Name: חוט השדרה Electrophysiology (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-01-18T16:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 59 s
Description: למדו טכניקת למינקטומיה ונטרלית לבידוד חוט השדרה בעכברים נאונטליים לצורך מחקר אלקטרופיזיולוגי. השיטה מאפשרת הקלטת פעילות עצבית ושימוש במחקרי מדעי המוח.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

סמואל ל Pfaff הוא פרופסור במעבדות ביטוי גנים במכון סאלק למחקרים ביולוגיים החוקר את הווארד יוז רפואי במכון. עבודה זו נתמכה על ידי כריסטופר ודנה ריב קרן. ג&#39;ו Belcovson, קנט Schnoeker ומייק סאליבן ב משאבי מולטימדיה במכון סאלק סיוע בצילום ועריכה.

1. הכן מלאכותי הנוזל השדרתי (aCSF) 1. אנחנו הראשונים 2L להכין מלאי של 10X aCSF ללא מגנזיום או סידן. ריאגנטים המפורטים millimolar. המספרים מתייחסים קטלוג Sigma / אולדריץ'. <table border="1" cellpadding="0" style=";text-align:right;direction:rtl"><tbody><tr><td colspan="4"> 2 ליטר aCSF 10X (ללא מ"ג או Ca) </td></tr><tr><td> מגיב </td><td> mM </td><td> g/2L </td><td> קטלוג </td></tr><tr><td> KCl </td><td> 40 </td><td> 5.96 </td><td> P-9333 </td></tr><tr><td> NaCl </td><td> 1280 </td><td> 149.61 </td><td> S-7653 </td></tr><tr><td> NaHCO 3 </td><td> 210 </td><td> 35.28 </td><td> S-6297 </td></tr><tr><td> לאא 2 PO 4 </td><td> 5 </td><td> 1.38 </td><td> S-9638 </td></tr><tr><td> גלוקוז </td><td> 300 </td><td> 108.12 </td><td> D-9434 </td></tr><tr><td colspan="4"> הוסף מים מזוקקים עד 2L </td></tr></tbody></table> אנו גם להכין פתרונות 1M של MgSO 4 ו CaCl 2 ב 50 מ"ל מים, כדי לאפשר התאמות molarity מניסוי לניסוי ולהבטיח סידן נשאר פתרון. <table border="1" cellpadding="0" style=";text-align:right;direction:rtl"><tbody><tr><td colspan="4"> סידן מגנזיום 1M ו מניות </td></tr><tr><td> מגיב </td><td> M </td><td> g/50mL </td><td> קטלוג </td></tr><tr><td> CaCl 2 </td><td> 1 </td><td> 7.35 </td><td> C-5080 </td></tr><tr><td> MgSO 4 </td><td> 1 </td><td> 12.33 </td><td> M-5921 </td></tr></tbody></table> הפתרון חייב להיות aCSF בגז עם carbogen (95% O2 / CO2 5%) להוריד את ה-pH לפני הוספת סידן או סידן יהיה להאיץ. <table border="1" cellpadding="0" style=";text-align:right;direction:rtl"><tbody><tr><td colspan="2"> 1 ליטר aCSF </td></tr><tr><td> מגיב </td><td> נפח </td></tr><tr><td> 10X aCSF </td><td> 100 מ"ל </td></tr><tr><td> 1M CaCl 2 </td><td> 1 מ"ל (לנתח) 2ml (הקלטה) </td></tr><tr><td> 1M MgSO 4 </td><td> 1 מ"ל </td></tr><tr><td colspan="2"> הוסף את ~ 800 מ"ל מים מזוקקים, גז עם carbogen 2 דקות לפני הוספת סידן </td></tr><tr><td colspan="2"> הוסף מים מזוקקים עד 1 ליטר. </td></tr></tbody></table> משאבות וצינורות ומנות לנתח יש לשטוף לפני ואחרי השימוש. בתור בעוד לנתח, 1mm סידן aCSF צריך להיות בגז ברציפות עם carbogen. ACSF יכול להיות שאב מבקבוק אל צלחת הניתוח, הנשאבים המנה לנתח את הבקבוק או נשלחו פסולת. אנו משתמשים אלסטומר (Sylgard, Dow Corning) צלחת מצופה לבצע את הנתיחה. עכבר בילוד הוא ערופה במהירות במספריים חדים חתך עשה עם מספריים דרך בית החזה והבטן הגחון ו. בעל חיים הוא נדחק אז. העכבר נדחק היא שטפה עם aCSF. בעל חיים הוא ניצח אז המנה לנתח עם סיכות חרקים מוכנס דרך forelimbs ועל בבסיס הזנב. עמוד השדרה הוסר על ידי ביצוע laminectomy הגחון. עמוד השדרה מוחזק במלקחיים קטנים ואחד להב מספריים קטנים מוכנס הגב מיד עמוד השדרה הגרמית. Lamina היא לחתוך בצד אחד ולאחר מכן השני בעדינות תוך כדי הרמת עמוד השדרה הגרמית. זו מתבצעת לכל אורך עמוד השדרה. חוט השדרה מוסר על ידי חיתוך לאורך צדי עמוד השדרה לנתק את שורשי העצבים בעמוד השדרה וחתך את קרומי המוח המקיף את חוט השדרה. אנחנו חותכים בצדדים ימין ועל שמאל, אז חתכנו את קרומי המוח מחובר לצד הגבי של חוט השדרה כדי לשחרר אותו. כבל מבודד הוא ניצח אז המנה ליד כניסת aCSF להבטיח חמצון טוב אם בעלי חיים נוספים גזור. חוט השדרה מבודד הוא הועבר לאחר מכן מנה הקלטה בעזרת כף או מרית קטנה. כאן אנו perfuse ההכנה עם מחומצן 2mm סידן aCSF. חוט השדרה הוא ניצח על המנה אלסטומר מצופה micromanipulators השתמשו כדי להעביר תאיים, כל יניקה אלקטרודות ליד שורש השורשים. כאשר קצה האלקטרודה הוא לקראת סוף שורש בחינם, שאיבה עדינה מוחל לצייר את השורש לתוך האלקטרודה יניקה. תהליך זה ניתן לחזור להקליט השורשים בו זמנית. <img src="/files/ftp_upload/1660/1660fig1.jpg" alt="איור 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="איור 1"> באיור 1. עריפת ראש ועל הוצאת הקרביים א. במהירות לערוף את העכבר במספריים חדים. תרומות פחות או יותר מן גזע המוח יכולה להיות מושגת בהתאם לרמת של לחתוך. מקום ב להב אחד של המספריים לתוך הפתח של חלל החזה נוצר על ידי עריפת ראש. פתח את בית החזה והבטן הגחון ועל בסיס הזנב. הסר את הקרביים ולשטוף עם aCSF. <img src="/files/ftp_upload/1660/1660fig2.jpg" alt="איור 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="איור 2"> איור 2. הסרת עמוד השדרה א. הכנס את הלהב השמאלי של המספריים אל תוך החלל שבין עמוד השדרה וחוט השדרה ימינה של חוט השדרה לחתוך דרך עצמות הגחון על הנחת הכבל. ואז להכניס את הלהב הימני של המספריים אל תוך החלל שבין עמוד השדרה וחוט השדרה מצד שמאל של חוט השדרה לחתוך. ב חזור על תהליך זה, תוך יישום המתיחה עדין עמוד השדרה. יש להיזהר שלא לנקב את עמוד השדרה על ידי החזקת המספריים בזווית נמוכה. <img src="/files/ftp_upload/1660/1660fig3.jpg" alt="איור 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="איור 3"> איור 3. הסרה של חוט השדרה. A. הכנס את הלהב השמאלי של המספריים אל תוך החלל שבין עמוד השדרה ועל עצמות ימינה של חוט השדרה דרך לחתוך את השורשים ואת קרומי המוח הנחת לרוחב השדרה אל חוט. ואז להכניס את הלהב הימני של המספריים אל תוך החלל שבין עמוד השדרה ועל עצמות בצד שמאל של השדרה לחתוך את השורשים קרומי המוח הנחת לרוחב השדרה אל חוט. ב לבסוף, בעדינות להרים את כבל מקורי וחתך את קרומי המוח חיבור כבל הגב אל רבדים. שוב להיזהר שלא לנקב את עמוד השדרה על ידי החזקת המספריים בזווית נמוכה. אין לחתוך את השורשים קרוב מדי לחוט השדרה.

<ol><li>Myers, C. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cholinergic+input+is+required+during+embryonic+development+to+mediate+proper+assembly+of+spinal+locomotor+circuits%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Cholinergic input is required during embryonic development to mediate proper assembly of spinal locomotor circuits.</a> Neuron. 46, 37-49 (2005).</li>
<li>Goulding, M., Pfaff, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+circuits+that+generate+simple+rhythmic+behaviors+in+vertebrates%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opin+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Development of circuits that generate simple rhythmic behaviors in vertebrates.</a> Curr Opin Neurobiol. 15 (1), 14-20 (2005).</li>
<li>Gallarda, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Segregation+of+axial+motor+and+sensory+pathways+via+heterotypic+trans-axonal+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Segregation of axial motor and sensory pathways via heterotypic trans-axonal signaling.</a> Science. 320, (2008).</li>
<li>Gosgnach, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((V1+spinal+neurons+regulate+the+speed+of+vertebrate+locomotor+outputs%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">V1 spinal neurons regulate the speed of vertebrate locomotor outputs.</a> Nature. 440 (7081), 215-219 (2006).</li>
<li>Lanuza, G. M., Gosgnach, S., Pierani, A., Jessell, T. M., Goulding, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+identification+of+spinal+interneurons+that+coordinate+left-right+locomotor+activity+necessary+for+walking+movements%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Genetic identification of spinal interneurons that coordinate left-right locomotor activity necessary for walking movements.</a> Neuron. 42 (3), 375-386 (2004).</li>
<li>Jiang, Z., Carlin, K. P., Brownstone, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+in+vitro+functionally+mature+mouse+spinal+cord+preparation+for+the+study+of+spinal+motor+networks%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res%22%5BJournal%5D)">An in vitro functionally mature mouse spinal cord preparation for the study of spinal motor networks.</a> Brain Res. 816 (2), 493-499 (1999).</li>
<li>Ziskind-Conhaim, L., Gao, B. X., Hinckley, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ethanol+dual+modulatory+actions+on+spontaneous+postsynaptic+currents+in+spinal+motoneurons%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Ethanol dual modulatory actions on spontaneous postsynaptic currents in spinal motoneurons.</a> J Neurophysiol. 89 (2), 806-813 (2003).</li>
<li>Tabak, J., Rinzel, J., O'Donovan, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+activity-dependent+network+depression+in+the+expression+and+self-regulation+of+spontaneous+activity+in+the+developing+spinal+cord%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">The role of activity-dependent network depression in the expression and self-regulation of spontaneous activity in the developing spinal cord.</a> J Neurosci. 21 (22), 8966-8978 (2001).</li>
<li>Chub, N., Mentis, G. Z., O'Donovan, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chloride-sensitive+MEQ+fluorescence+in+chick+embryo+motoneurons+following+manipulations+of+chloride+and+during+spontaneous+network+activity%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Chloride-sensitive MEQ fluorescence in chick embryo motoneurons following manipulations of chloride and during spontaneous network activity.</a> J Neurophysiol. 95 (1), 323-330 (2006).</li>
</ol>

בעלי חיים CARE<br /&gt;<br /&gt; ניסויים בבעלי חיים בוצעו בהתאם להנחיות והתקנות שנקבעו על ידי מכון סאלק למחקרים ביולוגיים AIACUC.

חוט השדרה בילוד מבודד מספק שיטה ממושמע ללמוד development1 מערכת העצבים, 2. בתוך עמוד השדרה המותני של מכרסמים בילוד, המעגלים מרכזי ליצירת דפוס יכול לייצר תנועה פיקטיבי בנוכחות של נוירוטרנסמיטורים. זו תנועה מורכבת פיקטיבי של עליות בפעילות קצבית, התפרצויות, אשר מיוצרים הרץ 0.2-0.5. התפרצויות אלה מאורגנים לייצר משמאל לימין לסירוגין לאורך לסירוגין כבל מכופף ו-extensor (ipsilateral יחסית L2 עד L5). מספר מוטציות גנטיות בעכברים כבר הראו התנהגות חריגה 3-5. הבנת האופן שבו המעגלים העצביים של...

<table><tbody><tr><td>KCl</td><td></td><td>P-9333</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td></td><td>S-7653</td><td></td></tr><tr><td>NaHCO&lt;sub&gt;3&lt;/sub&gt;</td><td></td><td>S-6297</td><td></td></tr><tr><td>NaH&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;PO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;</td><td></td><td>S-9638</td><td></td></tr><tr><td>גלוקוז</td><td></td><td>D-9434</td><td></td></tr><tr><td>CaCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;</td><td></td><td>C-5080</td><td></td></tr><tr><td>MgSO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;</td><td></td><td>M-5921</td><td></td></tr><tr><td>מספריים גדולים</td><td>Fine Science Tools</td><td>14070-12</td><td></td></tr><tr><td>פינצטה</td><td>Fine Science Tools</td><td>11050-10</td><td></td></tr><tr><td>מספריים עדינים</td><td>Fine Science Tools</td><td>15000-10</td><td></td></tr><tr><td>סיכות לחרקים</td><td>Fine Science Tools</td><td>26002-10</td><td></td></tr><tr><td>Sylgard 184 (Dow-Corning)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>בקריקה מדידה 1L</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>בקריקה מדידה 100mL</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

חוט השדרה electrophysiology

Spinal Cord Electrophysiology

חוט השדרה בילוד עכבר הוא מודל לחקר התפתחות circuitries עצבי התנועה של תנועה. אנו מדגימים את לנתיחה חוט השדרה והכנת אמבט נוזל המוח והשדרה הקלטה מלאכותי המשמש במחקרים של תנועה. גזור פעם, חוט השדרה הגחון שורשי העצבים יכולה להיות מחוברת אלקטרודה הקלטה כדי להקליט את אותות אלקטרו של המעגלים דפוס מרכזי ביצירת בתוך חוט השדרה.

הפגנה של בידוד של חוט השדרה בילוד עכבר ללימודי אלקטרו.

חוט השדרה Electrophysiology

חוט השדרה של עכבר רך-ולד הוא מודל לחקר התפתחותן של מעגלים עצביים ותנועה לוקומוטורית. אנו מדגימים את חוט השדרה...

שלום, שמי אלן מאייר ואני עוזר מחקר במעבדת faf במכון סאלק. היום אראה לכם כיצד לבצע לaminectomy ונטראלי כדי לבודד את חוט השדרה של עכבר, ובנוסף, אראה לכם כיצד לחבר את חוט השדרה לאלקטרודה. כדי להקליט את הפעילות העצבית שלו, עליכם להכין שני תמיסות עבור חוט השדרה, אחת עבור הניתוח והשנייה עבור אמבט ההקלטה.ההבדל היחיד בין שני התמיסות יהיה ריכוז סידן כלוריד. ראשית תצטרך להכין תמיסה של 10 X-A-C-S-F. לשם כך יידרשו הרכיבים המפורטים להלן.התחל על ידי הוספת 100 milliliters של 10 X-A-C-S-F לבקבוק מדידה של ליטר אחד. לאחר מכן, מלא את הבקבוק במים, אך השאר מקום כדי למנוע גלישה. בעת הגזורה, השתמש בתמיסות עם ריכוז גז של 5%CO2 ו-95%O2.כדי להוריד את ה-pH ולהחמצן את התמיסה, הוסף 1 mL של מגנזיום סולפט בריכוז 1 M. לאחר מכן, הוסף 1 mL של תמיסת סידן כלוריד בריכוז 1 M לתמיסת הנתיחה, והוסף 2 mL של סידן כלוריד בריכוז 1 M לתמיסת ההקלטה. ניתן להשתמש בניסיינים מגיל E 16.5 עד P 4 בניסויים אלו.התחילו בהנתיחה של העכבר תחילה על ידי עקיצה מהירה וניתוק ראשו בעזרת מספריים חדים. לאחר מכן, גזרו לאורך קו האמצע הגחוני עד להגעה לזנב. לאחר מכן, בעזרת פינצטה, הוציאו את האיברים הפנימיים של העכבר ושטפו עם תמיסת A CSF.השתמשו בתמיסת CSF עם סידום כלורי 1 millimolar לצורך הניתוח. הניחו את העכבר בצלחת הניתוח וקבעו אותו באמצעות סיכות בארבע כפות הרגליים ובבסיס הזנב. המטרה בשלב זה תהיה לבודד את חוט השדרה על ידי חיתוך לאורך הקו המקווקו באדום, תוך הפרדת עמוד השדרה מהלוחיות (lamina) העוטפות את חוט השדרה.פעולה זו תאפשר לכם לחשוף את חוט השדרה. לאחר מכן, עקבו אחרי הקו כדי לגזור את הקרומים (meninges) ואת שורשי העצבים, ובכך לשחרר את חוט השדרה. אתרו את עמוד השדרה והשתמשו ביד אחת עם פינצטה כדי לתפוס בחוזקה את עמוד השדרה וביד השנייה במספריים קטנים.כדי להוציא את חוט השדרה, החזיקו את המספריים בזווית נמוכה. כדי למנוע דקירה של חוט השדרה עם קצות המספריים, נבצע כעת דיסקציה של חוט השדרה. בעקבות הקו האדום, גזרו את הקרומיות (meninges) ואת שורשי העצבים של חוט השדרה.כדי להוציא את חוט השדרה, ניתן לגזור לאורך שני צדי החוט ולאחר מכן לגזור לאורך קו האמצע הגחוני (ventral midline). חשוב להחזיק את המספריים בזווית נמוכה כדי לא לנקב את חוט השדרה. חשוב להימנע מגזירה של השורשים קרוב מדי לחוט השדרה.בשלב הבא, העבירו את חוט השדרה לאמבט ההקלטה וחברו את האלקטרודות לשורשי העצבים של חוט השדרה. מקמו את האלקטרודה בקרבת השורש. לאחר מכן, השתמשו ביניקה כדי למשוך בעדינות את העצב אל תוך האלקטרודה.תודה שצפיתם, ואני מקווה שסרטון זה יסייע לכם בניסוייכם העתידיים.

Research

JoVE Journal

Biology

ביולוגיה

הפגנה של ייצור ושימוש אלקטרודה יניקה תאיים המשמשת למדידת אלקטרו הקלטות של מיתרי מכרסם השדרה...

חוט השדרה Electrophysiology II: ייצור תאי אלקטרודה יניקה

הסרטון מדגים את ההתחדשות הפונקציונלית של קשרים פרופריוספינליים באמצעות ניסוי מבוסס מערך רב אלקטרודות (MEA). פרוסות חוט השדרה מונחות על MEA ומותר להתמזג. הפרוסות המאוחות מופרדות מכנית על ידי יצירת נגע, מה שגורם לנוירונים פרופריוספינליים לגדול מעל הנגע ולחבר את הפרוסות. הפעילות החשמלית של הפרוסות מוערכת כדי לזהות את התחדשות הקשרים הפונקציונליים.

חקר התחדשות הקשרים הפונקציונליים בין פרוסות חוט השדרה באמצעות מערך מרובה אלקטרודות

סרטון זה מציג הקלטות אלקטרופיזיולוגיות מתרביות אורגנוטיפיות של פרוסות חוט השדרה, שצולמו באמצעות מערך מרובה אלקטרודות או מכשיר MEA. הקלטות אלה מעריכות התחדשות עצבית בין הפרוסות. הפעילות החשמלית המסונכרנת שנצפתה מאשרת רגנרציה עצבית מוצלחת.

רישומים אלקטרופיזיולוגיים להערכת התחדשות עצבית בפרוסות חוט שדרה בתרבית משותפת

עיכוב presynaptic GABAergic הוא מנגנון מעכב חזק בחוט השדרה החשוב עבור מנוע ושילוב אות תחושתי ברשתות חוט השדרה. שלילת קוטביות מביא ראשוני בסיסית ניתן למדוד על ידי הקלטה של ​​פוטנציאל שורש הגבי (DRP). כאן אנו מדגימים שיטת רישום vivo של DRP בעכברים.

מדידת השדרה Presynaptic עיכוב בעכברים על ידי הקלטה פוטנציאלית הגבי רוט<em&gt; בVivo</em

כונן הנשימה המרכזי ממוקם בגזע המוח. פלט מוטורי נשימתי ספונטני מגזע מוח-חוט שדרה מבודד נרשם על ידי הנחת אלקטרודה על שורש הגחון הרביעי. גישה ניסויית זו חשובה לחקירות פרמקולוגיות או להערכת אתגרי נשימה ומניפולציות גנטיות על התנהגות מוטורית קצבית.

אלקטרופיזיולוגיה בהכנות כבל מבודדות גזע המוח-השדרה מיילוד מכרסמים מאפשרת הקלטת תפוקת רשת הנשימה עצבית

כאן אנו מציגים פרוטוקול המבוסס על פרוסות חוט השדרה בתרבית על מערכים רב-אלקטרודה ללמוד התחדשות פונקציונלית של קשרי propriospinal במבחנה.

חוקר התחדשות פונקציונלית בחוט השדרה שיתוף תרבויות Organotypic גדלו על מערכים רב-אלקטרודה

אנחנו מראים איך להכין פרוסות אלכסוניות של חוט השדרה בעכברים צעירים. הכנה זו מאפשרת גירוי של שורשי הגחון.

הכנת פרוסות קורד אלכסון שדרה עבור גחון רוט גירוי

כתב יד זה מתאר שיטות הקלטות אלקטרו מן הנוירונים השדרה של עוברי דג הזברה הזחלים. הכנת שומרת נוירונים באתרו ולעיתים קרובות כרוך דיסקציה מינימום. שיטות אלה מאפשרות לחקר אלקטרו מגוון של נוירונים שדרה, מרכישת רגישויות חשמל הראשונית דרך שלבי זחל מוקדם.

זברה<em&gt; באתרו</em&gt; הכנת בחוט השדרה עבור הקלטות אלקטרו מתוך השדרה חושית הנוירונים המוטוריים

מתואר השימוש המשולב בטכנולוגיית מערך מיקרו-אלקטרודים ובגירוי כימי המושרה על-ידי 4-אמינו-פירידין לחקר פעילות נוציצפטיבית ברמת הרשת בקרן הגבית של חוט השדרה.

הקלטת פעילות רשת במעגלים נוסיקפטיים בעמוד השדרה באמצעות מערכי מיקרו-אלקטרוניקה

פרוטוקול זה מתאר שיטה המשתמשת במהדק טלאי כדי לחקור את התגובות החשמליות של נוירונים מוטוריים לגירוי חוט השדרה (SCS) ברזולוציה מרחבית-זמנית גבוהה, אשר יכולה לסייע לחוקרים לשפר את כישוריהם בהפרדת חוט השדרה ובשמירה על קיום התא בו זמנית.

הכנת Ex vivo של פרוסת חוט השדרה להקלטת מהדק טלאי של כל התא בנוירונים מוטוריים במהלך גירוי חוט השדרה

אנו מתארים פרוטוקול להקלטה חוץ-תאית רב-ערוצית בעמוד השדרה לצד הקלטה וניתוח של נוירונים של קרן גב עמוד השדרה הנעולים על הלב. שיטה זו מציעה מסגרת מסונכרנת זמנית לחקר מנגנוני עמוד השדרה העומדים בבסיס שינויים תפקודיים קרביים של בית החזה הנגרמים על ידי דיקור סיני.

חקר פרופילי הקידוד של גירוי סומטי על תגובות עצביות נעולות לבביות בקרן הגב של עמוד השדרה של החולדה

למדו טכניקת למינקטומיה ונטרלית לבידוד חוט השדרה בעכברים נאונטליים לצורך מחקר אלקטרופיזיולוגי. השיטה מאפשרת הקלטת פעילות עצבית ושימוש במחקרי מדעי המוח.

חוט השדרה Electrophysiology

גלה סרטונים נוספים