגים שונים / קווי, ולכן ניתן להשתמש בו כדי transfect תא הפיטום וכן כל מח עצם אחרות הנגזרות התא. יתר על כן, בניגוד transfection ויראלי בתיווך, electroporation אינה מטילה מגבלות על גודל של ה-DNA transfected, ולא דורשים הכנה נרחבת. בניגוד transfection השומנים בתיווך, electroporation יכול להיות פחות רעיל ואינו לגרום השמנה endosomal של חומצת גרעין transfected. ביו רד פיתחה את מערכת electroporation MXcell במיוחד עבור תאים אלה. MXcell מאפשר לך להשתנות התנאים כדי למקסם את היעילות ואת הכדאיות transfection התא. כדי לייעל את נצילות transfection ולמזער מוות של תאים, מספר רב של פרמטרים electroporation כולל מתח, קיבול, התנגדות, אורך הפולס יכול להיות מותאם ומוערכת.

<table><tbody><tr><td>מערכת אלקטרופורציה Gene Pulser MXcell</td><td>Bio-Rad</td><td>165-2670</td><td></td></tr><tr><td>בופר אלקטרופורציה Gene Pulser</td><td>Bio-Rad</td><td>165-2677</td><td></td></tr></tbody></table>

הכנת ראשי בתרביות תאים hematopoietic ממח העצם murine עבור electroporation

The Preparation of Primary Hematopoietic Cell Cultures From Murine Bone Marrow for Electroporation

זה הופך ברור יותר ויותר כי electroporation היא הדרך היעילה ביותר להציג את ה-DNA או פלסמיד siRNA לתוך תאים ראשוניים. Pulser ג&#39;ין מערכת MXcell electroporation וג&#39;ין Pulser חיץ electroporation פותחו במיוחד כדי transfect חומצות גרעין לתאי יונקים קשות transfect תאים, כגון וידאו cells.This יסודי גזע מדגים כיצד להקים ראשוני בתרביות תאים hematopoietic ממח העצם Murine ולאחר מכן להכין אותם electroporation במערכת MXcell. אנחנו מתחילים ידי בידוד עצם הירך לבין השוקה. מוח העצם של הירך והן השוקה נקצרים אז ותרבויות מבוססים. בתרבית תאים במח העצם הם transfected כך וניתח.

הליך זה מתאר כיצד להקים ראשוני בתרביות תאים hematopoietic ממח העצם Murine ואחריו transfection באמצעות Pulser ג&#39;ין מערכת MXCell electroporation.

הכנת ראשי בתרביות תאים hematopoietic ממח העצם Murine עבור electroporation

הדבר הופך ברור יותר ויותר כי אלקטרופורציה היא הדרך היעילה ביותר להחדרת DNA פלסמידי או siRNA לתאים ראשוניים. ה-Gene Pulser...

הליך זה מתחיל באיסוף עצמות ירך (femurs) ושוק (tibia) של עכברים. לאחר הסרת מפרקי הירך, הברך והקרסול, מבודל מח העצם באמצעות הזרקת תמיסת RPMI לקצה הפתוח של העצם. לאחר קבלת תרחיף של תאים בודדים, תאי מח העצם מובחנים לתאי מאסט (mast cells), מוכנסים לצלחות אלקטרופורציה של 96 בארות, ולאחר מכן עוברים טרנספקציה.בשימוש במערכת electroporation מסוג gene pulse או MX cell. באמצעות פרוטוקולים של פולס גל ריבועי, ניתן להשיג יעילות טרנספקציה של כ-30%. השלב הראשון של הפרוצדורה הוא קצירת מח עצם מהפמור (עצם הירך) ומקשקשת העין של טיביה (עצם השוק) של עכבר בן שש עד 12 שבועות.כדי להתחיל, יש לבצע המתנס בעבר לעכבר באמצעות שאיפת CO2, ולהוציא את עצם הירך (femur) והשוק (tibia) מהרגליים האחוריות של כל עכבר. לאחר מכן, בעזרת להב תער, חתכו כל קצה של עצם הירך כדי להסיר את מפרקי הירך והברך ולחשוף את מוח העצם באופן דומה. חתכו כל קצה של עצם השוק כדי להסיר את האזורים הסמוכים לברך ולקרסול ולחשוף את מוח העצם.בשלב הבא, קחו מזרק עם מחט במידה 26.5 ומלאו אותו ב-RPMI מועשר ב-10% FBS, פניצילין, סטרפטומייצין, בטה-מר캅טואתנול ו-L-glutamine. בעזרת פינצטה, החזיקו את העצם מעל צלחת פטרי המכילה מצע RPMI. הכניסו את מחט המזרק לקצה אחד של העצם ולחצו על הבוכנה כדי לשטוף החוצה את מחית העצם.ניתן להניע את מחט המזרק למעלה ולמטה בתוך העצם כדי לשטוף החוצה את שאריות המחול. חזרו על הפעולה עבור כל העצמות ולאחר מכן המשיכו בהקמת התרביות. כדי להקים את תרביות מחול העצם, העבירו את מחול העצם השטוף למעלה ולמטה מספר פעמים (pipetting) כדי לפרק את הרקמה לסספנסיית תאים.לאחר מכן, הניחו מסנן של 70 micron מעל מבחנה קונית של 50 milliliter והוסיפו את תגלי השבתיים למסנן. לאחר מכן, שטפו את צלחת הפטרי פעם אחת עם RPMI. הוסיפו את מי השטיפה למסנן של 70 micron, ובעזרת הקצה הגומי של בוכנת מזרק של 1 milliliter, כבשו את חתיכות מחול השגרה שנותרו על גבי מסנן ה-70 micron.שטפו את המסנן פעם אחת ב-RPMI לאחר שטיפת המסנן. סובבו את תרחיף התאים בצנטריפוגה במהירות של 1200 RPM למשך חמש דקות. שטפו את משקע התאים על ידי ריסוספנסיה (Resus suspending) ב-PBS.ספרו את התאים באמצעות המוציטומטר (hemo cytometer). בדרך כלל אנו מקבלים כ-90 מיליון תאים מעצמות של עכבר אחד, שני פמור (femur) ושתי טיביה (tibia). לאחר ספירת התאים, סבבו אותם שוב בצנטריפוגה ב-1200 RPM למשך חמש דקות.שחזר את התאים בכמות קטנה של RPMI וחלק אותם למבחנות תרבית רקמה, המכילות מספיק RPMI כך שהריכוז הסופי יהיה 1 מיליון תאים למיליליטר. לאחר מכן, הוסף ציטוקינים כדי לקדם את התפתחות סוג התאים המבוקש. במקרה זה, מתווסף הציטוקין interleukin three כדי לקדם התפתחות של basophils ותאי mast cells; להשגת basophils הדגרה למשך 10 ימים, עבור mast cells הדגרה למשך חמישה שבועות בעת יצירת mast cells.יש להחליף את המצע ואת ה-IL three פעם בשבוע. להלן תצלום המראה כיצד תאי מחית העצם צריכים להיראות מיד לאחר הפיזור. תמונה זו מדגימה את ההבחנה של תאי מחית העצם לבסופילים ולתאי תסתית 10 ימים לאחר הוספת interleukin three.לאחר השגת סוג התאים הרצוי, המשיכו לשלב האלקטרופורציה. כדי להתחיל בשלב האלקטרופורציה, קבעו את מספר התאים בתרבית. תאי בקבוק (Flask cells) עוברים בדרך כלל אלקטרופורציה בצפיפות של 10 מיליון לתמליליטר.העבירו את מספר התאים הנדרש למבחנות קוניות וסובבו אותן בצנטריפוגה במהירות של 1200 RPM למשך חמש דקות. לאחר הסבב בצנטריפוגה, שאבו את המצע, שטפו את התאים עם XPBS אחד וסובבו שוב בצנטריפוגה במהירות של 1200 RPM למשך חמש דקות. לאחר מכן, שאבו את ה-PBS והוסיפו בופר אלקטרופורציה BioRad gene pulsar כדי להכין ת сусפנזיית תאים בריכוז של 10 מיליון תאים למילליטר.לאחר השעיית התאים, הוסיפו את ה-plasmid DNA הרצוי בריכוז סופי של 10 עד 20 micrograms per milliliter. ערבבו בעדינות את תמיסת התאים והעבירו 150 microliters מהשעיית התאים לבארים שבחרתם בלוח electroporation בעל 96 בארות. לאחר מכן, הניחו את לוח ה-electroporation בתא ה-MXL וסגרו את המכסה לפני ביצוע הטרנספקציה של תאי מחיתיים וה-electroporation.יש לתכנת את הפרוטוקול במכשיר ה-MXL, אלא אם כן משתמשים בפרוטוקול קבוע מראש או שמור. דרך ניסויי אופטימיזציה, גילינו כי יעילויות הטרנספקציה הגבוהות ביותר של תאי מח עצם מושגות באמצעות פרוטוקולי פולס של גל מרובע. נשנה את תנאי האלקטרופורציה בלוחית כדי לספק פולסים של גל מרובע ב-2000 micro phs ב-1000 ohms. לאחר הגדרת הפרוטוקול וטעינתו למכשיר, לחצו על pulse כדי להפעיש את התאים; עם השלמת האלקטרופורציה, העבירו את התאים ללוחית תרבית רקמות.בדרך כלל אנו מעבירים כל דגימה של 150 µL לאחר electroporation לבאר בפלטת תרבית רקמה בעלת 48 בארות, המכילה 300 µL של RPMI עם 10 ng/mL של Interleukin 3. התאים מדגברים למשך לילה בטמפרטורה של 37 °C, ולאחר 24 שעות נבדקים להבעה ודיכוי. זוהי תמונת מיקרוסקופיה פלואורסצנטית של התאים.לאחר ביצוע אלקטרופורציה מוצלחת באמצעות 20 micrograms per milliliter של פלסמיד GFP, תוך שימוש במערכת האלקטרופורציה MX cell, ניתן להגיע ליעילות טרנספקציה של כ-30%. המערכת מאפשרת לשנות את התנאים כדי למקסם את יעילות הטרנספקציה תוך שמירה על חיוניות התאים. מערכת ה-MX cell שימושית במיוחד עבור תאי יונקים ראשוניים, כגון תאי המטופואטיים של עכברים אלו.הדגמנו כעת כיצד לבודד תאי מחית עצם מעכברים ולבצע טרנספקציה לתאי מאסט מובחנים באמצעות מערכת electroporation של תאי MX. זהו כל הפרוצדורה. תודה שצפיתם ובהצלחה בניסויים שלכם.

the-preparation-primary-hematopoietic-cell-cultures-from-murine-bone

Research

JoVE Journal

Biology

ביולוגיה

הליך זה מראה כיצד להשתמש ג'ין Pulser מערכת MXcell electroporation במהירות ובקלות לזהות את התנאים הטובים ביותר עבור electroporation fibroblasts העכבר עובריים (MEFs) או תאים ראשוניים אחרים. שיקולים לפתרון בעיות הם דנו גם וידאו המשויכת.

שימוש ג&#39;ין Pulser מערכת MXcell electroporation כדי Transfect תאים ראשוניים עם יעילות גבוהה

הליך זה מתאר שיטה לבידוד והתרבות של האיבר של קורטי Murine עם או בלי לימבוס ספירלה ספירלה נוירונים גנגליון. אנחנו גם להדגים שיטה הביטוי של הגן כתב אקסוגניים האיבר של קורטי explant ידי electroporation.

תרבות ראשיים electroporation פלסמיד של האיבר Murine של קורטי.

שיטה לנתח את התפלגות אבות היווצרות הדם במח העצם ב cytometry זרימה, כמו גם ביעילות לבודד מטוהרים מאוד בתאי גזע hematopoietic (HSCs) מתואר. הליך הבידוד מבוסס בעיקרו על העשרת המגנטי של כ-Kit תאים + תא מיון לטהר HSCs ללימודי תאית ומולקולרית.

ניתוח בידוד פנוטיפי של Murine בתאי גזע hematopoietic ו-Lineage מחויבים אבות

עבור פרוטוקול מהיר CRISPR/Cas9-מתווכת ' שיבוש גנטי עכבר, התאים hematopoietic העיקרי של האדם מתואר במאמר זה. Cas9-sgRNA ribonucleoproteins הם הציגו ויה אלקטרופורציה עם sgRNAs שנוצר דרך במבחנה שעתוק ו Cas9 מסחרי. יעילות העריכה גבוהה מושגות עם זמן מוגבל ועלות פיננסיים.

שיבוש גנטי יעילים ביותר מאתר ואנושי Hematopoietic ובתאים מאת CRISPR/Cas9

פרוטוקול זה ממחיש הליך בטוחים ויעילים כדי לשנות CD133+ hematopoietic תאי גזע. הציג נגיפי, מגנטי polyplex-הגישה המבוססת על עשוי לספק בסיס אופטימיזציה של תאי גזע טיפולית אפקטים כמו גם לגבי ניטור המוצר תא מנוהל באמצעות תהודה מגנטית.

פרוטוקול להעברת MicroRNA לתוך למבוגרים הנגזרות מח עצם Hematopoietic תאי גזע כדי לאפשר הנדסה תא בשילוב עם מיקוד מגנטי

תיאר הם פרוטוקולים עבור עריכת הגנום יעיל מאוד של גזע המטפאות מורקיים ומחולל קדמון (HSPC) על ידי מערכת CRISPR/Cas9 כדי לפתח במהירות מערכות מודל העכבר עם המטפאות ספציפיים שינויים גנים.

לנטינגיו CRISPR/Cas9 בתיווך הגנום עריכה לחקר התאים המטפאות במודלים למחלות

שיטה זו מתארת את הטיהור על ידי ציטומטריית זרימה של MEP ו- MKP מעצמות הירך של העכברים, השוקה ועצמות האגן.

בידוד אבות מקרוציטים עכבר

כאן אנו מציגים שיטה חסכונית ויעילה לבודד וליצור תאים דנדריטיים שמקורם במח עצם בטוהר גבוה מעכברים לאחר 7 ימים של תרבית עם 10 ננוגרם/מ"ל GM-CSF/IL-4.

פרוטוקול חסכוני ויעיל לבידוד וגידול תאים דנדריטיים שמקורם במח העצם מעכברים

מוצג כאן פרוטוקול לייזום, תחזוקה וניתוח של תרביות תאי גזע המטופויטיים של עכברים באמצעות הרחבה מבוססת אלכוהול פוליוויניל ex vivo , כמו גם שיטות למניפולציה גנטית שלהם על ידי התמרה לנטיווירלית ואלקטרופורציה.

אקס ויוו הרחבה ומניפולציה גנטית של תאי גזע המטופויטיים של עכברים בתרביות מבוססות אלכוהול פוליוויניל

כאן אנו מציגים פרוטוקולים המאפשרים בידוד של תאי סטרומה מעצם מורין, מח עצם, בלוטת התימוס ורקמה תימית אנושית התואמת למולטיומיקה של תא יחיד.

בידוד תאי סטרומה מאיברים המטופויטיים

למדו לבודד תאים המטופויטיים ממח העצם של עכברים ולתרבם לתאי פיטום ובזופילים. השיטה כוללת שימוש ב-IL-3 להבדלה ואלקטרופורציה יעילה עם יעילות שתילה של כ-30%.

הכנת ראשי בתרביות תאים hematopoietic ממח העצם Murine עבור electroporation

גלה סרטונים נוספים