August 14th, 2009
פרוטוקול קצר מכתים חלבון עם Coomassie מבריק כחול (CBB) G-250 ב ג'לים polyacrylamide מתואר ללא שימוש בממיסים אורגניים או חומצה אצטית כמו הנהלים מכתים קלאסית עם CBB.
כדי להתחיל בהליך זה, Kumasi Brilliant Blue או CBG two 50 מומס בליטר אחד של מים מזוקקים על ידי ערבוב במשך שעתיים עד ארבע שעות. חומצה הידרוכלורית מתווספת מאוחר יותר לתמיסה הכחולה הכהה תוך ערבוב למשך דקה נוספת, והתמיסה מאוחסנת בחושך לשימוש מאוחר יותר. לאחר הכנת דגימת חלבון ודף STS, קלטת הג'ל מפורקת והג'ל מונח בקופסה לשלושה שלבי כביסה עוקבים עם מים מזוקקים דו-צדדיים.
לאחר שלב הכביסה השלישי, המים מוחלפים בתמיסת צביעה CBB מספקת כדי לכסות את הג'ל בקופסה. הקופסה מחוממת במיקרוגל למשך 10 שניות, ואז מניחים את הקופסה עם הג'ל על שייקר. להשלמת הצביעה ניתן לצפות ברצועות חלבון לאחר דקה אחת.
היי, אני אמרי לורנס ממתקן השיעול לטיהור ביטוי חלבונים באמברין היידלברג. היום נראה לכם פרוטוקול לצביעת חלבונים עם cooma brilliant blue G 50 בג'ל כלוריד. בניגוד לשיטות צביעה קלאסיות, הפרוטוקול שלנו אינו משתמש בממיסים אורגניים או בחומצה אצטית.
אנו משתמשים בפרוטוקול זה כדי לנתח את החלבונים שלנו לאחר כל שלב טיהור. אז בואו נתחיל. להכנת תמיסת הצביעה CBB, 60 עד 80 מיליגרם CBB מומסים בליטר אחד של מים מזוקקים על ידי ערבוב במשך שעתיים עד ארבע שעות.
לאחר המסת ה-CBV, העבירו את התמיסה למכסה אדים. במכסה האדים, הוסיפו בזהירות שלושה מיליליטר של חומצה הידרוכלורית מרוכזת לתמיסה הכחולה הכהה. תוך ערבוב של דקה אחת, יש ללבוש כפפות, מכיוון שהפתרון הסופי יהיה בעל pH של שניים.
לאחר הכנת התמיסה, היא מאוחסנת בחושך לשימוש מאוחר יותר. ניתן לאחסן את התמיסה במשך שבועות או עד מספר חודשים מבלי לאבד את יעילות הצביעה שלה. כדי להכין דגימות חלבון לדף SDS, מכסים מתאימים של דגימות חלבון מעורבבים עם מאגר העמסה לריכוז סופי של מאגר טעינה אחד מחממים את דגימות החלבון למשך כחמש דקות לפני הטעינה.
בזמן חימום הדגימות, תא האלקטרופורזה של הג'ל מוכן לריצה. אנו משתמשים בג'לים טרומיים בתא מיני עם מאגר MES כמאגר הריצה. עם זאת, ניתן להשתמש בכל מערכת ג'ל ואלקטרופורזה אחרת.
לאחר מכן נטענות דגימות החלבון המחוממות על הג'ל והאלקטרו מזרח למשך 50 דקות ב-220 וולט. לאחר השלמת דף ה-SDS, מפרקים את קלטת הג'ל ומניחים את הג'ל בקופסה עם 100 מיליליטר מים מזוקקים. לשלבי הכביסה הבאים, הקופסה מחוממת במיקרוגל למשך 30 שניות.
יש להפסיק את החימום לפני שמתרחשת רתיחה. לאחר חימום הקופסה במיקרוגל עם הג'ל המונח על שייקר למשך שלוש עד חמש דקות, חזור על שלב כביסה זה פעמיים עם מים מתוקים. לאחר ששלוש השטיפות במים, מוסיפים תמיסת CBB עומדת לכיסוי הג'ל בקופסה והקופסה מחוממת במיקרוגל למשך 10 שניות ללא רתיחה.
לאחר מכן, הקופסה עם הג'ל מונחת על שייקר להשלמת הצביעה. ניתן לצפות ברצועות חלבון לאחר דקה אחת ולאחר 15 עד 30 דקות. הצביעה בדרך כלל חזקה מספיק.
תמיסת הצביעה נשפכת ומוסיפים 50 עד 100 מיליליטר מים מזוקקים. על מנת לעכב עוד יותר את הרקע הכחול הבהיר של הג'ל על שייקר, ניתן להחליף את המים במים מתוקים להכתמה נוספת. במידת הצורך, כעת ניתן לסרוק, לצלם או לייבש את הג'ל לאחסון לטווח הארוך.
ג'ל שהוכתם בעקבות הליך זה אמור להיראות כך. בג'ל זה, רצועות החלבון מוכתמות היטב ונראות בבירור. אמנם הרקע זניח.
הנתיב הראשון המצוין על ידי הכוכבית מכיל סמני משקל מולקולריים. לעומת זאת, ג'ל שלא נשטף מספיק לפני הצביעה ייראה כך בג'ל זה, שלבי הכביסה היו קצרים מדי, ולכן רצועות החלבון לא הוכתמו מספיק טוב. שימו לב שהנתיב המצוין על ידי הכוכבית מכיל את אותן כמויות חלבון של סמני משקל מולקולרי כמו ג'ל קודם, אך מראה צביעה פחות יעילה.
זה עתה הראינו לכם כיצד לצבוע חלבונים בכחול מבריק מסיבי בג'ל פוליאמיד ללא צורך להשתמש בממיסים אורגניים רעילים או דליקים. בעת ביצוע הליך זה, חשוב לזכור כי שלבי הכביסה הם קריטיים לצביעה יעילה של החלבונים. אז זהו.
תודה על הצפייה ובהצלחה בניסויים שלך.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
מאמר זה מתאר פרוטוקול לצביעת חלבונים באמצעות Coomassie Brilliant Blue (CBB) G-250 בג'לים של פוליאקרילאמיד ללא שימוש בממסים אורגניים או חומצה אצטית. השיטה מספקת גישה פשוטה לחזות רצועות חלבון לאחר אלקטרופורזה.
This solvent-free Coomassie staining method addresses safety and workflow efficiency in protein analysis by eliminating toxic organic solvents and acetic acid. It enables rapid, reproducible visualization of protein bands after SDS-PAGE, supporting routine quality control in protein purification pipelines. The approach reduces laboratory hazards while maintaining compatibility with downstream analytical workflows.
This method fits within the protein purification continuum, specifically supporting post-SDS-PAGE analysis during early discovery and process development stages where frequent protein quality checks are required.